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小鼠模型中使用减毒活子孢子进行皮内免疫

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2025年7月8日

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来源:Mac-Daniel, L.,小鼠经皮内接种减毒活疫苗后皮肤及引流淋巴结中髓系细胞的分离 疟原虫 子孢子。 视频实验杂志 (2016).

本视频展示了一种使用减毒子孢子对小鼠模型进行免疫的实验方法。将经辐射减毒的疟原虫子孢子注射至小鼠耳背部。在双耳多个位点完成注射后,让小鼠恢复。

方案

所有涉及动物模型的实验程序均已通过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。

1. 材料与试剂

  1. 使用雌性Anopheles stephensi蚊子(Sda500品系),在羽化后3-5天让其取食感染的小鼠血液,并按先前所述方法饲养。
  2. 使用表达绿色荧光蛋白(GFP)基因的Plasmodium berghei ANKA克隆,该基因在组成型热休克蛋白70(HSP70)启动子的调控下表达,可在寄生虫整个生命周期中产生强烈的荧光信号。
  3. 使用雌性C57BL/6JRj小鼠(7周龄)。
    注意:本方案中使用的所有试剂均列于材料/设备表中。

2. 从蚊子唾液腺中分离辐射减毒子孢子

  1. 在感染性血液餐后18至25天,按先前所述方法将蚊子收集并置于冰上的15 ml离心管中进行低温麻醉。通过倒置离心管小心地将蚊子转移至培养皿中。保持昆虫处于冰上,并暴露于12 krad剂量的γ射线或x射线辐照。
  2. 按先前所述方法从经辐照的蚊子唾液腺中分离减毒子孢子。在冰上用少量(约15 μl)1×杜尔贝科氏磷酸盐缓冲液(DPBS)收集感染的唾液腺,并轻轻研磨以释放子孢子。
    注意:由于在小体积内注射高浓度寄生虫悬液至关重要,因此必须从大量预先筛选的高感染蚊子(以其强烈的绿色荧光表达为依据)中收获足够数量的唾液腺。
  3. 将子孢子悬液通过装有35 µm细胞滤器帽的低吸附1.5 ml微量离心管过滤,以去除团块和蚊子残渣。
  4. 按先前所述方法计数所分离的子孢子总数,并用冷的1×DPBS调整寄生虫悬液浓度至83,000 子孢子/μl。在进行后续步骤时将寄生虫置于冰上保存。
  5. 收集未感染蚊子的等量唾液腺作为阴性对照,并按照步骤2.2和2.3所述处理样本。按上述说明稀释样本,使悬液中唾液腺提取物的浓度相近。
    注意:子孢子可在冰上保存最多2小时。然而,理想情况下应在研磨唾液腺后1小时内完成注射。

3. 将子孢子注射至耳部真皮层

  1. 通过腹腔注射氯胺酮(50 mg/kg)和赛拉嗪(5 mg/kg)混合物麻醉动物。等待5-8分钟,直至小鼠进入无意识状态,并在眼睛上涂抹眼用软膏以防止角膜干燥。通过轻轻夹捏双侧后肢脚趾来评估麻醉深度。
    注意:麻醉剂量的作用时间少于20分钟,因此后续步骤必须迅速完成。
  2. 在体视显微镜下,用预先放置的透明胶带固定小鼠耳廓腹侧以稳定耳部(图1A)。轻柔按压耳朵,避免损伤血管系统。
  3. 用重悬的寄生虫液填充一支10 μl注射器配35号斜面针头,体积为0.6 µl。
  4. 将子孢子悬液分4个注射位点注入耳背侧(每个位点0.15 µl),将针头斜面向上,小心刺入表皮下方的真皮层(图1A),注意避开任何血管。注射后保持针头在真皮内数秒,以防止药液回流,再将其抽出。操作结束后,每个注射位点应出现特征性的丘疹(图1B1C)。
  5. 注射完成后,小心将耳朵从胶带上取下。
  6. 按照步骤3.2–3.4,对对侧耳朵注射相同剂量的寄生虫。
  7. 另注射2只小鼠,分别给予0.6 µl的1×DPBS或0.6 µl的1×DPBS加未感染蚊虫的唾液腺提取物,以评估单纯注射引起的炎症反应以及蚊虫物质在真皮层的沉积情况。
  8. 将小鼠放回笼中前,密切监测其从麻醉状态恢复的情况。
    注意:可通过荧光显微镜观察小鼠皮肤中子孢子的正确沉积情况(图2A2B),小鼠制备方法如前所述。

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结果

Mouse injection procedure; microscope images showing skin before and after injection analysis.
图1: I小鼠耳部皮内注射子孢子. (A) 图像显示在麻醉小鼠耳廓进行子孢子皮内注射。在解剖显微镜下预先用透明胶带固定耳部腹侧。针头斜面向上,从耳部背侧小心插入表皮下方。B-C) 显示耳廓背侧在之前(B)以及之后(C皮内注射0.1–0.2 μl寄生虫悬液。操作结束时,注射部位可见典型丘疹(黑箭头)。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
氯胺酮:Imalgene® 1000Merial--
赛拉嗪:Rompun® 2%Bayer--
NanoFil 注射器 + 35 号针头World Precision Instruments--
Omnican® 50 胰岛素注射器 0.5 ml/50 I.U.B. Braun Medical9151125-
MultiwellTM 6 孔组织培养板 – 平底BD Falcon353046-
70 µm 细胞滤器BD Falcon352350-
2 ml 注射器TerumoSS-02S-
BLUE MAXTM 15 ml 聚丙烯圆锥形离心管BD Falcon352097-
BLUE MAXTM 50 ml 聚丙烯圆锥形离心管BD Falcon352098-
5 ml 聚苯乙烯圆底管,带 35 µm 滤网盖BD Falcon352235-
DPBS 1X,无 CaCl2 和 MgCl2Life Technologies14190-094-
DMEM 1X + GlutaMAXTMLife Technologies31966-021-
牛胰脱氧核糖核酸酶 I,IV 型Sigma-AldrichD502550 µg/ml
雌性 C57BL/6JRj 小鼠(7 周龄)Janvier Laboratories--

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