来源:Qi, G., 等. 利用配对膜片钳记录技术对急性脑片中神经元微环路进行电生理学与形态学表征. J. Vis. Exp. (2015)
本视频演示了通过固定脑切片、定位移液管以实现全细胞记录构型,并刺激突触前神经元来记录突触后反应,从而揭示神经元连接关系的突触连接图谱绘制方法。
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2025年7月8日
来源:Qi, G., 等. 利用配对膜片钳记录技术对急性脑片中神经元微环路进行电生理学与形态学表征. J. Vis. Exp. (2015)
本视频演示了通过固定脑切片、定位移液管以实现全细胞记录构型,并刺激突触前神经元来记录突触后反应,从而揭示神经元连接关系的突触连接图谱绘制方法。
所有涉及动物样本的操作均已经过适当的动物伦理审查委员会审核并批准。
1. 配对膜片钳记录与生物胞素填充
根据突触连接的类型,采用三种不同的方法来寻找突触耦合的神经元。如果连接概率较低(大多数兴奋性连接的情况),请按以下步骤进行:
表1. 低氯化物移液管溶液。
| mM | g/L | g/50 ml | |
| K-葡萄糖酸盐 | 135 | 31.622 | 1.5811 |
| KCl | 4 | 0.298 | 0.0149 |
| HEPES | 10 | 2.384 | 0.1192 |
| 磷酸肌酸 | 10 | 2.552 | 0.1276 |
| ATP-Mg²⁺ | 4 | 2.028 | 0.1014 |
| GTP-Na | 0.3 | 0.156 | 0.0078 |
| 用 KOH 调节 pH 至 7.3 | |||
| 渗透压约为 300 mOsmol/L | |||
| 加入 3 - 5 mg/ml 生物胞素 | |||
表2. 用于搜寻突触连接神经元的高钠电极内液。
| mM | g/L | g/50 ml | |
| Na-gluconate | 105 | 22.92 | 1.146 |
| NaCl | 30 | 1.76 | 0.088 |
| HEPES | 10 | 2.384 | 0.1192 |
| Phosphocreatine | 10 | 2.552 | 0.1276 |
| ATP-Mg2+ | 4 | 2.028 | 0.1014 |
| GTP-Na | 0.3 | 0.156 | 0.0078 |
| 用 NaOH 调节 pH 至 7.3 | |||
| 渗透压约为 300 mOsmol/L | |||
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 放大器 | HEKA | EPC 10 USB Triple | 带 2-3 个前置放大器 |
| 显微镜 | Olympus | BX51WI | 配有 2 个相机接口、4× 物镜和 40× 水浸物镜 |
| 相机 | TILL Photonics | VX55 | 红外 CCD 相机 |
| 工作站 | Luigs & Neumann | Infrapatch 240 | 带电动 x-y 载物台和显微镜的电动调焦轴 |
| 微操纵器 | Luigs & Neumann | SM-5 | 用于 2-3 个前置放大器的 x-y-z 操纵器 |
| 法拉第笼 | Luigs & Neumann | ||
| 防震台 | Newport Spectra-Physics | ||
| Patchmaster | HEKA | ||
| 切片机 | Microm International | HM650V | |
| 微电极拉制仪 | HEKA | Sutter P-97 | |
| Neurolucida 系统 | Microbrightfield | 配备 Neurolucida 和 Neuroexplorer 软件 |