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方法文章

从运动神经元裂解液中免疫沉淀目标蛋白质-DNA复合物

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2025年7月8日

本文内容

摘要

来源:Montanera, K. N. ,Rhee, H. S. 利用染色质免疫沉淀-外切酶法(ChIP-Exo)在小鼠干细胞来源的神经元中实现蛋白质-DNA 相互作用的高分辨率定位J. Vis. Exp. (2020)

本视频展示了利用靶蛋白特异性抗体包被的磁珠,从干细胞来源的运动神经元裂解液中免疫沉淀与靶蛋白交联的DNA片段。

方案

注意:建议使用经高压灭菌的蒸馏去离子水(ddH2O)配制缓冲液和反应体系主混合液。

1. 细胞的收获与交联

  1. 将小鼠胚胎干细胞(ES细胞)分化为有丝分裂后神经元后,向收获的细胞中加入11%的甲醛,使终浓度达到1%(v/v)。在室温(RT,25 °C)下,于摇床(摇板、摇床或旋转器)上振荡孵育细胞15分钟。
    注意:根据目标蛋白交联的需求,可采用较低浓度的甲醛交联(例如终浓度为0.5%),或使用二琥珀酰亚胺基己二酸酯(DSG)进行双重交联。
  2. 加入2.5 M甘氨酸,使终浓度达到150 mM,以终止交联反应。在室温下,于摇床上振荡孵育5分钟。
  3. 将交联后的细胞在15 mL圆锥形离心管中,于室温下以1,350 × g 离心6分钟。吸除上清液,然后将细胞重悬于5 mL 1×磷酸盐缓冲液(PBS)中。
    注意:交联后的细胞沉淀可在液氮中快速冷冻后,于-80 °C保存。

2. 细胞裂解

注意:本方案中的以下步骤适用于约 2 × 107 个由小鼠 ES 细胞分化而来的神经元细胞。为裂解细胞,将使用含有多种去垢剂的裂解缓冲液。使用前,向 50 mL 缓冲液中加入 50 µL 的 1000 倍浓缩蛋白酶抑制剂(CPI)储备液。

  1. 按照表1所述配制裂解缓冲液1−3。
  2. 将交联的细胞沉淀置于冰上解冻,然后在15 mL锥形管中用3 mL裂解缓冲液1充分重悬细胞沉淀。在摇床上4 °C振荡15分钟。在4 °C以1,350 x g离心5分钟,吸除上清液。
  3. 用3 mL裂解缓冲液2充分重悬沉淀的细胞。在摇床上4 °C振荡10分钟。在4 °C以1,350 x g离心5分钟,吸除上清液。
  4. 向每份沉淀中加入1 mL裂解缓冲液3,然后置于冰上。立即进行超声处理。

3. 超声破碎染色质

注意:在超声处理过程中,将样品置于冰上或 4 °C 环境中,以减少交联逆转。

  1. 使用无菌刮勺,将珠磨珠(材料表)加入至15 mL聚苯乙烯管的0.2 mL刻度线处。用600 µL的1× PBS重悬磨珠,涡旋混匀直至无干斑可见。在30 × g 条件下离心5 s,吸除1× PBS。
    注意:在聚苯乙烯管中进行超声处理比在聚丙烯管中更高效。若细胞数量较少(例如,<106 个细胞),请使用1.5 mL聚苯乙烯管,并不添加磨珠。
  2. 将核裂解物充分重悬于1 mL裂解缓冲液3(来自步骤2.4)中,然后转移至含有磨珠的15 mL聚苯乙烯管中。短暂涡旋混匀聚苯乙烯管。
  3. 为片段化交联的染色质DNA,在4 °C下以优化的循环次数进行超声处理,超声功率设为30 W,循环程序设为开启30 s、关闭30 s。
    注意:针对每种细胞类型和批次优化超声条件,可获得最佳的染色质免疫沉淀-外切酶(ChIP-exo)产率。对于2 × 107 个小鼠神经元细胞,在上述条件下进行20–30个超声循环,可将染色质片段化至100–500 bp范围内。
  4. 超声完成后,将每个样本的全部上清液(超声处理后的裂解物)转移至1.5 mL离心管中。向每个样本中加入10% 2-[4-(2,4,4-三甲基戊烷-2-基)苯氧基]乙醇,终浓度为1%。用移液器吹打混匀。
  5. 为沉淀细胞碎片,在4 °C下以13,500 × g 离心10 min。将每个样本的全部超声裂解物(上清液)转移至新的1.5 mL离心管中。
  6. 从每个样本中取30 µL超声裂解物(约占超声后裂解物的3%),加入新的1.5 mL离心管中用于检测超声效果。其余超声裂解物暂存于4 °C,待与抗体包被的磁珠孵育时使用。

4. 检查超声处理

  1. 加入2 mL 0.5 M Tris-HCl(pH 8.0)、2 mL 0.5 M 乙二胺四乙酸(EDTA)、10 mL 10% 十二烷基硫酸钠(SDS)和6 mL 经高压灭菌的ddH₂O,配制成20 mL 2×蛋白酶K缓冲液。2O. 不要向此缓冲液中添加CPI。在室温下储存于50 mL离心管中。
  2. 为逆转蛋白质-DNA交联并去除蛋白质,从每个样本(步骤3.6)中取30 µL超声处理后的染色质,加入166 µL经高压灭菌的ddH₂O2O, 200 µL 的 2x 蛋白酶 K 缓冲液和 4 µL 的 20 mg/mL 蛋白酶 K。短暂涡旋混匀样品,然后在 65 °C 下孵育 1−3 小时,24 x g.
  3. 注意: 超声处理后的裂解液可在65 °C下逆转交联过夜。
  4. 使用酚:氯仿:异戊醇(PCIA: 25:24:1)和乙醇沉淀法提取DNA,步骤如下。
    警告: PCIA 具有毒性,需在通风橱中使用,并佩戴标准个人防护装备(PPE)。
    1. 向1.5 mL离心管中的每个样品加入400 µL PCIA,将涡旋振荡器调至最高速度,振荡20 s。在18,400 x g 室温下静置6分钟,将观察到两个相。小心地将每个样品的上层水相(澄清相)转移至新的1.5 mL离心管中。
    2. 加入1 µL 10 mg/mL的RNase A。将样品在37 °C孵育30分钟。
    3. 向每个样本中加入1 µL 20 mg/mL的糖原,然后加入1 mL预冷的100%乙醇(存放于-20 °C冰箱中)进行沉淀。短暂混匀后,将样本置于-80 °C冰箱中孵育30分钟至1小时。在18,400 x g 4 °C 下孵育 10 分钟,小心倒出 100% 乙醇。
    4. 用500 µL预冷至-20 °C的70%乙醇洗涤沉淀。在18,400 x g 4 °C 下静置 5 分钟。小心倒出 70% 乙醇。
    5. 将样品置于1.5 mL离心管中,在50 °C下孵育,直至残留乙醇完全蒸发。用15 µL经高压灭菌的ddH2O或无核酸酶的ddH2O重悬DNA沉淀。
    6. 将提取的DNA样本与DNA分子量标准品一同在1.5%琼脂糖凝胶中以120−180 V电压电泳,检测超声处理后DNA的片段大小。

5. 抗体与磁珠孵育

注意:本方案中的以下步骤适用于约 2 × 107 个由小鼠胚胎干细胞分化而来的神经元细胞。在 ChIP-exo 操作过程中,切勿冻存和解冻磁珠,因为磁珠可能破裂,导致样本污染或抗体性能下降。

  1. 细胞裂解和超声处理后,为染色质免疫沉淀(ChIP)准备Protein G磁珠(材料表),将磁珠充分混匀,然后向2 mL低吸附蛋白管中各加入25 µL磁珠。
    注意:所用磁珠的类型取决于抗体的物种来源。
  2. 用1 mL封闭液(表1)洗涤磁珠,充分混匀后置于磁力架上1分钟。仍在磁力架上时,待上清澄清后将其弃去。
  3. 向磁珠中加入1 mL封闭液,在4 °C摇床中轻轻振荡孵育10分钟。短暂离心后,将管子置于磁力架上并弃去上清液。
  4. 重复步骤5.3两次。
  5. 向磁珠中加入500 µL封闭液。短暂离心后,取抗Isl1抗体(0.04 µg/µL,材料表),向含有磁珠和封闭液的相应2 mL低吸附蛋白管中加入4 µg抗体。
  6. 重复步骤5.5,但不加抗体(即ChIP实验的无抗体对照)。
    注意:抗体的添加量可根据抗体质量和用于ChIP的细胞数量通过实验经验确定。
  7. 将样品在4 °C摇床中振荡孵育6−24小时。

6. 染色质免疫沉淀(ChIP)

  1. 用1 mL封闭液洗涤第5.8步中的抗体包被磁珠。将样品置于4 °C摇床上孵育5 min,然后移除上清液。
  2. 重复步骤6.1共两次。
  3. 将抗体包被磁珠重悬于50 µL封闭液中,然后转移至新的2 mL低结合蛋白管。对于每个ChIP样品,将超声处理后的裂解液(约1.0 mL,来自第3.6步)加入2 mL低结合蛋白管中的抗体包被磁珠中。
  4. 将每个样品在4 °C摇床上孵育过夜。

7. 染色质免疫沉淀洗涤步骤

注意:在 ChIP 洗涤过程中,需将样品置于冰上或 4 °C 以维持蛋白质-DNA 交联状态。

  1. 表2所述配制高盐洗涤缓冲液、LiCl洗涤缓冲液和10 mM Tris-HCl缓冲液(pH 7.4)。将缓冲液储存于50 mL离心管中,4 °C保存。使用前立即向所有缓冲液中加入50 µL的1000倍CPI储备液。
  2. 将2 mL低吸附蛋白离心管中的样品短暂离心,以收集管盖内的液体,然后置于磁力架上1分钟,用移液器小心吸除上清液。
  3. 进行ChIP洗涤时,向每管中加入1 mL裂解缓冲液3(4 °C预冷)。在4 °C摇床上混匀5分钟。短暂离心样品,置于磁力架上1分钟,用移液器吸除上清液。
  4. 向每管中加入1 mL预冷的高盐洗涤缓冲液。在4 °C摇床上混匀5分钟。短暂离心样品,置于磁力架上1分钟,用移液器吸除上清液。
  5. 向每管中加入1 mL预冷的LiCl洗涤缓冲液。在4 °C摇床上混匀5分钟。短暂离心样品,置于磁力架上1分钟,用移液器吸除上清液。
  6. 向每管中加入1 mL预冷的10 mM Tris-HCl缓冲液(pH 7.4)。在4 °C摇床上混匀5分钟。短暂离心样品,置于磁力架上1分钟,用移液器吸除上清液。
    注意:可使用Tris-EDTA缓冲液(pH 8.0)替代Tris-HCl缓冲液(pH 7.4)。

表1:裂解缓冲液1−3及封闭缓冲液的配方。置于50 mL离心管中,4 °C保存。使用前立即向所有缓冲液中各加入50 µL的1000倍浓度CPI(完全蛋白酶抑制剂)储备液。

裂解缓冲液 1
试剂体积 (mL)[终浓度]
1 M HEPES (pH 7.3)2.550 mM
5 M NaCl1.4140 mM
0.5 M EDTA (pH 8.0)0.11 mM
50% 甘油1010%
10% 辛基酚聚氧乙烯醚2.50.50%
10% 2-[4-(2,4,4-三甲基戊烷-2-基)苯氧基]乙醇1.250.25%
高压灭菌 ddH2O加至 50
裂解缓冲液 2
试剂体积 (mL)[终浓度]
0.5 M Tris-HCl (pH 8.0)110 mM
5 M NaCl2200 mM
0.5 M EDTA (pH 8.0)0.11 mM
高压灭菌 ddH2O加至 50
裂解缓冲液 3
试剂体积 (mL)[终浓度]
1 M Tris-HCl (pH 8.0)0.510 mM
5 M NaCl1100 mM
0.5 M EDTA (pH 8.0)0.11 mM
10% 脱氧胆酸0.50.10%
30% 月桂酰肌氨酸钠溶液0.830.50%
高压灭菌 ddH2O加至 50
封闭液
试剂用量[终浓度]
牛血清白蛋白 (BSA)250 mg0.50%
完全蛋白酶抑制剂 (CPI, 1000x)50 µL1x
磷酸盐缓冲液 (PBS)加至 50 mL

表2:ChIP洗涤液配方:高盐洗涤缓冲液、LiCl洗涤缓冲液和10 mM Tris-HCl缓冲液(pH 7.4)。置于4 °C下,储存在50 mL离心管中。使用前立即向所有缓冲液中加入50 µL的1000倍CPI储备液。

高盐洗涤缓冲液
试剂体积 (mL)[终浓度]
1 M HEPES (pH 7.3)2.550 mM
5 M NaCl5500 mM
0.5 M EDTA (pH 8.0)0.11 mM
10% 2-[4-(2,4,4-三甲基戊烷-2-基)苯氧基]乙醇51%
5% 脱氧胆酸10.10%
5% SDS10.10%
高压灭菌 ddH2O加至 50
LiCl 洗涤缓冲液
试剂体积 (mL)[终浓度]
0.5 M Tris-HCl (pH 8.0)220 mM
0.5 M EDTA (pH 8.0)0.11 mM
1 M LiCl12.5250 mM
10% 辛基酚聚氧乙烯醚2.50.50%
5% 脱氧胆酸50.50%
高压灭菌 ddH2O加至 50
10 mM Tris-HCl 缓冲液
试剂体积 (mL)[终浓度]
1 M Tris-HCl (pH 7.4)0.510 mM
高压灭菌 ddH2O加至 50

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
琼脂糖,UltraPureInvitrogen16500检测超声处理(第4.3.6节) 
牛血清白蛋白(BSA),无蛋白酶,用于热激分离,纯度≥98%BioShopALB003封闭溶液
抗 Isl1 抗体DSHB39.3F7抗体与磁珠孵育(第5.6节)
Bioruptor PicoDiagenodeB01060010染色质超声处理(第3.3节)
Centrifuge 5424 REppendorf5404000138染色质超声处理(第3.5节),检测超声处理(第4.3.1、4.3.3和4.3.4节)
Centrifuge 5804 REppendorf22623508细胞收获、交联与冷冻(第1.3节),细胞裂解(第2.2和2.3节),染色质超声处理(第3.1节)
Complete,Mini,无EDTA蛋白酶抑制剂混合物Roche4693159001添加至所有缓冲液中,蛋白酶K缓冲液和ChIP洗脱缓冲液除外
脱氧胆酸钠盐fisher scientificBP349裂解缓冲液3、高盐洗涤缓冲液和LiCl洗涤缓冲液
EDTA,0.5 M,无菌溶液,pH 8.0BioShopEDT111裂解缓冲液1-3、检测超声处理(第4.1节)、高盐洗涤缓冲液、LiCl洗涤缓冲液和ChIP洗脱缓冲液
无水乙醇,100%Commercial alcoholsP006EAAN检测超声处理(第4.3.3节)
甲醛,36.5–38%,含10–15%甲醇SigmaF8775细胞收获、交联与冷冻(第1.1节)
甘油,试剂级,纯度≥99.5%BioShopGLY002裂解缓冲液1
甘氨酸,生物技术级,纯度≥99%BioShopGLN001细胞收获、交联与冷冻(第1.2节)
糖原,RNA级Thermo ScientificR0551检测超声处理(第4.3.3节)
HEPES,1 M,无菌过滤溶液,pH 7.3BioShopHEP003裂解缓冲液1、高盐洗涤缓冲液
氯化锂(LiCl),试剂级BioshopLIT704LiCl洗涤缓冲液
用于ChIP的磁珠(Dynabeads Protein G)Dynabeads Protein G (magnetic beads for ChIP)Dynabeads Protein G (magnetic beads for ChIP)抗体与磁珠孵育(第5节)
磁力架(DynaMag-2 Magnet)Invitrogen12321D用于第5节中的多个步骤 
N-月桂酰肌氨酸钠盐溶液,30%水溶液,≥97.0%(HPLC)Sigma61747裂解缓冲液3
辛基酚聚氧乙烯醚(IGEPAL CA630)BioShopNON999裂解缓冲液1和LiCl洗涤缓冲液
苯酚:氯仿:异戊醇,生物技术级(25:24:1)BioShopPHE512检测超声处理(第4.3.1节)
磷酸盐缓冲液(PBS),1xCorning21040CV细胞收获、交联与冷冻(第1.3节)和染色质超声处理(第3.1节),抗体与磁珠孵育(第5.1节)
PowerPac Basic 电源供应器BioRad1645050检测超声处理(第4.3.6节) 
蛋白酶K溶液,RNA级Invitrogen25530049检测超声处理(第4.2节) 
RNase A,无DNase和蛋白酶Thermo ScientificEN0531检测超声处理(第4.3.2节) 
氯化钠(NaCl),BioReagent级SigmaS5886裂解缓冲液1-3、高盐洗涤缓冲液
十二烷基硫酸钠(SDS),电泳级BioShopSDS001检测超声处理(第4.1节)、高盐洗涤缓冲液和ChIP洗脱缓冲液
超声破碎珠和15 mL Bioruptor管DiagenodeC01020031染色质超声处理(第3.1和3.2节)
ThermoMixer F1.5Eppendorf5384000020第4.2、4.3.2和4.3.5节
三羟甲基氨基甲烷盐酸盐溶液(Tris-HCl),经BioPerformance认证,1 M,pH 7.4SigmaT219410 mM Tris-HCl缓冲液
三羟甲基氨基甲烷盐酸盐溶液(Tris-HCl),经BioPerformance认证,1 M,pH 8.0SigmaT2694裂解缓冲液2、裂解缓冲液3、检测超声处理(第4.1节)、LiCl洗涤缓冲液和ChIP洗脱缓冲液
VWR Mini 试管摇床,可调速VWR10159-752用于第1、2、5、6和7节中的多个步骤
2-[4-(2,4,4-三甲基戊-2-基)苯氧基]乙醇,Triton X-100,试剂级BioShopTRX506裂解缓冲液1、染色质超声处理(第3.4节)和高盐洗涤缓冲液

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DNA