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评估果蝇背纵肌神经肌肉接头的结构完整性

2025年7月8日

本文内容

摘要

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来源:Sidisky, J. M. et al. 可视化与神经变性相关的成年果蝇突触变性。J. Vis. Exp. (2020 年)。

该视频演示了评估果蝇背纵肌中神经肌肉接头结构完整性的方案。该程序包括用两种不同的抗体对神经元和肌肉进行染色,并比较突变型和野生型果蝇之间的荧光模式。突变果蝇神经元染色的减少表明神经退行性变,而肌肉结构保持完整。

方案

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1. 闪冻和胸部平分

  1. 在开始剖分之前,戴上适当的冷冻防护手套和安全眼镜,用液氮填充杜瓦瓶。获得刀片破碎机、羽毛刀片、一对细镊子、冰、冰冷的 1x PBS 和低温镊子。
  2. 准备一个冰桶以保持 1x PBS 冰冷。
  3. 使用刀片破碎机以一定角度抓住羽毛刀片并弯曲刀片以折断一小块。然后,刀片断路器可以将刀片锁定到位,以便用作小手术刀。
    注意: 一个刀片应该适用于所有组。如果刀片断裂或变钝,请切换。
  4. 向 P200 上添加干净的移液器吸头,然后取下 1/5 的吸头以运输样品。
  5. 为每组准备一个新的微量离心管,并向每个管中加入 200 μL 1x PBS。第二支试管将用于收集最终的 DLM 制备物。
  6. 使用巴斯德移液管从试管中取出所有 1x PBS。
  7. 穿戴适当的防护设备,用低温镊子将试管浸入液氮瓶中 10 秒。
    注意: 管子应紧闭,以防止管子爆炸。
  8. 从液氮中取出试管,用巴斯德移液管向样品中加入大约 300 μL 冰冷的 1x PBS。将样品放在冰上。
  9. 将冰冷的 1x PBS 添加到涂有硅弹性体的 10 cm 解剖皿中,并用改良的 200 μL 移液器分配第一个胸部。
  10. 将胸部腹侧朝上。一只手用一对钝钳定位胸部,另一只手用一把细镊子去除一些胸神经节,露出胸部中线。
  11. 以胸部的中线为导向,用刀片在胸部的 1/3 处进行浅切。
  12. 从胸部取下刀片,用钝镊子将胸部呈 45° 角定位。重新插入刀片并沿着胸部中线笔直切割。这将导致两个半胸。
  13. 一次取一个半胸,并去除最腹侧纤维 DLM 肌肉纤维 F(图 1B)下的多余组织。使用刀片小心地进行一两次切割,以去除多余的组织,而不会损坏 DLM。
  14. 分离后,用 1x PBS 将半胸转移到正确的试管中。
  15. 重复步骤 1.6-14,直到每组制作 10 个解剖半胸。

2. 结构染色

  1. 胸部样品一分为二后,将组织置于封闭缓冲液(1x PBS 与 0.1% 正常山羊血清和 0.2% Triton X-100,pH 值为 7.4)中,以透化组织并防止非特异性染色。使用巴斯德移液器去除多余的 1x PBS,并向每个试管中加入 1.5 mL 封闭缓冲液。在 4 °C 下封闭组织至少 1 小时。
  2. 使用荧光偶联抗体、1:200 稀释度的辣根过氧化物酶 488(抗 HRP-488)和稀释度为 1:1000 的鬼笔环肽-647 在封闭缓冲液中制备用于结构染色的样品,以分别对运动神经元和肌肉组织进行染色。制作足够的染色剂,每管有 150 μL。将染色剂储存在 4 °C 下,用箔纸覆盖或放在暗盒中,直到准备好染色。
  3. 封闭后,用玻璃巴斯德移液管去除多余的封闭缓冲液。
  4. 在分配结构染色剂之前,涡旋染色剂。向每个试管中加入 150 μL 染色剂。将样品在室温下放在旋转器上的暗盒中 2 小时。
  5. 去除污渍,并在暗箱中的旋转器上用 1.5 mL 室温 1x PBS 和 0.3% Triton X-100 洗涤组织 5 分钟。样品现在可以封片到载玻片上。

3. 安装纸巾

  1. 在 PBST 中洗涤样品后,准备显微镜载玻片以安装组织进行染色。准备额外的用品,包括玻璃盖玻片、P200 移液器、200 μL 移液器吸头、剪刀、透明加固、直边镊子、防褪色荧光封固剂、指甲油和覆盖载玻片的暗盒。
  2. 标记载玻片以识别样品,并用 Kim 湿巾清洁以去除任何污迹。
  3. 为确保盖玻片不会损坏半胸样品,请使用增强标签构建一个"桥"。将一个钢筋标签切成两半,并将每半间隔约 15 毫米。此距离必须小于盖玻片的宽度。重复此步骤四次,以完成一个 5 个标签高的"桥"。
  4. 取 P200 移液器,通过切掉 1/5 的吸头来修改吸头,以将样品转移到载玻片上。样品应转移到桥中央的载玻片上。
  5. 拿起实验室擦拭布的边缘,去除多余的 PBST。使用镊子排列 DLM,使所有样品都面向肌肉面朝上,角质层面朝下。
  6. 使用标准 P200 移液器吸头,将 70 μL 封固剂涂抹在载玻片上,避免气泡。在增强材料内部以圆形模式分配介质,从外部开始到中心。
  7. 在钢筋上放置盖玻片。
  8. 使用指甲油涂抹盖玻片周边的外边缘。大量涂抹以形成组织的完全密封。
  9. 将载玻片放在黑暗中的平坦表面上,至少干燥 10 分钟并防止光漂白或荧光损失。载玻片现在可以立即用于成像,或以其他方式存储在 -20 °C 的载玻片文件夹中以供以后查看。

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结果

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图 1:ALS 果蝇模型中 DLM 突触的进行性去神经支配。(A) 示意图中显示了表达 43 kDa 焦油结合蛋白 (TDP-43) 的人类突变形式的 ALS 转基因果蝇的产生。(B) 该插图描绘了成年果蝇半胸的形状和方向。使用该方案,我们可以通过用 HRP(绿色)对运动神经元和用鬼笔环肽(洋红色)对肌肉组织进行结构染色来观察 DLM NMJ 突触完整性的进行性丧失。我们的模型描述了 ALS 成年模型中突触完整性的丧失,通过与肌肉纤维 C 中的 WT(图 1C)相比,成年果蝇在运动神经元中表达人类 TDP-43M337V 突变体(图 1F\u2012H)。箭头突出显示了 WT 突触的例子(图 1C)和突...

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材料

<表格border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"> 本文使用的材料清单 姓名 公司 目录编号 评论 32% 甲醛 电子显微镜科学 15714 元 组织保存 BenchRocker (台式摇杆) 杰纳西科学 31-302 染色过程中旋转样品 Blade Breaker (刀片破碎机) 精细科学工具 编号 10053-09 用于固定羽毛刀片 盖玻片 Fisher Scientific 公司 型号 12548A 用于安装纸巾 低温手套 VWR 97008-198 保护双手免受液氮的伤害 低温镊子 VWR 82027-432 将 2.0 mL 试管置于液氮中 杜瓦瓶-1900 mL 托马斯科学公司 编号 5028M54 保持液氮 羽毛刀片 电子显微镜科学 72002-01 手术刀刀片 Fine Forecps x 2 精细科学工具 11252-20 一对细线用于清除胸部中线。另一对可以使用磨刀石变钝。 FITC 偶联的抗 HRP 抗体 杰克逊实验室 电话:123-545-021 染色运动神经元。以 1:100 的浓度使用 冷冻箱 (黑色) Fisher Scientific 公司 14100F 系列 保护样品避光 玻璃巴斯德移液器 VWR 14637-010 用于转移样品 载玻片 Fisher Scientific 公司 12550143 用于安装纸巾 封固剂 (VECTASHIELD) 防褪色剂 VWR 编号: 101098-042 封固剂可保留荧光信号 指甲油 电子显微镜科学 72180 密封显微镜载玻片 正常山羊血清 Fisher Scientific 公司 PCN5000 防止抗体的非特异性结合 画笔 杰纳西科学 59-204 元 转移苍蝇 PBS 系列 Fisher Scientific 公司 编号:10-010-023 用于解剖和染色的盐水溶液 鬼笔环肽 647 Abcam 中文官网 AB176759 对肌肉组织中的 F-肌动蛋白进行染色。以 1:1000 的浓度使用 塑料培养皿 (100 mm) VWR 25373-100 解剖皿 钢筋标签 W.B. 梅森 AVE05722 为镶样组织上的玻璃盖玻片提供支撑 磨刀块 格兰杰 1RDF5 保持细镊子锋利,并使单独的镊子变钝 Slide 文件夹 VWR 10126-326 号 样品储存 标准办公剪刀 W.B. 梅森 ACM40618 切割钢筋标签 希尔加德 184 [Sylgard] 电子显微镜科学 24236-10 解剖皿涂层 海卫一-X-100 电子显微镜科学 22140 有助于透化组织 Vannas Disssection 剪刀 精细科学工具 1500-00 元 用于去除飞腿并在胸部切开

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