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使用实时环磷酸腺苷测定法测量气味受体激活

2025年7月8日

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摘要

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来源:Zhang, Y. et al., 使用实时 cAMP 测定法测定气味受体激活的活细胞测量。 (2017 年)

该视频演示了使用环磷酸腺苷 (cAMP) 生物传感器和发光检测来测量转染细胞中气味受体激活的方案。该方法应用于研究嗅觉神经元中的受体-配体相互作用和信号通路。

方案

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1. 使用实时 cAMP 检测刺激和测量气味受体 (OR) 活性

  1. 在相差显微镜下观察转染的细胞,以确保每孔 50-80% 的适当汇合,然后返回培养箱。
  2. 通过将 10 mM 羟乙基哌嗪乙磺酸 (HEPES) 和 5 mM 葡萄糖添加到 Hank 平衡盐溶液 (HBSS) 中来制备刺激培养基。
  3. 在冰上解冻实时 cAMP 测定底物试剂等分试样。将底物试剂在 -80 °C 下以每管 55 μL 的浓度储存在聚合酶链反应 (PCR) 管中。每板使用 1 管。
  4. 通过将 55 μL 底物试剂和 2750 μL HBSS/HEPES/葡萄糖溶液混合,制备 2% 平衡溶液。
  5. 在长凳上铺上一层厚厚的纸巾。在纸巾上轻轻地重复敲击板,使转染培养基完全被纸巾吸收。
  6. 通过向每个孔中移液 50 μL HBSS/HEPES/葡萄糖溶液来洗涤细胞。
  7. 轻轻地反复从 96 孔板中敲出 HBSS/HEPES/葡萄糖溶液。
  8. 向每个孔中移取 25 μL 2% 平衡溶液,并在室温下避光孵育 2 小时。
  9. 提前在二甲基亚砜 (DMSO) 中制备 1 M 加臭剂储备溶液,并在 -20 °C 下储存直至使用。
  10. 在孵育时间结束之前,在 HBSS/HEPES/葡萄糖刺激培养基中将加臭剂储备溶液稀释至工作浓度。
    注意:在该步骤中制备的加臭剂稀释液的浓度应加倍,以便在每个孔中产生正确的最终浓度。
  11. 使用化学发光读板器,在添加气味剂之前,以每孔 1000 ms 的速率连续 2 次测量板的基础发光水平。
  12. 从读板器中快速取出板,向每个孔中加入 25 μL 加臭剂稀释液,并立即开始在 30 分钟内对所有孔进行 20 次循环的连续发光测量。
    注意:在同一板中使用不同的加臭剂和/或不同浓度的相同加臭剂时,请小心移液,以避免污染相邻的孔。

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材料

<表格border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"> 本文使用的材料清单 姓名 公司 目录编号 评论 DMSO 西格马 D2650 系列 GloSensor cAMP 试剂 普罗梅加 编号 E1290 HBSS,不含氯化钙和氯化镁 吉布科 14175095 HEPES 系列 海克隆 SH30237 麝香 圣克鲁斯 编号 SC-200528 麝香藏 西格玛-奥德里奇 S359165 PBS,不含钙或镁 Cellgro 编号:21-040-CV 0.2 mL PCR 管 Axygen (英语) PCR-02-C 1.5 mL Eppendorf 管 Eppendorf 埃本多夫 15 mL 17 mm x 120 mm 锥形管 BD 猎鹰 352096 8 孔和/或 12 孔多通道 Pipetman Eppendorf 埃本多夫 96 孔平底白色细胞培养板 格雷纳 655098 100 mm x 20 mm 细胞培养皿 BD 猎鹰 353003 Infinite F200 读板机 特康

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cAMP G

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