方法文章

使用侧向液体叩击装置生成创伤性脑损伤的小鼠模型

2025年7月8日

本文内容

摘要

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

来源:温, L., et al. 调查小鼠创伤性脑损伤后盲肠微生物群的改变。 (2019 年)。

该视频演示了一种使用侧向液体叩击装置 (LFPI) 生成创伤性脑损伤 (TBI) 小鼠模型的方法。麻醉小鼠后,通过在头骨上创建一个窗口来暴露大脑。将充满盐水的套管连接到窗户上,然后连接到 LFPI。装置的钟摆被释放以产生压力脉冲,从而造成创伤性脑损伤。

方案

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

所有涉及动物模型的程序均已由当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会审查。

1. 动物护理

  1. 在本实验中使用 5 至 6 周龄雄性 C57BL/6J 小鼠 (20-25 g 体重)。
  2. 保持小鼠处于 12 小时/12 小时的光照/黑暗循环中,并确保它们随意接受食物和水。在整个研究过程中为假手术组和 TBI 组提供相同数量的食物和水。
  3. 尽一切努力减少动物的痛苦和不适。

2. 创伤性脑损伤的诱发

  1. 注射氯胺酮 (80-100 mg/kg)/甲苯噻嗪 (10 mg/kg) IP 用于麻醉。使用眼反射或疼痛反射测试麻醉深度。使用人工泪液或润滑眼膏以防止眼睛干燥。
  2. 麻醉后,将鼠标置于俯卧位。使用温控加热垫在手术期间和 TBI 后将温度保持在 37 °C,持续 30 分钟。
  3. 剃掉切口区域的毛发。
  4. 用 70% 乙醇对头皮进行消毒,使用三种交替的磨砂膏,然后在矢状面上切开头皮。
  5. 用镊子缩回两侧的切口,并稍微分离骨膜。
  6. 用记号笔在颅骨的右顶叶区域画一个圆圈(直径 3 毫米),距离中线 2 毫米。
  7. 用电钻钻头骨。确保仔细作此步骤以保护硬脑膜免受损坏。
  8. 取下骨瓣并露出一个小骨窗(直径 3 毫米)。
  9. 在开颅手术上放置一个塑料损伤套管(内径 = 2.5 毫米,长度 = 8 毫米),并使用牙科丙烯酸将套管粘接到颅骨上。
  10. 使用注射器 (5 mL) 用无菌 0.9% NaCl(生理盐水)填充套管,以确保套管中没有气泡。
  11. 打开示波器和 amp升压器,确保 LFPI 设备的高压管没有气泡。通过传递大约 10 个脉冲来测试设备,直到它发出稳定的信号。调整摆锤起始位置的角度,以达到约 2.0 atm 的脉冲强度。
  12. 将损伤套管连接到 LFPI 装置。通过扣动扳机并释放钟摆来诱发脑损伤。然后,获得脉冲并通过整个封闭的充满液体的管道系统将其传输到硬脑膜。
  13. 用相同的手术程序作假手术组中的小鼠。请勿执行 LFPI。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

<表格border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"> 本文使用的材料清单 姓名 公司 目录编号 评论 加热垫 上海赛孚生物科技有限公司 TR-200 型 加热垫 注射器 浙江大学医学院附属第一医院 注射器 LFPI 设备 弗吉尼亚州
英联邦大学 FP302 系列 LFPI 设备 微型颅钻 RWD 生命科学 78061 微型颅钻 聚维酮碘 浙江大学医学院附属第一医院 聚维酮碘

重印与许可

申请许可以重复使用本 JoVE 文章的文本或图表

申请许可

标签

Traumatic Brain InjuryLateral Fluid PercussionMouse ModelBone Flap CreationDura Mater ExposureCannula PlacementPressure Pulse GenerationPendulum ReleaseDental Cement SecuringSaline Filling

相关文章