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1. 体壁制备
注意:三龄幼虫体壁(用于研究支配体壁肌肉的神经肌肉接头)的制备按照先前所述方法进行,但做了一些修改。
- 解剖
- 采用标准方法在25 °C条件下培养果蝇品系及杂交后代5至6天。
- 用精细镊子从试管或瓶子中挑选爬行的三龄幼虫。
- 在含有磷酸盐缓冲液(PBS)的小型培养皿中清洗幼虫,以去除食物残渣。
- 将一条幼虫置于Sylgard培养皿上,并加入数滴冰冷的PBS浸没幼虫。使用冰冷的PBS有助于使幼虫麻痹,便于操作。在整个解剖过程中,确保样本始终浸没在PBS中,以防干燥。
- 将幼虫背侧朝上放置,在解剖显微镜下观察,使两条气管清晰可见(图1A)。用镊子夹住微细针,将幼虫后端靠近气门处固定图1B)。用另一枚解剖针从口钩附近的前端表皮处刺入,轻轻纵向拉伸幼虫,然后将其固定(图 1B).
- 使用显微解剖剪,在靠近大头针的后端轻轻夹取,制造一个小开口。切口应足够浅,仅穿透角质层即可。
- 将剪刀的下刃尖端插入切口,沿两条气管束之间的整个背侧中线长度进行剪切图1C)。剪切时将剪刀尖端略向上倾斜,以避免损伤腹壁肌肉。
- 在后方放置的针稍偏前的位置做一个小的横向切口图1C)。在前侧定位的针稍后方做一个类似的切口(图1C切口应刚好穿过角质层。
注意: 步骤1.1.7和1.1.8中的三个切口合并后应呈现为一个“
完成时 即在幼虫体背侧应形成一个左侧和右侧的瓣膜。
- 用镊子仔细清除内部器官。加入几滴PBS并用力冲洗,有助于将器官从幼虫体内排出,从而更易于移除。操作时应避免刺破幼虫体壁,以免损伤体壁肌肉。
- 展开幼虫体壁并用大头针固定四角(图1D)。固定时,需将体壁在水平和垂直方向上均匀拉伸,形成张力一致的矩形(参见 图 1G (为保持形状),注意不要撕裂体壁肌肉。
- 移除剩余的内脏器官图1E).
- 固定与通透
- 将固定好的体壁浸入数滴Bouin溶液中,冰上孵育15分钟。或者,可使用4%多聚甲醛(PFA)作为替代固定剂,孵育30分钟。
- 用含吐温的磷酸盐缓冲液(PBT)清洗三次。
- 使用精细镊子小心移除针脚,并通过边角将体壁转移至经硅化处理的0.65 ml微量离心管中。
- 将体壁保存在PBT中,置于4 °C冰箱中,直至准备进行PLA。为获得最佳结果,建议在解剖后一至两天内开始对体壁进行免疫染色。
注意: 为节省试剂并确保在实验过程中所有体壁样本受到均等处理,可将不同基因型的样本置于同一管中。可通过以不同方式剪切体壁的角部来区分基因型(参见 图1F 例如)。
2. 免疫组织化学
注意:三龄幼虫体壁的免疫染色按照先前所述方法进行,但做了一些修改。
注意:除非另有说明,所有步骤均在室温下进行,并轻轻振荡。
- 封闭
- 用 PBT 清洗体壁,每次 10 分钟,共清洗三次。
- 用1%牛血清白蛋白(BSA)封闭1小时。
- 免疫染色
- 将体壁与针对两种目标蛋白的小鼠和兔源一抗(用1% BSA稀释)在室温下孵育2小时,或在4 °C过夜。本实验中使用1:10稀释的小鼠抗Dlg抗体(Dlg = discs large)和1:250稀释的兔抗HtsM抗体(HtsM:Hu-li tai shao突变体)。也可同时加入针对非小鼠或兔源标记物的抗体—— 例如,使用1:200的 goat anti-Hrp(Hrp = 辣根过氧化物酶)标记神经元膜。
- 用PBT清洗三次,每次10分钟。
- 在室温下用荧光标记的二抗(溶于1% BSA中)孵育2小时,或在4 °C过夜,以检测标记物。由于后续PLA信号将用红色荧光染料显影,因此必须使用另一种荧光染料来检测标记物 — 例如,使用1:200稀释的异硫氰酸荧光素(FITC)标记的抗山羊抗体来检测山羊抗-Hrp抗体。由于使用了光敏试剂,从此时起需将离心管避光保存。
注意: 该试剂盒可用于在小鼠和兔来源的一抗之间进行邻近连接实验,信号可在共聚焦显微镜的红色通道中观察。如需要,也可选用其他试剂盒,以实现其他物种来源的一抗之间的检测,并在其他通道中观察信号。
3. 邻近连接实验
注意:除非另有说明,所有步骤均需在室温下进行,并轻轻振荡。
- PLA 探针
- 用 PBT 清洗体壁,每次 10 分钟,共洗三次。
- 加入 PLA 探针(以 1% BSA 按 1:5 比例稀释)于 37 °C 孵育 2 小时。在此情况下,使用 40 µl PLA 探针 anti-mouse MINUS、40 µl PLA 探针 anti-rabbit PLUS 和 120 µl 1% BSA,以确保 5–10 个体壁充分浸没并混合均匀。PLA 探针最高可稀释至 1:25 仍可获得足够的信噪比(i.e.,本实验条件下)。
- 连接反应
- 用 Wash Buffer A 清洗体壁,每次 5 分钟,共洗两次。
- 加入连接反应溶液(连接酶按 1:40 比例稀释于连接缓冲液中)于 37 °C 孵育 1 小时。在此情况下,使用 5 µl 连接酶、40 µl 5× 连接缓冲液和 155 µl 高纯度水,以确保 5–10 个体壁充分浸没并混合均匀。
- 扩增反应
- 用 Wash Buffer A 清洗体壁,每次 2 分钟,共洗两次。
- 加入扩增反应溶液(聚合酶按 1:80 比例稀释于扩增缓冲液中)于 37 °C 孵育 2 小时。在此情况下,使用 2.5 µl 聚合酶、40 µl 5× 扩增缓冲液和 157.5 µl 高纯度水,以确保 5–10 个体壁充分浸没并混合均匀。
- 成像前准备
- 用 Wash Buffer B 清洗体壁,每次 10 分钟,共洗两次。
- 用 0.01× Wash Buffer B 清洗一次,持续 1 分钟。
- 在数滴封片液中平衡至少 30 分钟后再封片,或在 4 °C 下过夜保存。
- 使用精细镊子,小心将体壁转移至载玻片上,使其表皮朝下。在 1–2 滴封片剂中将体壁按行排列并保持方向一致。将一张 22 mm × 40 mm 的盖玻片覆盖在样品上,注意避免产生气泡,然后用透明指甲油封固载玻片。
- 将载玻片避光保存于 -20 °C,待共聚焦显微成像时取出使用。