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1. 活体图像记录
- 活体成像用细胞的制备
1. 在6孔板中,将表达绿色荧光蛋白标记的葡萄糖转运蛋白4(GFP-GLUT4)的野生型(WT)和CCR5基因敲除(CCR5-/-)下丘脑神经元细胞培养于已预先包被多聚-D-赖氨酸的#1.5(或厚度为0.17 mm)玻璃盖玻片上。
2. 小心使用镊子取下带有神经元的盖玻片,并谨慎地将其放置在玻璃载片上。
3. 使用精细擦拭纸去除多余的培养基/液体。将擦拭纸对折两次,小心地放置在盖玻片上方,轻轻按压擦拭纸,避免移动盖玻片。
注意:切勿用力将盖玻片压向玻片。此步骤的目的是确保在图像采集过程中,盖玻片不会因浮力作用而发生移动或漂移。
4. 将盖玻片和载玻片放置在去卷积显微镜载物台上,使盖玻片朝下,并妥善固定。此步骤旨在确保载玻片位置保持恒定,以便用户后续能够追踪同一组目标细胞。
5. 使用 60x/1.42 NA 油镜物镜观察野生型(WT)和 CCR5-/- 下丘脑神经元细胞。
6. 用 CCL5(10 ng/mL)或胰岛素(10 U/mL)处理所选细胞样本 1 分钟。在盖玻片边缘加入 1.5 µL 稀释的胰岛素。
7. 立即观察并记录所选的细胞样本。将视频记录软件设置为连续录制30分钟。
2. 去卷积显微镜成像与分析
注意:本实验步骤需要使用去卷积显微镜及专用分析软件。
1. 打开成像系统的电源,待显微镜载物台正确初始化后,再打开LED光源。
2. 在60倍、数值孔径1.42的物镜上滴加浸油(活体样品在37 °C时的折射率为1.520)。将样品载玻片放置在显微镜载物台上,使盖玻片朝向物镜,并妥善固定载玻片。
3. 使用明场或荧光照明识别目标细胞。调节焦距,直至能够清晰观察到目标细胞。切勿将物镜移出盖玻片区域,以免造成不必要的划痕。
4. 通过 GFP 信号鉴定绿色荧光蛋白偶联的葡萄糖转运蛋白 4(GFP-GLUT4)。确定用于图像采集的目标细胞。所选目标细胞的位置可被记录以供后续参考(见图 1)。
5. 针对每种目标细胞设置适当的实验参数(包括像素数、激发波长、透射百分比、曝光时间、层厚、时间间隔和总成像时间)。本实验中,GFP 信号的图像像素数设定为 512 × 512(如需更高分辨率,可设为 1,024 × 1,024);每 5 分钟曝光时间为 0.025 至 0.05 秒。微小的横向 x、y 和 z 调整可通过推荐软件进行控制(见材料表)。
6. 将曝光参数设置为约 2,000 至 3,000 计数,以达到最大像素强度。为尽量减少荧光淬灭,请在保持曝光时间小于 1 s 的前提下,尽可能降低激发光透射百分比。对每个额外的荧光通道及每个独立的兴趣区域重复上述步骤。
7. 为每个目标细胞设置Z轴堆栈的上限和下限。可通过移动显微镜载物台,使目标细胞的顶部和底部均略微超出焦平面来实现。用户可通过设定上下限之间采集图像的数量(或通过设定每幅图像之间的距离)来调整Z轴的分辨率。
8. 使用相应的软件(本实验中为 PerkinElmer 公司的 Velocity)对图像堆栈进行去卷积处理,随后进行分析。