所有涉及动物模型的操作均已通过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。
1. 动物灌注
- 配制固定液和灌注缓冲液。
- 通过加入80 g氯化钠(NaCl)、2 g氯化钾(KCl)、21.7 g磷酸氢二钠(Na2HPO4·7H2O)、2.59 g磷酸二氢钾(KH2PO4)以及双蒸水至总体积1 L,配制0.1 M磷酸钠缓冲液。
- 配制4%多聚甲醛(PFA)溶液。
- 将40 g多聚甲醛加入1 L磷酸盐缓冲液(PBS)(0.1 M,pH 7.4)中。
- 将PFA溶液加热至60−65 °C,并使用磁力搅拌器搅拌。
注意:温度不得超过65 °C。 - 用滴管滴加数滴氢氧化钠(NaOH)(1 N),以完全溶解PFA。
- 用中等至细孔滤纸过滤PFA溶液,并于4 °C保存。
注意:该溶液可保存一个月。
- 进行动物麻醉和灌注。
注意:12月龄B6SJL-Tg APP SwFlLon, PSEN1*M146L*L286V, 1136799Vas/J( 5倍家族性阿尔茨海默病 (5×FAD))年龄匹配的对照小鼠(每组n = 6)购自供应商,并在中国台湾彰化师范大学动物房内繁殖。基因分型通过聚合酶链式反应(PCR)确认。人类阿尔茨海默病(AD)脑组织包括死后AD脑组织和年龄匹配的对照组织。- 通过腹腔注射(27 G针头和1 mL注射器)使用适当的麻醉剂(如戊巴比妥钠(390 mg/kg体重)或氯胺酮/赛拉嗪混合物(氯胺酮最高80 mg/kg体重,赛拉嗪10 mg/kg体重))对动物进行麻醉。通过捏压脚趾检查麻醉深度。若动物无反应,则可进行灌注手术。
- 将麻醉后的动物仰卧置于灌注手术托盘上,使用小型虹膜剪在左心室后端做切口。
- 将22 G灌注针插入左心室,并在右心耳处做一小切口以排出灌注液。使用重力驱动灌注系统,使冰冻的灌注液(0.1 M PBS,pH 7.4)流动5−6分钟(流速20−25 ml/min)。
注意:肝脏变清亮是灌注充分的指标。 - 将缓冲液阀门切换至冰冻的4%多聚甲醛溶液进行固定,使其流动8−10分钟。
注意:出现震颤后肢体变硬或僵直是固定良好的指标。 - 使用剪刀从颅骨中取出脑组织。用刮勺收集脑组织并放入装有4% PFA的样品瓶中(体积至少为脑组织的10倍),于4 °C保存以备后续使用。
2. 组织处理
- 切片冷冻切片机切片。
- 将脑组织转移至梯度蔗糖溶液(10%、20% 和 30%)中,于 4 °C 下分别保存 24 小时,直至使用。
- 在 -22 °C 下使用冷冻切片机切取 40 µm 厚的切片。每孔收集 10−20 片切片至含 PBS 和叠氮化钠(0.02%)的 6 孔板中。
3. 将 cur(姜黄素) 与 Aβ 抗体在 Aβ 斑块和寡聚体中进行共定位。
- 在12孔板中用PBS清洗第2.1.2步的冷冻切片,洗涤3次。
- 用含0.5% Triton-X-100的PBS溶解10%正常山羊血清(NGS),室温封闭切片1小时。
- 弃去封闭液,将切片与抗淀粉样蛋白β(Aβ)特异性抗体(6E10或A11,稀释比例1:200)在含10% NGS和0.5% Triton-X-100的新鲜封闭液中于4 °C孵育过夜,摇床转速为150 rpm。
- 弃去抗体溶液,用PBS洗涤切片3次,每次10分钟。
- 在避光条件下,室温下用带有红色荧光染料的二抗(例如Alexa
- 594)孵育1小时。
- 用PBS洗涤3次,每次10分钟。
- 用70%乙醇洗涤1次。
- 用姜黄素(Cur (10 µM))在室温下孵育切片5分钟。
- 用70%乙醇洗涤3次,每次1分钟。
- 依次用90%和100%乙醇各脱水1分钟,再用二甲苯透明2次,每次5分钟,最后用二甲苯可塑剂聚苯乙烯(DPX)封片。
- 使用配备合适激发/发射滤光片的荧光显微镜观察红色和绿色信号。