所有涉及动物模型的实验程序均已通过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。
注意:本方案包含六个主要步骤:病毒注射手术、梯度折射率(GRIN)透镜植入手术、GRIN透镜植入效果验证、基板固定、在行为测试期间对GCaMP(绿色荧光蛋白(GFP)、钙调蛋白(CaM)与肌球蛋白轻链激酶来源的肽段M13的融合蛋白)信号进行光学记录,以及数据处理(图1A)。除手术步骤外,其余均使用商业软件套件(Inscopix)完成。
1. 立体定位手术——腺相关病毒(AAV)注射
注意:本手术所用小鼠品系为 C57BL6/J。手术过程中,小鼠身体需覆盖无菌手术单,所有操作步骤均需佩戴无菌手套进行。通常情况下,不建议在同一天进行多台手术。然而,若必须在同一天对多只小鼠实施相同手术,则每只小鼠应使用独立的一套经高压灭菌的手术器械,并在各只小鼠之间使用70%乙醇对手术器械进行消毒。为在手术过程中维持小鼠体温,将小鼠固定于立体定位仪后,需用定制的手术保温毯覆盖小鼠身体。
- 使用70%乙醇对所有必需的手术器械进行消毒,并准备好Hamilton注射器和玻璃移液管。用蒸馏水填充玻璃移液管。
注意: 本方案中使用的所有手术器械均已进行高压灭菌。由于GRIN透镜和颅骨螺钉不能高压灭菌,因此使用70%乙醇作为消毒剂以防止炎症。尽管尚未尝试,但也可使用其他形式的灭菌方法,例如气体或化学灭菌。 - 通过腹腔注射戊巴比妥钠(83 mg∙kg⁻¹体重)麻醉小鼠。小鼠失去意识后,剃除颅骨表面的毛发。
- 用70%乙醇清洁颅骨上方的皮肤,并将小鼠固定在立体定位仪上。小心地去除皮肤,并使用棉签蘸取35%过氧化氢溶液擦拭颅骨表面。涂抹润滑性眼膏,以防止手术期间角膜干燥。
注意: 尽管通常仅使用70%乙醇进行无菌皮肤准备并无问题,但仍建议交替使用三种消毒剂(例如碘伏或氯己定溶液)和70%乙醇,共进行三轮消毒。本方案中使用较高浓度的过氧化氢,以确保尽可能彻底地去除小鼠颅骨上的结缔组织,这对于减少后续成像过程中的运动伪影至关重要,因为颅骨上的结缔组织会影响基板与颅骨的牢固粘附。需注意的是,35%过氧化氢的浓度远高于常规使用的浓度(3%)。 - 将定位针固定在立体定位探针架上。调整前囟(bregma)和后囟(lambda)的高度,使其与定位针对齐。
- 确定小鼠颅骨上开颅的位置。
注意: 本方案中用于病毒注射的侧杏仁核(LA)坐标为(AP, ML, DV)=(-1.6 mm, -3.5 mm, -4.3 mm),以bregma为参考点(AP:前后方向,ML:内外方向,DV:背腹方向,各缩写表示相对于bregma的轴向距离)。各实验条件应优化相应坐标。 - 钻开颅骨表面(图1B)。用磷酸盐缓冲液(PBS)冲洗颅骨碎屑。使用镊子或27 G针头去除残留组织。
- 钻颅骨时,尽量避免接触最内层的硬脑膜,以防损伤脑组织表面。脑表面受损会导致透镜周围发生炎症,从而在记录过程中引起严重的运动伪影和高自发荧光。开颅直径为1.6 mm。钻头转速为18,000 rpm,钻头尺寸为0.6 mm。
- 为将GRIN透镜从钻孔处的脑组织表面下降至目标杏仁核位置,需计算一个称为“值A”的距离,即从基于bregma设定的透镜植入DV坐标(本例中为4.2 mm,图1C)减去bregma与暴露的脑表面之间的DV差值。
- 在玻璃移液管中加载3 µL矿物油和0.7 µL AAV病毒溶液。
注意: 矿物油有助于分离病毒溶液和水。0.7 µL是针对LA区域病毒注射的优化体积,可充分覆盖LA区域。 - 从立体定位探针架上取下定位针,并将玻璃移液管固定于其上。
- 将玻璃移液管定位至第1.5步所述的注射位点。待出血完全停止后,将玻璃移液管插入脑组织。
- 使用注射泵通过玻璃移液管递送病毒。
注意: 病毒滴度应高于1 × 10¹³ vg/mL,以获得足够数量表达GCaMP的细胞。注射速度为0.1 µL/min,扩散时间为10分钟。若出现出血,用PBS冲洗脑表面。此步骤中需保持脑表面湿润。 - 完成注射后,缓慢取出玻璃移液管。
2. 立体定位手术——梯度折射率(GRIN)透镜植入
注意: GRIN透镜植入手术是本方案中最关键的步骤。由于GRIN透镜移动速度的稳定性至关重要,使用电动手术臂可能非常有帮助。电动手术臂是一种由计算机软件控制的立体定位操纵器。尽管本方案中采用了电动手术臂,但只要在植入过程中能保证透镜移动的稳定性和缓慢性,也可采用其他方法。有关该设备的详细信息见材料表。
- 钻孔颅骨以植入两颗颅骨螺钉。用 PBS 冲洗所有颅骨碎片。
注意: 为减少后续光学成像中的运动伪影,至少需要两颗螺钉。两颗颅骨螺钉与 GRIN 透镜植入位置构成一个等边三角形(图 1B)。开颅区域的尺寸应与螺钉直径紧密匹配。若出现出血,用 PBS 冲洗出血表面。钻头转速为 18,000 rpm,钻头尺寸为 0.6 mm。 - 用 70% 乙醇对螺钉进行消毒,以防止炎症。尽可能深地植入螺钉。
注意: 螺钉应牢固固定,无需额外粘合剂(如骨水泥)。 - 在立体定位框架上安装电动手术臂。将所需硬件连接至安装有控制软件的笔记本电脑(材料表)。
- 在降低 GRIN 透镜之前,准备使用 26 G 针头制作针道。
注意: 针道是一种引导通道,有助于将相对较粗的 GRIN 透镜植入杏仁核等深部脑区,而不会在注射路径上造成严重的脑结构扭曲。此引导通道被称为针道,因其通过相对细的 26 G 针头的下降和提升操作形成。 - 将套管夹持器安装到立体定位框架上,以稳定固定针头。
- 用套管夹持器夹持 26 G 针头,并计算针头插入位置的坐标。
注意: 在本方案中,针头插入位置的坐标为病毒注射位点外侧 50 µm 处(AP, ML, DV)= (-1.6 mm, -3.55 mm, -3.7 mm)。 - 启动控制软件并完成针头位置操控的准备工作。
- 运行控制软件,点击 Start new project 按钮以开始控制会话。
注意: 在控制会话中,有多个空白输入框和菜单按钮。空白框用于输入坐标。在空白框中输入坐标后,点击 Go To 按钮即可移动电动立体定位臂。当立体定位臂移动时,Go To 按钮将变为 STOP 按钮。在多个菜单按钮中,本方案仅需使用 Tool 按钮。 - 点击 Tool 按钮。通过点击 Calibrate the frame 菜单按钮校准控制软件。校准是将操纵器的实际位置设定为 Stereodrive 软件中数值的过程。
- 使用立体定位操纵器将针头尖端定位至颅骨表面暴露的脑组织表面。
注意: 针头移动速度通过 Tool 菜单中的 Microdrive speed 菜单设定。默认速度为 3.0 mm/s,但建议本步骤使用 0.5 mm/s。针头移动由方向键控制。 - 滴加 2–3 滴 PBS 以保持脑表面湿润。在计算机屏幕的空白框中填入适当的 LA 区 DV 坐标。若脑表面干燥,会阻碍针头穿透脑组织。
- 点击 Go To 按钮降低 26 G 针头。当针头到达由 DV 坐标设定的目标位置时,将自动停止。针头移动速度为 100 µm/min。若出现出血,点击 STOP 按钮暂停针头移动,并用 PBS 冲洗脑表面。本步骤中需持续保持脑表面湿润。待出血停止后,继续降低针头。
- 当针头完全停止移动后,在计算机屏幕的空白框中输入 45.00 mm。
注意: 45.00 mm 是使针头返回起始位置的 DV 坐标值。 - 点击 Go To 按钮提升针头。针头移动速度为 100–200 µm/min。
- 当针头停止移动后,清除脑表面的 PBS。从立体定位框架上卸下针头和套管夹持器。必要时,实验人员可手动点击 STOP 按钮停止针头。
- 将透镜夹持器安装至立体定位杆上。将 GRIN 透镜装入透镜夹持器。
注意: 本方案使用针对 LA 区优化的 GRIN 透镜(直径 0.6 mm,长度 7.3 mm)。若无透镜夹持器,可使用止血钳夹持 GRIN 透镜作为替代方法。 - 用 70% 乙醇对透镜进行消毒,并将立体定位杆安装至立体定位框架上。
- 将 GRIN 透镜尖端定位至颅骨表面指定位置(方法同步骤 2.8 所述)。
注意: GRIN 透镜的坐标为 (AP, ML, DV) = (-1.6 mm, -3.55 mm, -4.2 mm)(图 1C)。透镜不应接触颅骨,以避免损伤其尖端。 - 通过从步骤 2.16 所述的透镜植入 DV 坐标中减去“值 A”的绝对值,计算新的 DV 坐标。
- 在脑表面滴加 2–3 滴 PBS。在计算机屏幕的空白框中输入降低透镜 1000 µm、提升透镜 300 µm 的数值。
- 重复降低(向下 1000 µm)和提升(向上 300 µm)GRIN 透镜的操作,直至到达目标位置。此上下移动程序有助于释放因透镜下降而在脑组织内部产生的压力,否则可能导致植入路径上的脑结构扭曲。
注意: GRIN 透镜移动速度为 100 µm/min。即使出现出血,也不要停止 GRIN 透镜的移动,并用 PBS 冲洗脑表面。本步骤中需持续保持脑表面湿润。若脑表面干燥,脑组织会粘附于 GRIN 透镜表面,导致脑结构扭曲。 - 当 GRIN 透镜到达目标位置后,清除 PBS,并小心地在 GRIN 透镜、螺钉及其侧壁周围涂抹树脂牙科水泥(图 1D)。
注意: 在整个颅骨上涂抹树脂水泥可能减少运动伪影。相反,若树脂水泥意外覆盖附着于颅骨的肌肉,则会增加运动伪影。 - 待树脂牙科水泥硬化后,将 GRIN 透镜从透镜夹持器上拆下,并在整个颅骨上涂抹丙烯酸水泥(图 1D)。
- 为安装头板,将透镜夹持器从立体定位杆上拆下,并使用胶带将头板固定在杆的末端。确认头板是否水平。
注意: 倾斜的头板会导致视野倾斜。头板用于在移动家庭笼系统中固定小鼠头部(见底板安装部分)。若实验人员不使用该系统,可跳过本步骤(步骤 2.22)及后续步骤 2.23。 - 缓慢降低定位杆,直至头板位于透镜套管顶部。再将头板降低 1000 µm。移动头板,使已植入的 GRIN 透镜位于头板内环的右侧边缘。
注意: 头板应低于已植入的 GRIN 透镜表面;否则,由于丙烯酸水泥的存在,微型内窥镜无法足够接近已植入的 GRIN 透镜以调节焦平面。 - 涂抹丙烯酸水泥将头板固定于水泥层上(图 1D)。
- 在已植入的 GRIN 透镜表面覆盖一层石蜡膜,以保护透镜表面免受灰尘污染。然后在石蜡膜上涂抹可移除的环氧胶,以固定石蜡膜在透镜表面的位置。
- 在小鼠腹腔内注射镇痛药卡洛芬(Carprofen,0.5 mg/mL in PBS)和抗炎药地塞米松(Dexamethasone,0.02 mg/mL in PBS)溶液。
注意: 药物剂量根据体重确定:卡洛芬(5 mg∙kg⁻¹ 体重),地塞米松(0.2 mg∙kg⁻¹ 体重)。手术后及术后 7 天内每日给药一次。 - 在家庭笼饮用水中加入 0.3 mg/mL 的抗生素阿莫西林(amoxicillin),持续给药 1 周。
- 将小鼠放回家庭笼,并给予 5–8 周恢复期以完成病毒转导。
注意: 小鼠在电热毯上的预热笼中恢复,直至从麻醉中苏醒。
3. GRIN 透镜植入的验证
注意:GRIN 透镜植入的验证可提供信息,判断植入的 GRIN 透镜是否准确对准表达 GCaMP 的细胞。基于此信息,实验人员可排除透镜植入位置偏差的动物,从而避免在耗时的行为测试和数据处理上浪费时间。在验证过程中,应将表达 GCaMP 的细胞聚焦于记录视野中。此步骤使用一种可移动的饲养笼。可移动饲养笼是一种特制的圆形装置,允许头部固定的实验小鼠在验证 GRIN 透镜植入和基板固定时自由活动其腿部。该装置配备一个气浮台,用于支撑头部固定小鼠的腿部,使其在头部固定的同时仍能自由移动腿部。杏仁核外侧核的细胞在静息或麻醉状态下通常处于静默状态,因此在这些条件下很少能检测到 GCaMP 荧光信号,这使得在验证 GRIN 透镜植入和基板固定时很难甚至无法定位表达 GCaMP 的细胞。然而,腿部的运动常会引发杏仁核外侧核细胞中 GCaMP 荧光信号的出现,从而有助于显微镜的定位。因此,本实验方案中使用可移动饲养笼。
- 将立体定位仪组装到移动式家庭笼系统中。
- 用1.5%异氟烷气体麻醉小鼠。待小鼠完全失去意识后,将其放置于移动式家笼系统的头固定杆上。
- 将碳笼置于小鼠下方。关闭碳笼并打开气流,使笼子能够无摩擦自由移动。等待数分钟,直至小鼠恢复活跃状态。
注意: 气流速度应针对每种实验条件进行优化(此处为100 L/min)。 - 移除植入的GRIN透镜表面的石蜡膜和环氧树脂胶,并使用镜头纸蘸取70%乙醇擦拭透镜表面。
- 准备数据采集(DAQ)软件(例如 Inscopix),设置成像条件。
注意: DAQ 软件用于控制显微镜(发光二极管(LED)功率、镜头焦距等).)和数据存储。- 打开数据采集箱,并将显微镜连接至该设备。然后,使用数据线直接连接或通过无线网络将其连接到笔记本电脑。
注意: 数据采集软件安装在称为数据采集盒(DAQ盒)的额外硬件中(例如 Inscopix)。通过将 DAQ 盒连接到笔记本电脑,即可在笔记本电脑上访问数据采集软件。 - 通过互联网浏览器访问DAQ软件(推荐使用Firefox)。
- 设置所有必要信息(日期、小鼠编号等).) 在 定义的实验环节然后点击 保存并继续保存后,访问 运行实验.
- 在 运行实验设置成像条件,如曝光时间、增益、电子对焦和曝光LED功率。
注意: 增益和曝光-LED 功率可根据实验室条件进行调整。电聚焦的推荐值为 500,曝光时间为 50 ms。对 LED 功率和增益的调整没有限制。然而,较高的光照强度可能导致更明显的漂白。录像的曝光时间决定了视频录制的帧率。较高的帧率会降低信号强度。应根据成像所用的 GECIs 优化帧率。
- 将显微镜固定在立体定位操纵器上时,需将立体定位杆通过显微镜夹持器连接至立体定位操纵器。
注意: 夹持器是一种小型附件,可安装在立体定位仪上,用于固定显微镜主体,以便将其放置到目标脑区位置。 - 用显微镜夹持器固定显微镜。打开连接显微镜的LED光源,并将显微镜调整至垂直位置。一边观察成像,一边降低显微镜,直至植入的GRIN透镜表面清晰可见。
- 将植入的GRIN透镜中心与视野中心对齐。
注意: 此步骤可用于验证GRIN透镜植入效果(见结果部分所述) 图2B,图2D,图2F). - 拍摄植入的GRIN透镜表面图像(点击 Prt Sc 键盘上的按钮)。植入的GRIN透镜表面的图像在后续数据处理过程中用于取消选择非神经元成分(步骤6.8)。
- 找到显微镜的合适位置。在观察图像的同时缓慢提升显微镜的物镜,以寻找表达GCaMP7b的细胞。
注意: 可能需要调整图像采集的增益或曝光LED的功率。此步骤可用于验证GRIN透镜的植入效果(见结果部分所述)。 图2A,图2C,图2E).