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使用全内反射荧光显微镜进行细胞成像

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2025年6月17日

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来源:Daniele, F., 利用全内反射荧光显微镜和pH敏感型GFP探针评估SH-SY5Y神经母细胞瘤细胞中神经递质囊泡动力学:细胞成像与数据分析。J. Vis. Exp. (2015)。

本视频展示了利用全内反射荧光(TIRF)显微镜对人神经母细胞瘤细胞进行成像,以观察荧光标记的突触小泡。首先在落射荧光模式下对细胞进行聚焦,随后调整参数以实现全内反射,产生倏逝波,选择性激发靠近细胞膜的荧光分子。在进行TIRF成像前,需配置采集参数并设定采样频率。

方案

1. 细胞培养与转染

  1. SH-SY5Y 细胞培养
    注意: 本实验使用人神经母细胞瘤 SH-SY5Y 细胞(ATCC# CRL-2266)。SH-SY5Y 细胞以悬浮细胞团和贴壁细胞的混合形式生长。请遵循本方案中所述的操作说明(如细胞密度、传代比例等),以获得牢固贴附于玻璃盖玻片的细胞,这对于全内反射荧光显微镜(TIRFM)至关重要。
    1. 开始前,在超净台内配制适量无菌磷酸盐缓冲液(PBS)和培养基。
      1. 配制 50 ml PBS 溶液,含 150 mM 氯化钠(NaCl)、24 mM 磷酸盐缓冲液,pH 7.4。过滤溶液。
      2. 配制 50 ml 细胞培养基:含高糖 Dulbecco 改良 Eagle 培养基(DMEM)、10% 热灭活胎牛血清(FBS)、青霉素(100 U/ml)、链霉素(100 µg/ml)、L-谷氨酰胺(2 mM)和丙酮酸钠(1 mM)。过滤溶液。
    2. 弃去完全培养基,用 3 ml PBS 洗涤细胞。
    3. 加入 2 ml 0.05% 胰蛋白酶-乙二胺四乙酸(EDTA)(适用于 6 cm 培养皿),在 37 °C、5% CO2 条件下孵育 5 分钟,用移液器吹打使细胞脱落。
    4. 加入 2 ml DMEM 终止胰蛋白酶消化作用,300 x g 离心 5 分钟收集细胞。
    5. 弃去上清液,向细胞沉淀中加入 1 ml DMEM,反复吹打至细胞充分分散为单细胞悬液。
    6. 按 1:4 比例传代至新的含 3 ml 完全培养基的 6 cm 培养皿中。将细胞置于 37 °C、5% CO2 培养箱中培养。每周传代一次,或当细胞覆盖培养皿表面面积达 80–90% 时进行传代。
  2. 用于成像的 SH-SY5Y 细胞接种
    1. 进行 TIRFM 实验时,需将细胞接种于玻璃盖玻片上。使用厚度为 0.17 ± 0.005 mm、折射率为 1.5255 ± 0.00015 的玻璃盖玻片。开始前,按以下步骤处理盖玻片:
      1. 用 90% 乙醇浸泡玻璃盖玻片过夜(O/N)。
      2. 用蒸馏水彻底冲洗(更换蒸馏水三次),并在干燥烘箱中干燥。
      3. 将盖玻片放入玻璃培养皿中,于预热至 200 °C 的烘箱中灭菌 3 小时。
    2. 转染前一天,将每片盖玻片放入 3.5 cm 培养皿中,加入 1 ml 培养基,在 37 °C、5% CO2 培养箱中孵育过夜。
    3. 按照步骤 1.1.3–1.1.5 所述方法进行胰酶消化,将细胞沉淀重悬于 1 ml 完全培养基中并计数。计算每孔加入细胞悬液的合适体积,使每孔细胞数量为 3 × 105 个。该密度对于细胞最佳生长和高效转染至关重要。在 37 °C、5% CO2 培养箱中孵育过夜(O/N)。
  3. 使用聚乙烯亚胺(PEI)对 SH-SY5Y 细胞进行转染
    注意: 为观察突触小泡动态,本实验使用含有 synapto-pHluorin 的 pCB6 载体。synapto-pHluorin 是通过将一种 pH 敏感型绿色荧光蛋白(GFP)变体与囊泡膜蛋白 synaptobrevin 2 进行同框融合而构建的。该载体已被广泛用于研究神经元中突触小泡的特性。
    1. 开始转染前,配制以下溶液各 10 ml。溶液最多可保存 1 个月。
      1. 配制 150 mM NaCl 溶液,用 0.01 N 盐酸(HCl)调节 pH 至 5.5。
      2. 在 150 mM NaCl 溶液中配制 10% 聚乙烯亚胺(PEI;25 kDa 线性)溶液。溶液 pH 升至 8.8,用 0.01 N HCl 调节 pH 至 7.8。
    2. 接种细胞 24 小时后,弃去原培养基,更换为 1.5 ml 完全培养基。将细胞继续置于 37 °C、5% CO2 培养箱中培养。
    3. 在超净台内,于 1.5 ml 微量离心管中,每 3.5 cm 培养皿加入 3 µg 质粒 DNA、25 μl 150 mM NaCl 溶液和 100 μl PEI 溶液。
    4. 涡旋 10 秒,室温(RT)孵育 DNA/PEI 混合物 30 分钟。
    5. 将 DNA/PEI 混合物小心加入含细胞和盖玻片的培养皿中,轻轻摇晃使试剂均匀分布。
    6. 4 小时后更换培养基,继续在 37 °C、5% CO2 培养箱中孵育过夜(O/N)。转染后 24–48 小时进行成像实验。

2. 通过TIRFM进行细胞成像

  1. 成像设置
    1. 使用图1中描述的装置进行全内反射荧光(TIRF)成像。该装置包括一台电动倒置显微镜(图1,插图A)、激光光源(图1,插图B)和TIRF滑块(图1,插图C)。通过高数值孔径(NA 1.45 Alpha Plan-Fluar)100倍油浸物镜实现TIRFM照明。
    2. 对于TIRFM照明,采用多谱线(458/488/514 nm)100 mW氩离子激光器。使用单模光纤将线偏振激光通过TIRF滑块引入光路。将TIRF滑块插入反射光路的视场光阑平面。
      1. 对于宽场照明,将显微镜连接至常规汞短弧灯HBO白光源。滑块中的保偏双棱镜可实现TIRF照明与白光的同时组合。
    3. 使用安装在滤光轮上的激发滤光片(带宽488/10 nm)对激光进行滤光,并将其引入激光光路。采用高速、软件控制的快门,以实现对激光照明的快速调控。对于pHluorin分析,安装带通发射滤光片(525/50 nm)。使用Image ProPlus软件在冷却的快速CCD相机上采集数字图像(512 × 512像素)。
  2. 实现TIRF照明(图2
    1. 开启激光器、计算机、相机、滤光轮和快门控制器;实验开始前等待20分钟,以便激光器预热并稳定。
    2. 成像前,配制适量以下溶液。
      1. 配制50 ml Krebs(KRH)溶液:125 mM NaCl、5 mM氯化钾(KCl)、1.2 mM硫酸镁(MgSO4)、1.2 mM磷酸二氢钾(KH2PO4)、25 mM 4-(2-羟乙基)哌嗪-1-乙磺酸(HEPES)(调至pH 7.4)、2 mM氯化钙(CaCl2)和6 mM葡萄糖。
      2. 配制10 ml KCl-KRH溶液(pH 7.4):80 mM NaCl、50 mM KCl、1.2 mM MgSO4、1.2 mM KH2PO4、25 mM HEPES(调至pH 7.4)、2 mM CaCl2和6 mM葡萄糖。
    3. 取下带有转染细胞的玻璃盖玻片,并将其插入适当的成像室中。组装成像室,并在玻璃中央加入500 µl KRH溶液。
    4. 在物镜上滴加浸油。将成像室放置于显微镜载物台上,使物镜位于盖玻片下方。在样品上方放置安全防护罩。
    5. 在落射荧光模式下,对焦至盖玻片(上表面),并选择位于成像室中心的转染细胞。选择那些在曝光时间低于80毫秒时即可清晰记录荧光信号的细胞。
    6. 在软件控制下,切换至实时TIRF照明模式。
    7. 为设定TIRF配置,请检查从物镜射出并在样品盖上形成的光束位置(图2B)。当光束位于物镜中心时(图2A,左),TIRF样品盖中心可见一个光斑(图2B,左),此时细胞处于落射荧光成像模式(多个焦平面,背景荧光较强;图2C,左)。
    8. 为达到临界角,使用TIRF滑块上的角度调节螺丝(图1C)沿Y方向(前后)移动聚焦光斑(图2B,中)。当光束以大于临界角的角度汇聚于样品平面时(图2A,右),光斑消失,在样品盖中央出现一条清晰、细直的聚焦线(图2B,右)。
    9. 使用细胞样品精细调节TIRF角度(图2C)。在视频中观察荧光图像。此阶段仍可见类似落射荧光的图像。轻轻旋转调节螺丝,直至达到TIRF条件:仅细胞的一个光学层面处于焦点(即与盖玻片接触的质膜)。此时获得高对比度的平面图像(图2C,右)。
  3. 样品成像
    1. 设置单通道时间序列实验。为最小化光漂白,采用低曝光时间与高增益进行图像采集。合适的曝光时间为40–80毫秒。以1–2 Hz的采样频率采集图像。囊泡动力学可在更高频率(10 Hz)下更清晰地观察。常规观察时间通常为2分钟。

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结果

全内反射荧光显微镜(TIRFM)装置示意图;光学激发过程。

图1. TIRF显微镜装置。TIRF显微镜系统的示意图及图像(插图)。 该装置包括Axio Observer Z1电动倒置显微镜(A)、多谱线100 mW氩离子激光器(B)和TIRF滑块(C)。图中显示了激光(绿线)和白光(黄线)。使用100 ×油浸物镜对细胞进行成像。数字图像由冷却的RetigaSRV Fast CCD相机采...

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材料

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