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小鼠皮质神经元轴突分支的实时体外成像

2025年6月17日

本文内容

摘要

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资料来源:Winkle, CC 等人。 利用组合方法来定义质膜递送在轴突分支和神经元形态发生过程中的作用。J. Vis. Exp.(2016年)

该视频演示了一种使用差分干涉对比 (DIC) 显微镜观察皮质神经元中实时轴突分支的实时成像技术。延时视频捕捉了 netrin-1 处理的效果,netrin-1 是一种信号分子,可诱导轴突中的局部胞吐作用和细胞骨架重排。这些过程启动膜突起,发育成成熟的轴突分支,为神经元发育提供了见解。

方案

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1. 轴突分支的微分干涉对比度 (DIC) 延时显微镜

注意:虽然该协议使用 DIC,但其他透射光显微镜方法可用于相同的目的(例如:相差)。

  1. 体外 (DIV) 2 天时,将含有未转染神经元的玻璃底成像皿放入预热的环境室中,以保持 5% CO2 和 37 °C 的潮湿环境。使用配备 60 倍平面复消色差、1.4 数值孔径 (NA) DIC 物镜和高 NA 聚光镜的显微镜,以获得最佳图像质量和分辨率。
  2. 调整焦平面,使用透射光照明通过眼镜找到神经元。
  3. 使用成像软件上的多区域采集功能,查找并保存至少 6 个细胞的 XYZ 位置。放置载物台,使感兴趣的神经元适合视野内,以获得最佳结果。
    1. 用 250 ng/ml netrin-1 刺激,然后按"开始多区域采集"。每 20 秒在每个位置按顺序采集图像,持续 24 小时,暂停采集并根据需要重新聚焦。
  4. 使用 Apps>Review Multi Dimensional Data>open 文件名查看成像软件中的图像。识别在成像过程中形成的稳定轴突分支(20μm长)。使用绘制线工具测量从轴突底部到尖端的稳定轴突分支,以确保满足 20 μm 长度的资格。
    1. 在电子表格中,记录膜突起在后来形成分支的区域开始时的 netrin 刺激后的帧数,以及当新生分支长度达到 20 μm 时的 netrin 刺激后的帧数。
    2. 突起和分支形成之间的帧数乘以 20 秒,以计算每个分支的形成时间。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
35mm 玻璃底活细胞成像培养皿Matek Corporationp356-1.5-14-C必须涂有 1mg/mL 聚 d-赖氨酸,并在接种细胞前冲洗
奥林巴斯 IX81-ZDC2 倒置显微镜奥林巴斯
Lambda LS 氙灯Sutter Instruments Company
环境舞台顶部培养箱Tokai Hit
100x 1.49 NA TIRF 物镜奥林巴斯
安多 iXon EM-CCD安道奥
德赛 Licor 红外成像系统LI-COR奥德赛 CL-X用于扫描印迹
Image studio 软件套件LI-COR 用于在 Odyssey 红外系统上扫描;Image studio lite 用于印迹的离线分析
OlympusMolecular devices, LLC版本 7.7.6.0DIC 延时摄影的所有成像和分析的软件
CELL TIRF 控制软件Olympus 软件用于控制 TIRF 成像激光
斐济(图像 J)NIHImageJ 版本 1.49t
60x 平面复消色差 1.4 NA 物镜奥林巴斯
40x 1.4 NA 计划复消色差物镜奥林巴斯
Neurobasal 培养基GIBCO21103-049用于无血清和胰蛋白酶猝灭培养基的基础溶液
剂 B27GIBCO17504-044500ml/50mLs 无血清培养基和胰蛋白酶猝灭培养基
L-谷氨酰胺 35050-0611mL/50mLs 无血清培养基
血清Corning/CELLGRO35-010-CV
汉克平衡盐溶液 (HBSS)Corning/CELLGRO20-021-CV
聚 D-赖氨酸Sigmap-7886
用于 器 补充胎牛

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