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取一个含有IgG的聚合物涂层玻底培养皿-经调理的红细胞或红细胞黏附在其表面。
将培养皿置于全内反射荧光显微镜载物台上,并保持其处于生理温度。
加入含有荧光标记的细胞质肽的巨噬细胞,这些肽可结合聚合的肌动蛋白,从而促进细胞骨架的可视化。
成像过程中,将激光束以大于临界角的角度照射至接触点,引发全内反射并在接触面产生倏逝波。
倏逝波选择性地照射玻璃-样品界面处的荧光分子,从而实现对吞噬作用的实时可视化观察。
巨噬细胞的 Fc 受体与 IgG 包被的红细胞结合,导致受体在接触区域周围聚集。
聚集会触发细胞内信号通路和GTP酶活化,驱动肌动蛋白聚合和动力蛋白募集,从而形成伪足。
伪足延伸包裹红细胞,形成吞噬杯。
最终,伪足末端融合。积累的发动蛋白介导吞噬体与细胞膜分离,从而将调理过的红细胞内化。
对于SRBCs的非共价固定,将2毫升IgG调理的细胞加入每个聚赖氨酸包被的培养皿中,并在摆动转子离心机中离心样品。弃去上清液,用2毫升含10% BSA的PBS洗涤颗粒一次。
然后,将颗粒与2毫升新鲜PBS加10% BSA在室温下孵育30分钟,随后用2毫升PBS洗涤三次。最后一次洗涤后,弃去PBS,加入2毫升37°C无血清显微镜成像培养基。
将一个涂有SRBC的培养皿放置在显微镜载物台上。然后,从培养皿底部刮取转染的靶细胞,并用移液器反复吹打几次以获得单细胞悬液。将转染的细胞加入SRBC包被的培养皿中。
启动实时采集软件。寻找表达荧光标记蛋白的细胞,并调整培养皿的位置,使目标细胞位于视野中央。在单一激发波长下,以0.01度为步长,从0至5度范围内不同角度采集500张图像。
为了确定入射光在玻璃-介质界面发生全反射并产生倏逝波的临界角,请在适当的成像软件中打开图像序列。在细胞中选择一个荧光均匀的感兴趣区域。
然后,在 Image 选项卡下,选择 Stacks 并绘制 Z 轴轮廓图。以 X 轴上的角度函数,绘制在感兴趣区域内测得的 Z 轴轮廓平均荧光强度。在显微成像过程中,X 轴上任何大于临界角的角度值均可用于获取全内反射荧光(TIRF)信号。