Artículo de método

Visualización vascular basada en microscopía multifotónica: una técnica de imagen asistida por dispositivo de estabilización para obtener imágenes multidimensionales de vasos sanguíneos en hígado de ratón

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

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Fuente: Rongrong, W. et al. Observación microscópica multifotónica de vasos en tejido hepático de ratón. J. Vis. Exp. (2021)

Este video describe un procedimiento de imagen para observar y estudiar la dinámica intravascular de un tejido hepático de ratón utilizando microscopía multifotónica después de la estabilización del órgano. La microscopía multifotónica permite obtener imágenes de tejido biológico in vivo con alta resolución espacial.

Protocolo

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Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

1. Preparación del ratón

  1. Anestesiar al ratón
    1. Prepare pentobarbital sódico (50 mg/kg) en una jeringa.
    2. Agarre al ratón (macho C57BL/6 de 8 semanas) con la mano izquierda de modo que su vientre quede hacia arriba y su cabeza esté más baja que su cola. Desinfectar la piel abdominal con alcohol al 75%.
    3. Sosteniendo la jeringa en la mano derecha, perfore la línea blanca del abdomen con la aguja ligeramente hacia el lado derecho de la piel de 3 a 5 mm. Asegúrese de que la aguja de la jeringa y la piel estén en un ángulo de 45°, inyecte el pentobarbital lentamente en la cavidad abdominal. Después del afeitado, desinfecte alrededor del sitio de la incisión del ratón 3 veces alternativamente con alcohol al 75% y solución de clorhexidina.
    4. Compruebe si la anestesia fue exitosa por la falta de un reflejo de enderezamiento.
  2. Inyecte el isotiocianato de rodamina B-dextrano en la vena caudal.
    1. Prepare 100 μL de 10 mg/mL de isotiocianato de rodamina B-dextrano en una jeringa.
    2. Limpia la cola del ratón con alcohol al 75%.
    3. Sostenga la cola con la mano izquierda, sostenga la jeringa con la mano derecha con la aguja paralela a la vena e inyecte el tinte de 100 μL.
    4. Detenga el sangrado con un hisopo de algodón después de la inyección.
  3. Remoja el pelaje abdominal del ratón con una gasa humedecida con agua estéril y afeita el abdomen del ratón con una navaja, haciendo trazos en la dirección del pelaje. Después del afeitado, desinfecta alrededor del sitio de la incisión del ratón 3 veces alternativamente con alcohol al 75% y solución de clorhexidina.
  4. Después de limpiar una almohadilla térmica con alcohol al 75%, abra la almohadilla térmica y coloque el mouse boca arriba en la almohadilla térmica para mantener su temperatura corporal a 37 ° C.

>2. Fijando el hígado de ratón con el marco de imágenes de órganos del cuerpo

NOTA: El marco comercial de imágenes de órganos aún no ha sido publicado.

  1. Coloque una ventosa limpia en una posición fija.
  2. Instale un dispositivo de imágenes de órganos (Figura 1) y limpie la almohadilla térmica y la ventosa con alcohol al 75%.
  3. Conecte la ventosa (5 mm de diámetro) a la manguera de la bomba de vacío y encienda la bomba de vacío.
  4. En una mesa estéril esterilizada con alcohol al 75%, se desinfecta alrededor del sitio de la incisión del ratón 3 veces alternativamente con alcohol al 75% y solución de clorhexidina, luego se desinfecta alrededor del sitio de la incisión del ratón 3 veces alternativamente con alcohol al 75% y solución de clorhexidina, luego se usan tijeras quirúrgicas para cortar 2 cm de piel del borde esternal inferior del ratón y exponer el hígado.
  5. Coloque el mouse junto con la almohadilla térmica en la base del soporte.
  6. Ajuste el dispositivo de imágenes de órganos para que la ventosa sostenga el hígado. A continuación, utilice una presión negativa de 30-35 kPa para la succión, de modo que el hígado se adhiera a la ventosa (Figura 2).

>3. Ajuste del microscopio de barrido láser multifotónico

  1. Encienda el microscopio multifotónico y seleccione el objetivo de 60x/1,00 W.
  2. Fije el marco y el mouse debajo de la lente del objetivo.
  3. Agregue una gota de solución salina normal que pueda cubrir toda la lente, que es el centro de la ventosa, y ajuste la lente del objetivo para que solo toque la solución salina normal.
  4. Haga doble clic en el icono de la computadora para encender el software láser y encender el interruptor. A continuación, mantenga pulsado el botón de encendido y el obturador durante 3 s.
  5. Ajuste la longitud de onda a 800 nm.
  6. Inicie el software operativo del microscopio usando la computadora.
  7. Para la configuración de adquisición, establezca Láser 800.

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Resultados

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Figura 1: Marco de imágenes de órganos corporales.(a) Almohadilla térmica: Mantiene la temperatura corporal del ratón. (b) Soporte: Puede proporcionar una base para colocar el ratón y la posición de la ventosa ajustable con perillas. (c) Venta: Se fija mediante el soporte. La presión negativa proporcionada por la bomba de presión nega...

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Jeringa de 1 ml x 2 Tecnología de dispositivos médicos de Hunan Pinan YA0551
Almohadilla térmica de 5 WTecnología BiolinkOpticsBL336
75% de etanol absolutoGuangdong Guanghua Ciencia y Tecnología1.17113.023
Bola de algodón absorbenteReino del Saneamiento Saludable
Instrumento quirúrgico para ratonesRWD Ciencias de la VidaSP0001-GIncluye tijeras y pinzas
Microscopía multifotónicaOlimpoFV1200MPE
Dispositivo de imagen de órganosTecnología BiolinkOpticsBL336Incluye ventosa, manguera, bomba de presión negativa y soporte
Isotiocianato de rodamina B-DextranosigmaR9379
Pentobarbital sódico sigma P3761-25G
Máquina de afeitarLei WaRE-3201

Reimpresiones y permisos

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Etiquetas

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