Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

Artículo de método

Aislamiento de ovario de ratón neonatal: un procedimiento quirúrgico para extraer un par de ovarios a partir de un modelo de ratón neonatal

4.5K visualizaciones

⸱

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: et al. Morgan, S. Cultivo y cocultivo de ovarios de ratón y folículos ováricos. J. Vis. Exp. (2015).

En este video, describimos un procedimiento quirúrgico para aislar ovarios de un ratón neonatal.

Protocolo

Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

1. Disección y cultivo de ovario neonatal

  1. Coloque 1 mL de medio de disección (disuelva 3 mg/mL de BSA en medio Leibowitz L15 y filtre la esterilización a través de un filtro de poro de 0,2 μm y 25 mm de diámetro) en cada placa de embrión de vidrio estéril.
  2. Sacrificio de crías de ratón neonatales de entre el día 0 y 5 postnatal, sacrificadas por decapitación.
  3. Agarre la piel que cubre la pared abdominal con un par de pinzas de disección finas y haga una incisión grande en la piel y la pared del cuerpo. Abra la incisión para que todo el abdomen quede expuesto. La vejiga suele estar congestionada en esta etapa y se puede perforar para facilitar la disección.
  4. Aparta las tripas con unas pinzas de relojero. Siga los cuernos uterinos desde la vejiga hasta el riñón a cada lado. El ovario se encuentra justo debajo del riñón en la parte superior del útero y aparecerá como una estructura similar a una nube bajo un microscopio de disección.
  5. Agarre el ovario suavemente con pinzas de relojero y use unas tijeras para cortar su unión al útero. Transfiera el par de ovarios a placas de embriones que contengan medio de disección precalentado.
  6. Realizar la disección fina de los ovarios bajo un microscopio de disección en una platina calentada (37 °C). Use agujas de insulina para recortar el saco bursal y cualquier exceso de material, incluida la trompa de Falopio, hasta que solo quede el ovario.
  7. Transfiera cada ovario al pocillo de una placa de cultivo con una pipeta de vidrio curvo finamente estirada.

Acceso restringido. Inicie sesión o comience una prueba gratuita para ver este contenido.

Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Leibowitz L15Invitrogen11415049
αMEMInvitrogen22571020Se suministra en forma de bicarbonato de sodio tamponado (2.200 mg/L)
Albúmina sérica bovinaSigma AldrichA9418Para medio de disección
Albúmina sérica bovinaSigma AldrichA3311Para el medio de cultivo
Albúmina sérica bovinaSigma AldrichA2153Para el recubrimiento de pipetas de vidrio
FshMerck SeronoGonal FA menudo es necesario realizar pruebas por lotes. Prepare la solución madre de 1 UI/10 μL en αMEM y almacene a -20 °C
Filtros de jeringa (25 mm, 0,2 μm) Greiner 16532K Filtro de acetato de celulosa para filtrar volúmenes mayores (>5 mL) de medio.
Tubos estérilesGreiner187261
Placa de 24 pocillosGreiner662160
Agujas de insulinaSuministros médicos BD037-76060,33 mm (29 g) + 1 ml
Platos de embriones de vidrioVWR720-0579Esterilizar, luego calentar antes de usar
Pipetas de vidrioFisher Científico10209381Recubrimiento BSA antes de su uso
Agujas de acupunturaAcumedic LTD30 mm x 0,25 Tipo C
Solución de formalina, tamponada neutra, 10%Sigma AldrichHT5014-120mL
Membranas de nucleóforos de WhatmanCamlabWN/110414Superficie brillante, policarbonato, 13 mm de diámetro, tamaño de poro de 8,0 μm

Etiquetas

Ovarios de ratones neonatoscuernos uterinosmicroscopio de disecciónbolsa ováricaplaca de cultivoagujas de insulinamedio de disección calienteplaca multipuerto