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Modelado de accidente cerebrovascular fototrombótico en modelo de ratón: una técnica de iluminación láser a través del cráneo de ratón después de la administración de un tinte fotosensible para inducir fototrombosis

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

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Fuente: Llovera, G. et al. Modelando el ictus en ratones: lesiones corticales focales por fototrombosis. J. Vis. Exp. (2021)

Este video muestra el procedimiento para generar un accidente cerebrovascular fototrombótico en un modelo de ratón mediante la iluminación láser de un cráneo intacto después de la administración de un tinte fotosensible.

Protocolo

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Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

1. Preparación del animal

  1. Inyectar analgesia 30 min antes de la cirugía (4 mg/kg de carprofeno y 0,1 mg/kg de buprenorfina).
  2. Registre el peso corporal del ratón para ajustar la dosis de Rosa de Bengala que se inyectará (10 μL/g, es decir, 100 μg/g).
  3. Colocar el ratón en la cámara de inducción con un caudal de isoflurano del 4% para anestesiarlo hasta que se detenga el movimiento espontáneo del cuerpo y las vibrisas.
  4. Transfiera el ratón al marco estereotáctico y colóquelo en posición prona con la nariz dentro de la máscara de anestesia. Fijar el animal y mantener la concentración de isoflurano al 4% durante 1 min. A continuación, reduzca y mantenga la concentración de isoflurano al 2%.
  5. Inserte suavemente la sonda rectal para controlar la temperatura durante los procedimientos quirúrgicos. Configure la almohadilla térmica asociada controlada por retroalimentación para mantener la temperatura corporal del mouse a 37 °C.
  6. Aplique el ungüento oftálmico de dexpantenol en ambos ojos y limpie la piel y el pelaje circundante con un agente desinfectante.

>2. Modelo de fototrombosis

  1. Haga una incisión longitudinal de 2,0 a 2,5 cm y retraiga para exponer el cráneo. Realice la exposición del cráneo con un solo corte para evitar complicaciones en la herida.
  2. Retire el periostio suavemente con algodón e identifique las suturas coronales.
  3. Póngase las gafas protectoras, encienda el láser de 561 nm y marque el bregma +3 mm a la izquierda.
  4. Apague el láser, coloque una pegatina con un orificio de 4 mm de diámetro colocado en las coordenadas marcadas mencionadas anteriormente.
  5. Inyectar al ratón Rosa de Bengala (10 μL/g), por vía intraperitoneal. Coloque el rayo láser a 4-5 cm del cráneo, encienda el láser de 561 nm e ilumine el cráneo durante 20 minutos.
  6. Aplique dos gotas de solución salina al 0,9% sobre el cráneo para rehidratar, suturar la herida y coloque al animal en una cámara de recuperación a 37 °C para recuperarse de la anestesia. Después de 1 hora, devuelva los ratones a sus jaulas en una habitación con temperatura controlada.
  7. Inyectar analgesia cada 12 h durante 3 días después de la cirugía (4 mg/kg de carprofeno y 0,1 mg/kg de buprenorfina).

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Láser de longitud de onda de 561 nmSolnaCobolt HS-03
Ratones C57Bl/6JRío Charles664
ColímetroThorlabsF240APC-A
BotonesNOBA Verbondmitel Danz974116
Etanol 70%CLN Chemikalien Laborbedorf521005
Tijeras finasFST15000-00
fórcepsFST11616-15
Manta calefactoraControlador de temperatura FHC DC 40-90-8D
IsofluranoabadB506
Gafas protectorasLáser 2000NIR-ZS2-38
Rosa de BengalaSigma Aldrich198250-5G
Solución salinaBraun131321
Marco estereotácticoGuardando51500U
Sistema de anestesia para isoflurano Drager
Solución salina tamponada con fosfato PH: 7.4 Apotheke Innestadt Uni MünchenP32799

Reimpresiones y permisos

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Etiquetas

Bengala de rosaunidad estereot xicaexposici n del cr neoeliminaci n del periostiomarcado del bregmaflujo sangu neo cerebral

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