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Modelo de accidente cerebrovascular transitorio basado en la inserción de filamentos: un procedimiento quirúrgico para realizar la oclusión de la arteria cerebral media en el cerebro murino

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

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Fuente: Llovera, G., et al. Modelado de accidente cerebrovascular en ratones: Oclusión transitoria de la arteria cerebral media a través de la arteria carótida externa. J. Vis. Exp (2021).

Este video describe el procedimiento para desarrollar un accidente cerebrovascular transitorio en un modelo murino utilizando la oclusión de la arteria cerebral media basada en filamentos recubiertos de silicona. El modelo desarrollado imita el accidente cerebrovascular humano, lo que ayuda a investigar nuevas estrategias terapéuticas para tratar el accidente cerebrovascular.

Protocolo

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Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

1. Preparación del material y los instrumentos

  1. Conecte la manta térmica para mantener la temperatura del área de operación y la temperatura corporal del ratón durante la anestesia a 37 °C.
  2. Tijeras y pinzas de autoclave, prepare una solución de etanol al 70% y tenga a mano el ungüento oftalmológico de dexpantenol, varias piezas de algodón y la sutura de poliéster trenzado recubierta 5-0 listas para usar. Prepare una jeringa de 1 mL con solución salina al 0,9% (sin aguja) para mantener hidratado el sitio de la incisión del animal. Preparar el gas anestésico (100%O2 + isoflurano).
  3. Prepare un soporte para la sonda láser Doppler cortando la punta de una punta de pipeta de 10 μL (3-5 mm de longitud).|
    NOTA: Todos los instrumentos se esterilizan con un esterilizador de perlas calientes. Las superficies también se desinfectan antes y después de la cirugía con un spray desinfectante microbiano. Antes de la cirugía, las áreas que rodean la cabeza y el pecho de los ratones se desinfectan con un spray desinfectante de heridas.

>2. Preparación del láser Doppler

  1. Inyectar analgesia al ratón 30 min antes de la cirugía (4 mg/kg de carprofeno y 0,1 mg/kg de buprenorfina, por vía intraperitoneal).
  2. Anestesiar al ratón colocándolo en la cámara de inducción con un caudal de isoflurano del 4% hasta el cese del movimiento corporal espontáneo y de las vibrisas.
  3. Coloque el ratón en posición prona en el área de operación con la nariz en la máscara de anestesia. Mantenga la concentración de isoflurano al 4% durante un minuto más, luego redúzcala y manténgala al 2%.
  4. Ajuste la almohadilla térmica controlada por retroalimentación asociada para mantener la temperatura corporal del ratón a 37 °C e inserte suavemente la sonda rectal para controlar la temperatura durante los procedimientos quirúrgicos.
  5. Aplique el ungüento oftálmico de dexpantenol en ambos ojos.
  6. Desinfecte la piel y el vello que rodea el ojo y la oreja izquierdos con etanol al 70%.
  7. Corta el cuero cabelludo entre la oreja izquierda y el ojo (1 cm de largo) para exponer el hueso del cráneo.
  8. Corta y retira el músculo temporal para visualizar el MCA debajo del cráneo.
  9. Fije con pegamento la parte exterior de la punta que sujeta la sonda/fibra láser Doppler en la parte superior del MCA izquierdo con pegamento. Luego, pegue la piel para cerrar la herida alrededor del soporte de la punta. Aplique 2-3 gotas de pegamento endurecedor para acelerar el proceso. Asegúrese de que la fibra láser Doppler no esté pegada y se pueda quitar fácilmente del soporte de la punta en cualquier momento.

3.Modelo MCAo transitorio (oclusión)

  1. Gire el ratón a la posición supina. Coloque el hocico en el cono de anestesia y fije las patas con cinta adhesiva.
  2. Desinfecte la piel y el vello que rodea el tórax y haga una incisión de 2 cm de largo en la línea media del cuello.
  3. Use fórceps para separar la piel y las glándulas submandibulares. Use retractores para sujetar el músculo esternomastoideo, exponer el campo quirúrgico y encontrar la arteria carótida común izquierda (CCA). Diseccionar el ACC libre de tejido conectivo y nervios circundantes (sin dañar el nervio vago) y realizar una ligadura transitoria antes de la bifurcación.
  4. Diseccionar la arteria carótida externa (ECA) y hacer un nudo permanente en la parte visible más distal, colocando otra sutura debajo de la ECA, cerca de la bifurcación, y preparar un nudo suelto para utilizarlo posteriormente.
  5. Diseccionar la arteria carótida interna (ACI) y colocar una pinza microvascular sobre ella, 5 mm sobre la bifurcación. Asegúrese de no dañar el nervio vago.
  6. Haz un pequeño agujero en el ECA entre las ligaduras ajustadas y las sueltas; ten cuidado de no cortar todo el ECA.
  7. Introduce el filamento y hazlo avanzar hacia el CCA. Apriete la ligadura suelta en el ECA alrededor del lumen para asegurar brevemente el filamento en esa posición y evitar sangrado al retirar el clip microvascular.
  8. Retire la pinza microvascular e inserte el filamento a través del ICA hasta llegar al origen del ACM mediante la detección de una reducción brusca (>80%) en el flujo sanguíneo cerebral medido por el láser Doppler. Fije el filamento en esta posición apretando aún más el nudo alrededor del ECA.
    nota: Cuando el filamento va hacia la dirección adecuada, avanza suavemente y no se debe observar resistencia.
  9. Registre los valores de Doppler láser antes y después de la inserción del filamento.
  10. Retire el retractor y reubique el músculo esternomastoideo y las glándulas submandibulares antes de suturar la herida. Retire la sonda láser Doppler y coloque el animal en una cámara de recuperación a 37 °C durante 1 h (hasta la extracción del filamento).

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Rampa de 45°H&S KunststofftechnikAltura: 18 cm
Amenaza 5/0Perales10C103000
Sistema de anestesia para isofluranoDrager
Pomada de BepanthenBayer
Ratones C57Bl/6JRío Charles000664
abrazaderaFST12500-12
pinzaFST18055-04
Soporte de clipFST18057-14
AlgodonesNOBA Verbondmitel Danz974116
Etanol 70%CLN Chemikalien Laborbedorf521005
Etanol 96%CLN Chemikalien Laborbedorf522078
Etanol 99%CLN Chemikalien LaborbedorfETO-5000-99-1
FilamentosDoccol602112PK5Re
Pinzas finas 45 en ánguloFST11251-35
Pinzas finasFST11252-23
Tijeras finasFST14094-11
colaOrechselnBSI-112
Pegamento endurecedorDrechseln & MehrBSI-151
Manta calefactoraControlador de temperatura FHC DC
IsofluranoabadB506
IsopentanoFluka59070
Doppler láserPerimedPF 5010 LDPM, Sistema Periflujo
5000
Sonda láser DopplerPerimed91-00123
Cámara de recuperaciónMedicheat
Filamentos recubiertos de siliconaDoccol602112PK5Re
Tijeras de resorte VannasFST15000-00

Reimpresiones y permisos

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Etiquetas

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