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Artículo de método

Extirpación de la glándula lagrimal superior: una técnica quirúrgica para extirpar las partes palpebral y orbitaria de la glándula lagrimal superior de un modelo de conejo

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8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Honkanen, R. A. et al., Establecimiento de un modelo de ojo seco severo utilizando dacrioadenectomía completa en conejos. J. Vis. Exp. (2020).

Este video describe el procedimiento quirúrgico para extirpar las dos partes: palpebral y orbital de la glándula lagrimal superior de un conejo para crear un modelo de enfermedad de ojo seco. Este modelo de conejo es adecuado para estudios de homeostasis de la superficie ocular, fisiopatología y terapéutica ocular.

Protocolo

Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

Utilice conejos blancos de Nueva Zelanda (NZW) que pesen 2-3 kg Animales ligeramente sedados colocados en una bolsa de sujeción con acepromazina subcutánea como se indica arriba (1 mg/kg). Retire todo el pelo de la cara y la superficie dorsal del cráneo para visualizar los puntos de referencia quirúrgicos. Recorte el pelaje con tijeras de corte dejando residuos de pelaje fino de aproximadamente 1 mm de longitud. Retire todo el pelo residual con una crema depilatoria suave siguiendo las instrucciones del fabricante.

1. Eliminación de OSLG

  1. Infiltrar los sitios de incisión (líneas de la pluma de marcado quirúrgico y párpado posterior superior) con una mezcla 50:50 de lidocaína al 2% con epinefrina 1:100.000 y bupivacaína al 0,5% utilizando una jeringa de 5 cc con aguja de 30 G (Figura 1A)
    nota: El tamaño de la jeringa y la aguja no son críticos.
  2. Use una aguja Colorado conectada a una unidad electroquirúrgica para hacer las incisiones en la piel a lo largo de las marcas quirúrgicas. Los ajustes pueden variar en función de la respuesta clínica y, por lo general, oscilan entre 10 y 15 unidades tanto para el corte como para la coagulación (Figura 1B).
  3. Aplique tensión opuesta a través de la incisión de la piel para separar los tejidos y exponer las fibras musculares frontoscutulares subyacentes.
  4. Aplique presión medial sobre el globo para ayudar a la visualización del OSLG, que se ve como tejido abultado ubicado justo medial o profundo a las fibras musculares frontoscutulares. Si es necesario, mueva estas fibras musculares hacia un lado para exponer la incisión subyacente.
  5. Con pinzas dentadas (0,3) y tijeras de capsulotomía, retraiga y corte suavemente la cápsula fibrosa que recubre el OSLG. El OSLG suele tener un color tostado pálido (Figura 1C).
  6. Con pinzas dentadas o no dentadas, agarre el tejido de la glándula OSLG y sáquelo suavemente a través de la incisión superior utilizando una técnica de "mano sobre mano". Corte bandas pequeñas y fibrosas con unas tijeras de capsulotomía para liberar la glándula de su posición en la órbita (Figura 1D).
    nota: A medida que se extirpa el tejido de la glándula OSLG, comenzará a fusionarse en una gran estructura en forma de tubo (conducto excretor principal).
  7. Cuando la glándula se haya extirpado lo más completamente posible, use una cauterización generosa con la aguja Colorado para crear tejido carbonizado, truncando la glándula dentro de la incisión lo más profundamente posible. Esto servirá más tarde como un hito confirmatorio durante la eliminación del PSLG.

2. Eliminación de PSLG.

  1. Evalúe el párpado superior con un aplicador con punta de algodón. El extremo bulboso del PSLG suele ser fácilmente visible.
    nota: En algunas disecciones anatómicas, puede ser posible visualizar el conducto excretor principal como una estructura lineal pálida de aproximadamente 1 o 2 mm de ancho.
  2. Enganche el PSLG con pinzas dentadas (0.3) y retírelo de la superficie del párpado mientras usa tijeras de capsulotomía para cortar alrededor de su base, separándolo del tarso subyacente (Figura 2A).
  3. Controla el sangrado moderado con la cauterio monopolar.
  4. Aplique una tracción continua sobre el tejido separado para mantener un plano de tejido para la disección. Esto permitirá que también se elimine el conducto excretor principal del SLG (Figura 2B).
    nota: A medida que se lleva a cabo la disección, por lo general avanzará hasta el reborde orbitario superior, donde es posible ver las marcas de cauterización que quedan de la extirpación del OSLG más superior y medialmente localizado.

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Resultados

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Figura 1: Eliminación del OSLG.(A) Los sitios quirúrgicos se infiltran con anestésico utilizando una combinación 50:50 de lidocaína al 2% con epinefrina 1:100,000 y bupivacaína al 0.5%, que se inyecta en el párpado superior y a lo largo de las líneas de incisión para minimizar las molestias durante el procedimiento. (B) Se utiliza una aguja de microdisección Colorado...

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Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
acepromazina, Aceproinj Henry Schein Salud Animal, Dublín, OH NDC11695-0079-80,1 ml/kg inyección subcutánea para la sedación en conejos
bolsa de sujeción para animales Henry Schein Salud Animal, Dublín, OH Jorvet J0170Use una bolsa del tamaño adecuado.
bupivacaína, 0,5% Hospira Inc, Lake Forest ILNDC: 0409-1162-02 Mixto 50:50 con lidocaína al 2% con epinefrina 1:100.000 para la infiltración de los sitios de incisión.
Aguja Colorado Craneomaxilofacial Stryker, Kalamazoo, MIN103AUso con unidad electroquirúrgica para hacer incisiones
unidad electroquirúrgica con placa de cauterización monopolar Valleylab, Boulder, COFuerza FXcUso con unidad electroquirúrgica para hacer incisiones
fórceps, Obispo Harmon Bausch y Lomb (Storz), BridgewaterNJ E1500-CUsar pinzas dentadas para la dacrioadenectomía
aguja, calibre 30 BD, Franklin Lakes, Nueva Jersey REF 305106Para la infiltración de los sitios de incisión; el tamaño de la jeringa y la aguja no son críticos
conejo, blanco de Nueva Zelanda Laboratorios Charles River, Waltham, MA(NZW) 2-3 kg Animales de investigación
tijeras, Vannas McKesson Médico-Quirúrgico, San Francisco, CA Miltex 2-130Tijeras de capsulotomía para dacrioadenectomía
jeringa, 5 cc BD, Franklin Lakes, Nueva JerseyREF 309603 Para la infiltración de los sitios de incisión; el tamaño de la jeringa y la aguja no son críticos

Etiquetas

Parte orbitalparte palpebralmodelo de ojo secoaguja de electrocirugíatijeras de capsulotomíaescisión de tejido