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Artículo de método

Realización de la inyección en el lóbulo orbitario de la glándula lagrimal superior: una técnica para inducir la enfermedad del ojo seco en un modelo de conejo

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8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Honkanen, R. A. et al, Un modelo de conejo de enfermedad del ojo seco acuoso-deficiente inducida por la inyección de concanavalina A en las glándulas lagrimales: aplicación a los estudios de eficacia de medicamentos. J. Vis. Exp. (2020).

Este video describe el procedimiento para inducir la enfermedad del ojo seco en un modelo de conejo a través de una inyección de Concanavalina A en el lóbulo orbitario de la glándula lagrimal superior. El modelo desarrollado es útil para estudiar la efectividad de diversos fármacos para el tratamiento de la enfermedad del ojo seco.

Protocolo

Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

1. Preparación animal

NOTA: Se inyectan las porciones del sistema de glándulas lagrimales orbitarias.

  1. Sedar a los conejos con acepromazina 0,2 mg/kg por vía subcutánea.
  2. Corta el pelaje en la zona periorbital y del cuero cabelludo y elimina por completo cualquier resto de pelo con Nair. Deje la piel completamente lisa para una mejor visualización de las características anatómicas y la inyección de concanavalina A guiada por ecografía (Figura 1).
  3. Inducir una sedación moderada como se ha descrito anteriormente.

2. Inyección de la glándula lagrimal superior orbitaria (OSLG)

NOTA: OSLG sigue en rápida sucesión.

  1. Aplique presión medial al globo haciendo que el OSLG sobresalga de la incisión posterior. Aplique presión medial al globo (Figura 2, flecha roja) con la protuberancia del OSLG desde la incisión posterior. La protuberancia sirve como localización macroscópica para encontrar la incisión posterior.
  2. Use pinzas curvas con las puntas cerradas para hacer una hendidura en el área hasta que se sienta la abertura ósea en el cráneo. Esto será como una hendidura con una dirección anterior/posterior debajo de la protuberancia.
  3. Aplique una presión moderada con pinzas para dejar una hendidura en la piel, que servirá como punto de referencia para la colocación de la aguja (Figura 3A).
  4. Inserte una aguja (jeringa de tuberculina con una aguja de calibre 27 de 5/8 de pulgada) perpendicular a la piel sobre la marca de hendidura (Figura 3B) ~ 1/4 de pulgada en la incisión, luego redirija la aguja posterior y externamente hacia el canto lateral apuntando al punto medio entre el sitio de inyección y el borde orbital óseo.
    nota: Si la incisión no se dirige con precisión con la aguja, el cráneo bloquea su avance.
  5. Una vez alcanzado el cubo de la aguja, inyecte lentamente 1000 μg de Con A en un volumen de 0,2 mL (Figura 3C).
  6. Complete la inyección de PSLG y OSLG en 2-3 minutos
  7. Retirar al animal de la sedación con isoflurano (si aún no se ha realizado). La inyección de la glándula lagrimal inferior (ILG, por sus siglas en inglés) generalmente se puede completar sin sedación adicional.

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Resultados

figure-results-1
Figura 1: Preparación del conejo para las inyecciones de concanavalina A.(A) Se utilizan tijeras pequeñas para eliminar el pelo, lo que permite una visualización más fácil de los puntos de referencia para identificar la glándula lagrimal superior orbital. (B) Nair se utiliza para eliminar el pelo que queda después de la esquila.

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Divulgaciones

No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Lente macro de 100 mmCanon EF 100mm f/2.8L IS USM3554B002
Agujas de calibre 26 (5/8)Becton Dickinson y compañía,
Lagos Franklin, Nueva Jersey
305115Agujas para inyectar ConA en el
glándulas lagrimales
Agujas de calibre 27 (5/8)Becton Dickinson y compañía,
Lagos Franklin, Nueva Jersey
305921Agujas para inyectar ConA en el
glándulas lagrimales
Aceproinj (acepromazine)Henry Schein Salud Animal,
Dublín, OH
NDC11695-0079-80,1 ml/kg por vía subcutánea inyectable
para sedación en conejos
Vaporizador de anestesiaVetEquip, Pleasanton, CAArticulo #911103
Fórceps del obispo HarmonBausch y Lomb (Storz),
Bridgewater, Nueva Jersey
E1500-CPinzas de tejido
calibradorBausch y Lomb (Storz),
Bridgewater, Nueva Jersey
E-2404Calibre utilizado para medir la longitud de
aguja durante la inyección de ConA
Concanavalin ASigma, San Luis, MOC2010Hacer 5 mg / ml en PBS para inyección
en las glándulas lagrimales del conejo
Conejo, Blanco de Nueva Zelanda o
Cinturón holandés (como se describe en el texto)
Laboratorios Charles River, Waltham, MA2-3 kgAnimales de investigación
Lupas quirúrgicas +1.50Diseños para Vision, Bohemia, NYArtículo de especialidadProporcionar magnificancia de ocular
superficie mientras observa la rotura de la rotura
Puesta en marcha y rendimiento Concanavalin A
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