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Transfección in vitro basada en magnetofelicción: una técnica asistida por campo magnético para administrar plásmidos en células neuronales primarias de ratón utilizando nanopartículas magnéticas

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

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Fuente: Jacquier, A. et al. Modelado de la enfermedad de Charcot-Marie-Tooth in vitro mediante la transfección de motoneuronas primarias de ratón. J. Vis. Exp. (2019)

En este video, demostramos la transfección guiada magnéticamente de ADN plasmídico en cultivo de células neuronales primarias. La magnetofección utiliza un campo magnético externo para guiar la entrega de plásmidos unidos a nanopartículas magnéticas en el citoplasma celular.

Protocolo

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>1. Recubrimiento de platos de poli-ornitina/laminina (Po/L)

NOTA: Los volúmenes se adaptan para recubrir una placa de 24 pocillos.

  1. Si es necesario, coloque un cubreobjetos estéril de 12 mm en el pocillo.
  2. Cubrir los pocillos con 500 μL de 10 μg/mL de solución de Poly-L-Ornitina disuelta en agua.
  3. Deje que los pozos se asienten a temperatura ambiente durante 1 h.
  4. Retire la solución de Poly-L-Ornithine y seque al aire durante 30 min.
  5. Cubrir los pocillos durante la noche a 37 °C con 500 μL de laminina de 3 μg/mL en bicarbonato L-15.
    nota: Los pocillos se pueden almacenar a 37 °C durante 7 días en la incubadora. Para incubaciones largas, agregar PBS estéril entre los pocillos puede ayudar a evitar la evaporación del medio.

>2. Cultivo de neuronas motoras

  1. Diluya los MN a la densidad adecuada, generalmente de 5.000 a 10.000 células en 500 μL de medio de cultivo por pocillo en una placa de 24 pocillos.
    nota: La densidad de siembra es de alrededor de 30.000 y 1.500 celdas para placas de 6 y 96 pocillos, respectivamente.
  2. Retire la solución de laminina con un P1000.
  3. Transfiera inmediatamente los MN diluidos en el medio de cultivo a las placas de recubrimiento para evitar el secado.
  4. Incubar el cultivo durante 2 días a 37 °C.

>3. Magnetofección de las neuronas motoras

NOTA: En los siguientes pasos, las cantidades utilizadas están destinadas a la transfección de un pocillo de una placa de 24 pocillos. Consulte el protocolo del fabricante para otro formato.

  1. Para la preparación del ADN, resuspender 1 μg de ADN en 50 μL de medio de cultivo neuronal y vórtice durante 5 s. En este caso, se utilizan plásmidos de 9 kb con un promotor CAGGS (pCAGEN) que controla el ADNc de neurofilamentos.
  2. Para la preparación del tubo de perlas, resuspenda 1,5 μL de perlas en 50 μL de medio de cultivo neuronal.
  3. Añadir la solución de 50 μL de perlas a la solución de 50 μL de ADN e incubar durante 20 min a temperatura ambiente (volumen total = 100 μL).
  4. Durante esta incubación, extraiga 100 μL de medio de cultivo del pocillo que se va a transfectar.
    NOTA: Coloque la placa magnética en la incubadora para calentarla a 37 °C.
  5. Transfiera 100 μL de la mezcla de ADN/perlas al pocillo e incube la placa durante 20-30 minutos en la placa magnética a 37 °C.

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Plásmido pCAGENAddgene#11160
Medio de cultivo de células neuronalesThermoFisher ScientificA3582901Medio Neurobasal Plus
Poli-DL-OrnitinaSigma-AldrichP8638
LamininaSigma-AldrichL2020
Bicarbonato de sodioThermoFisher Scientific25080094
L-15 medioThermoFisher Scientific11415056
PBS sin Ca MgThermoFisher Scientific14190144Sin Mg2+ Ca2+
Cubreobjetos redondosNeuVitro, vidrio KnittelGG-12-Pre12 milímetros

Reimpresiones y permisos

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Etiquetas

ADN plasm dicoc lulas neuronales primariasformaci n de poliplexosendocitosisescape endosomaltranslocaci n nuclearexpresi n de prote nas fluorescentes

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