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Tinción TTC de cortes de tejido cerebral de rata: un procedimiento de tinción para diferenciar el tejido viable y necrótico en cortes de tejido después de una lesión por isquemia-reperfusión

8 de julio de 2025

En este artículo

Resumen

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Fuente: Liepinsh, E., et al. Preparación del corazón y el tejido cerebral de roedores para la macrofotografía digital después de la isquemia-reperfusión. J. Vis. Exp. (2022)

Este video describe el procedimiento de tinción de cloruro de 2,3,5-trifenil-2H-tetrazolio para visualizar cortes de tejido cerebral de rata y diferenciar el tejido viable y dañado después de la oclusión y reperfusión de la arteria cerebral media.

Protocolo

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Todos los procedimientos que involucran modelos animales han sido revisados por el comité institucional local de cuidado de animales y la junta de revisión veterinaria de JoVE.

1. Tinción y corte de cerebro

  1. Después del experimento de oclusión de la arteria cerebral media, extraiga el cerebro, incluido el tronco encefálico, del cráneo y lávelo con PBS helado.
  2. Elija el tamaño correcto de la matriz de acero inoxidable del cerebro (consulte la Tabla de Materiales) en función del peso de los animales (Figura 1B). Coloque el cerebro con su lado ventral hacia arriba en la matriz cerebral.
    nota: Cuando se asienta en la matriz, la superficie ventral del cerebro debe ser paralela a la superficie superior del molde.
  3. Con cuchillas, restrinja las partes frontal y caudal (2 cuchillas de ambos lados) del cerebro><. nota: Se deben utilizar hojas de afeitar compatibles con la matriz de corte. En general, se puede usar una hoja de afeitar compatible de un solo filo (grosor de hasta 0,01 pulgadas (0,254 mm)) para cortar el cerebro de rata.
  4. Coloque las cuchillas parcialmente (sin cortar completamente el cerebro) en los canales entre la primera y la última cuchilla. Cuando todas las cuchillas estén insertadas y dispuestas en paralelo, presione todas las cuchillas hacia abajo con la palma de la mano al mismo tiempo para cortar el cerebro en rodajas coronales de 2 mm.
  5. Sujete las cuchillas firmemente a lo largo de los lados con dos dedos y retírelas junto con el cerebro cortado de la matriz.
  6. Coloque las rodajas de cerebro una a una en una bandeja (70 mL, 72 x 72 mm). Al organizar las rebanadas, asegúrese de que la superficie anterior de cada rebanada esté siempre hacia arriba.
  7. Vierta una solución tibia (+37 °C) de TTC al 1% en PBS sobre las rodajas de cerebro e incube durante 8 minutos a 37 °C en la oscuridad.
    nota: Las rodajas de cerebro deben sumergirse completamente en la solución de TTC durante la incubación.
  8. Después de la incubación en una solución de TTC al 1%, transfiera los trozos de cerebro a la bandeja de plástico azul para capturar imágenes. Coloque los cortes de cerebro en orden secuencial desde la parte frontal hasta la caudal y use un bisturí para separar los hemisferios en el plano sagital.

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Resultados

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Figura 1: Matrices para el corte del corazón y el cerebro de la rata. (A) Corazón de rata, (B) Cerebro de rata.

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Divulgaciones

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No se han declarado conflictos de interés.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Cloruro de 2,3,5-trifeniltetrazolio (TTC)Sigma-Aldrich298-96-4
Matriz de corte de cerebro de rata adultaInstrumentos ZivicBSRAS001-1
Hojas de afeitar de un solo filoInstrumentos ZivicBLADE012.1
Cámara digital sin espejo Sony Alpha a6000SonyILCE6000Puede ser reconstruido por cualquier cámara digital actualizada
Cuchilla quirúrgicaHeinz Herenz, Hamburgo, AlemaniaBS2982
Bandeja de pesaje, 70 mLSarsted71,99,23,212
Agitador térmicoBioSanPST-60HL-4
Pinzas de tejido dentadoAgnthos11021-12
cloruro de sodioBiorreactivos de FisherBP358-10
Pinzas para cubrevidrios, en ánguloHerramientas de Bellas Ciencias11073-10

Reimpresiones y permisos

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Etiquetas

Diferenciaci n de tejido viableIdentificaci n de tejido necr ticoCloruro de trifeniltetrazolioPreparaci n de cortes coronalesSuccinato deshidrogenasa mitocondrialTinci n con formaz n rojoSeparaci n de hemisferios

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