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Artículo de método

Una técnica de espectroscopia infrarroja por transformada de Fourier para estudiar el autoensamblaje de péptidos

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13 de agosto de 2025

En este artículo

Resumen

Fuente: Neves, R., et al. Síntesis y caracterización de péptidos autoensamblables modificados con 1,2-ditiolano. J. Vis. Exp. (2018)

Este video demuestra el autoensamblaje de péptidos amiloides en una estructura supramolecular rica en láminas beta utilizando espectroscopia infrarroja por transformada de Fourier. Se pasa un rayo infrarrojo a través de un cristal con un alto índice de refracción y se registra la absorción de energía a través de la interfaz del cristal y la muestra. Las estructuras secundarias de las proteínas de la muestra se identifican analizando sus picos de absorción característicos en regiones específicas del espectro infrarrojo, lo que ayuda a identificar la formación del ensamblaje supramolecular.

Protocolo

1. Caracterización de estructuras de autoensamblaje supramolecular

  1. Formación de fibras amiloides
    1. Para preparar una solución de autoensamblaje, pesar 1 mg del péptido en polvo utilizando una balanza analítica. Disolver en una mezcla (pH 7,5) de acetonitrilo al 20% y ácido 10 mM (4-(2-hidroxietil)-1-piperazinaetanosulfónico (HEPES) en un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml, hasta una concentración final de 1 mg/ml de mezcla de ensamblaje de péptidos. Agite la solución de ensamblaje y déjela ensamblar a temperatura ambiente.
  2. Caracterización espectroscópica de fibras amiloides
    1. Siga el proceso de ensamblaje de péptidos a través de la espectroscopia infrarroja por transformada de Fourier (FTIR) cada pocos días. Un pico amplio centrado alrededor de 1670 cm-1 es la firma IR que surge de péptidos no ensamblados en la muestra. Las muestras de ensamblaje de péptidos generalmente tardan de una a dos semanas para que el pico ancho sin ensamblar desaparezca y alcance la maduración.
      1. Seque una alícuota de 8-10 μL de la solución de ensamblaje como una película delgada sobre el cristal de diamante ATR. Monitoree la desaparición de un pico de agua grande y ancho de 1640 a 1630 cm-1 a medida que se forma la película seca.
      2. Adquiera espectros IR de 1500-1800 cm-1 con un promedio de 50 escaneos con una resolución de 2 cm-1. Adquiera y reste los escaneos en segundo plano antes de cada escaneo de muestra. La firma IR para el ensamblaje de β hojas es un pico agudo entre 1625 y 1635 cm-1 (Figura 1A).

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Resultados

Espectros FTIR 1627/1676 cm⁻¹ (A), espectro CD 190-270 nm (B), nanofibras TEM escala 100 nm (C).
Figura 1. Caracterización supramolecular del péptido modificado con 1,2-ditiolano. (A) FT-IR de 1 mg/mL de fibras de 1,2-ditiolano-KLVFFAQ-NH2 ensambladas en HEPES de 10mM, pH 7,5 en 20% CH3CN. El pico a 1627 cm-1 es consistente...

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Divulgaciones

No se declaran conflictos de intereses.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
AcetonitriloFisher ScientificA998-4Inflamable; irritante para los ojos; Usar equipo de protección personal; Úselo solo debajo de una campana extractora; mantener alejado de llamas abiertas o superficies calientes; en caso de contacto, enjuague con agua durante al menos 15 minutos y obtenga atención médica
Ácido 4-(2-hidroxietil)piperazina-1-etanosulfónicoAcros OrganicsAC172571000No inhale; úselo al aire libre o en un área bien ventilada
Espectrómetro infrarrojo por transformada de FourierAlpha Tensor, Bruker

Etiquetas

Formación de láminas betacristal de ATRanálisis del espectro infrarrojoonda evanescentemedición del número de ondapéptidos amiloidesestructura supramolecularidentificación de la estructura secundaria