1. recogida de muestras y procesamiento del agua
2. Colonia (enumeración)
3. Colonia verificación
| Indicador bacteriano fecal | Medios recomendados (Temperatura de incubación, tiempo) 1 |
| Coliformes totales | LES Endo Agar (35 ± 5 ° C, 24 h) Medio M-Endo (35 ± 5 ° C, 24 h) |
| Coliformes fecales | Medio m-FC (44,5 ± 0,2 ° C, 24 h) |
| Enterococos fecales | m. enterococos Agar (35 ± 0,5 ° C, 48 h) |
Tabla 1. Medios de crecimiento de cultivo comúnmente utilizado para la detección de indicadores bacterianas fecales en muestras ambientales
1 según lo recomendado por los Métodos estándar para la examinación de agua y aguas residuales (American Asssociation de salud pública y la Asociación estadounidense de obras hídricas, 22nd edición, 2012)
Fuente: Laboratorios del Dr. Ian Pepper y el Dr. Charles Gerba - Universidad de Arizona
Demostrando autor: Luisa Ikner
La calidad del agua destinada pa…
1. recogida de muestras y procesamiento del agua
2. Colonia (enumeración)
3. Colonia verificación
| Indicador bacteriano fecal | Medios recomendados (Temperatura de incubación, tiempo) 1 |
| Coliformes totales | LES Endo Agar (35 ± 5 ° C, 24 h) Medio M-Endo (35 ± 5 ° C, 24 h) |
| Coliformes fecales | Medio m-FC (44,5 ± 0,2 ° C, 24 h) |
| Enterococos fecales | m. enterococos Agar (35 ± 0,5 ° C, 48 h) |
Tabla 1. Medios de crecimiento de cultivo comúnmente utilizado para la detección de indicadores bacterianas fecales en muestras ambientales
1 según lo recomendado por los Métodos estándar para la examinación de agua y aguas residuales (American Asssociation de salud pública y la Asociación estadounidense de obras hídricas, 22nd edición, 2012)
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La filtración por membrana y el posterior cultivo de las bacterias recolectadas es una técnica útil para evaluar la calidad y limpieza de una fuente de agua.
La calidad del agua destinada a ser utilizada en entornos agrícolas, recreativos o domésticos es de gran importancia, debido a la posibilidad de brotes de enfermedades transmitidas por el agua. Si el agua está contaminada con materia fecal de animales o humanos, los parásitos, bacterias o virus patógenos pueden propagarse a nuevos huéspedes tras su ingestión. Por lo tanto, el monitoreo de las fuentes de agua en busca de estos organismos causantes de enfermedades es fundamental para garantizar la salud pública.
El gran número y variedad de patógenos fecales y orales que pueden estar presentes en una fuente de agua hace que sea poco práctico realizar análisis para cada uno de ellos de forma independiente y regular. En cambio, los ensayos microbiológicos comunes para la calidad del agua utilizan bacterias indicadoras coliformes. Para obtener más información sobre este proceso, consulte el video de esta colección sobre organismos indicadores.
Este video ilustrará el proceso de filtración por membrana en una muestra de agua ambiental, demostrará cómo cultivar varios tipos de bacterias indicadoras fecales, incluidos coliformes totales, coliformes fecales y entercocos fecales, y describirá cómo verificar la presencia de contaminación fecal.
La técnica de filtración por membrana utiliza presión negativa para extraer muestras de agua a través de un filtro y atrapar las bacterias. El filtro es una membrana especializada con un tamaño de poro medio mínimo de 0,45 μm que permite la captura de bacterias, que suelen tener un tamaño de alrededor de 1 μm. Después de la filtración, la membrana se aplica a los medios de crecimiento de agarosa y se incuba en condiciones adecuadas para cultivar los microorganismos objetivo.
Esta técnica es ideal para fuentes de baja turbidez como agua potable, piscinas o lagos y embalses. El agua con alto contenido de partículas puede provocar incrustaciones u obstrucciones en el filtro, lo que limita el volumen que se puede procesar. Además, la filtración por membrana no es práctica para fuentes de agua que contienen un gran número de bacterias de fondo o no coliformes, como las aguas residuales sin tratar, ya que esto puede aumentar la dificultad de enumerar los coliformes objetivo durante el cultivo y la incubación.
Una vez que las muestras bacterianas han quedado atrapadas en el filtro, se pueden transferir a placas de crecimiento para determinar los tipos de bacterias indicadoras presentes en las muestras de agua. El recubrimiento en diferentes tipos de medios selecciona diferentes tipos de bacterias y puede permitir una identificación rápida.
Después del crecimiento en placas específicas de cultivo, se puede llevar a cabo una confirmación adicional de las identidades de las bacterias indicadoras utilizando técnicas como la selección de colonias en medios líquidos y el uso de tubos de Durham para capturar gases, que solo deben producirse en presencia de coliformes fecales o coliformes totales. Además, la sospecha de enterococos fecales puede confirmarse mediante una combinación de una tinción de Gram positiva, junto con una prueba de peróxido de hidrógeno-catalasa negativa.
Ahora que estamos familiarizados con los principios detrás de la filtración por membrana de muestras de agua, echemos un vistazo a cómo se lleva a cabo este procedimiento.
Para comenzar el procedimiento, primero recoja muestras de agua de las fuentes de agua de prueba de interés. Asegúrese de que las muestras se recojan en frascos estériles de 1 litro. Una vez completada la recolección, coloque las muestras en hielo y transpórtelas al laboratorio para su análisis microbiano.
Para comenzar el análisis, primero esterilice un colector de filtración por membrana. A continuación, conecte el colector a una bomba de vacío y a un matraz de residuos de filtración que contenga lejía.
Pinzas de esterilización con llama de etanol y retire una membrana rejicular estéril del envase. Coloque el filtro en el centro del área de filtración de membrana del colector y aplique un embudo de filtro estéril a la unidad, luego asegúrelo en su lugar.
Mida el volumen deseado de agua de prueba en el embudo. Aplique un vacío parcial para extraer la muestra de prueba a través del filtro. El material sólido en suspensión, incluidas las bacterias y otras materias orgánicas, de más de 0,45 μm quedará atrapado en el filtro o dentro de él, mientras que las partículas más pequeñas, los virus y los sólidos disueltos pasarán al matraz de residuos que contiene lejía.
Después de que la muestra haya pasado por el filtro, enjuague el interior del embudo con 25 mL de agua estéril 3 veces, permitiendo que pase a través del filtro. Cuando se complete el enjuague final, desconecte la aspiradora y retire el embudo del colector.
A continuación, pinzas de esterilización con llama de etanol y retire inmediatamente el filtro de membrana de la unidad. Colóquelo en la placa de crecimiento adecuada para el microorganismo objetivo con un movimiento de balanceo para asegurar un contacto completo con la superficie y evitar atrapar burbujas de aire.
Para el procesamiento de cada muestra adicional, desinfecte el colector de acero inoxidable y use un embudo estéril para evitar la contaminación cruzada. Finalmente, coloque las placas en una incubadora durante el período de incubación adecuado.
Después del período de incubación, retire las placas de la incubadora para la enumeración. Si es posible, realice los recuentos de colonias con un aumento de baja potencia utilizando una fuente de luz blanca fría. Para determinar los coliformes totales, identifique y cuente las colonias que parezcan de color rosa a rojo oscuro y que tengan un brillo superficial metálico que cubra total o parcialmente la colonia. Las colonias atípicas de coliformes totales pueden aparecer de color rojo oscuro, mucoides o nucleadas sin brillo.
Las colonias que parecen azules, blancas, incoloras o rosadas sin brillo se consideran no coliformes y no deben incluirse en el recuento total de coliformes.
Las colonias de coliformes fecales aparecerán como varios tonos de azul, y estos deben contarse como una categoría separada. Las colonias de coliformes no fecales suelen ser de color gris a crema, y también deben registrarse en una categoría individual. Finalmente, las colonias de enterococos fecales variarán de color rosa a rojo oscuro y deben contarse por separado.
Para verificar las colonias totales de coliformes, aplique un asa de inoculación esterilizada y enfriada a una sola colonia de interés. Transfiera la colonia seleccionada a un recipiente de vidrio que contenga caldo de lauril triptosa y un tubo de Durham. A continuación, coloque los cultivos en una incubadora. La presencia de turbidez junto con la producción de gas capturado por el tubo de Durham verifica que la colonia es un coliforme total.
Para la verificación de coliformes fecales, transfiera asépticamente las colonias de color azul a recipientes de vidrio que contengan medio EC estéril y un tubo de Durham. Coloque los tubos inoculados en una incubadora. Después de la incubación, las inoculaciones turbias junto con la producción de gas confirman que la colonia es un coliforme fecal.
Para confirmar la presencia de enterococos fecales, transfiera asépticamente las colonias sospechosas con la morfología correcta a placas de agar de infusión cerebro-corazón e incube. A continuación, transfiera el crecimiento de una colonia aislada en BHIA a dos portaobjetos de vidrio estéril.
Agregue 2-3 gotas de peróxido de hidrógeno al 3% a uno de los portaobjetos de vidrio. La rápida producción de gas indica una bacteria catalasa positiva como Citrobacter. Las bacterias enterococos fecales son catalasa negativas; por lo tanto, no se observa burbujeo. En el caso de las colonias catalasa negativas que no muestran burbujas, realice una tinción de Gram. Al igual que los enterococos fecales, estos deben aparecer Gram positivos, con forma ovoide, y agruparse principalmente en pares o cadenas cortas.
Encontrar cualquiera de estas bacterias indicadoras en una fuente de agua indica la presencia de una contaminación. Si se descubre que más del 5% de las muestras están contaminadas durante un período de un mes, la fuente puede considerarse no apta para el consumo humano.
La filtración por membrana se usa comúnmente en una serie de aplicaciones biológicas, y los organismos indicadores fecales también se pueden detectar mediante otros procedimientos experimentales. Aquí se exploran algunas de estas aplicaciones.
La filtración por membrana también se puede utilizar en la captura de virus a partir de muestras de agua. Dado que los virus suelen estar presentes en niveles muy bajos, se deben concentrar muestras de agua para capturarlos y analizarlos. A continuación, los virus capturados pueden liberarse de los filtros e identificarse mediante técnicas como los ensayos de infectividad de cultivos celulares o la PCR.
La filtración por membrana también se utiliza en la producción de agua de alta pureza para uso industrial o de laboratorio. Muchas industrias requieren agua altamente purificada para sus procesos operativos, y la filtración por membrana puede servir para eliminar contaminantes, incluidos metales disueltos y sales no deseados del agua. También se puede utilizar en la desalinización de agua salada para producir agua potable.
Acabas de ver la introducción de JoVE sobre la identificación de organismos indicadores en el agua mediante filtración por membrana. Ahora debe comprender cómo filtrar muestras de agua mediante membranas, cómo cultivar varios tipos de bacterias indicadoras fecales de la membrana y cómo confirmarlas como organismos indicadores. ¡Gracias por mirar!
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Q1: Why is membrane filtration ideal for testing drinking water quality?
Membrane filtration works best for low turbidity water sources like drinking water, swimming pools, and lakes because the 0.45 micrometer pore size efficiently traps bacteria without clogging. High particulate matter can foul the filter and limit sample volume processing. This technique allows rapid bacterial enumeration and identification on selective growth media.
Q2: What do total coliforms indicate about water contamination?
Total coliforms are non-pathogenic bacteria from warm-blooded animal intestines that indicate fecal release into water. Their presence signals that pathogenic microorganisms may also be present. Detection of coliforms means the water source has experienced fecal contamination and warrants further investigation for harmful pathogens.
Q3: How are total coliform colonies identified after membrane filtration?
Total coliform colonies appear pink to dark red with a metallic surface sheen on selective media. Atypical colonies may be dark red, mucoid, or nucleated without sheen. Verification involves transferring colonies to lauryl tryptose broth with a Durham tube; turbidity plus gas production confirms total coliforms.
Q4: What distinguishes fecal enterococci from other indicator bacteria?
Fecal enterococci colonies appear pink to dark red on selective media. They are confirmed by Gram staining as positive, ovoid bacteria grouped in pairs or short chains, combined with a negative catalase test showing no bubbling with hydrogen peroxide. This combination distinguishes them from catalase-positive bacteria like Citrobacter.
Q5: What happens to water samples during the membrane filtration process?
Negative pressure draws water across a 0.45 micrometer filter, trapping bacteria and particles larger than the pore size. Smaller particles, viruses, and dissolved solids pass through into waste. After filtration, the membrane is rinsed three times with sterile water, then transferred to growth plates for culturing target microorganisms.
Q6: Why are coliform indicator bacteria used instead of testing for all pathogens?
The sheer number and variety of fecal-oral pathogens makes individual testing impractical and expensive. Coliform indicator bacteria are consistently excreted in feces from warm-blooded animals, making them reliable markers of fecal contamination. Their presence suggests pathogenic organisms may also be present in the water source.
Q7: When is a water source considered unfit for human consumption?
If more than 5% of water samples collected over a one-month period test positive for indicator bacteria, the source may be considered unfit for human consumption. This threshold indicates consistent fecal contamination and potential presence of disease-causing organisms that pose public health risks.
Capítulos en este video
0:00
Overview
1:37
Principles of Membrane Filtration for Indicator Bacteria
3:48
Water Sample Collection and Processing
6:01
Colony Identification
7:16
Colony Verification
9:23
Applications
10:26
Summary