Consideraciones para la cirugía de roedores

1. planificación prequirúrgica

aunque las directrices no requieren realizar cirugías roedores en una instalación quirúrgica dedicada, la zona de uso debe limpiarse con una apropiada superficie dura desinfectante, que se debe utilizar según el fabricante ' s figuran las concentraciones y tiempos de contacto. El área también debe mantenerse libre de obstáculos y no estar en la línea directa de la fuente y conductos de escape como los bosquejos podrían contribuir a la hipotermia del animal. Acceso a la sala debe limitarse cuando se llevan a cabo procedimientos quirúrgicos. Un área para preparación quirúrgica (especialmente para la eliminación de los animales ' pelo de s) y para la recuperación postoperatoria y cuidados, también debe ser señalado y en proximidad cercana, si no dentro de la sala de cirugía. En general, si las cirugías se realizan habitualmente en un área específica, el área debe no utilizarse para otras actividades.

preparación preoperatoria debe incluir un examen físico del paciente quirúrgico para identificar cualquier condición de salud subyacentes que puede interferir con la cirugía. Ya que los roedores tienen una alta tasa metabólica, y reservas de grasa muy limitada, no debería ayunaron antes de la cirugía. El animal ' estado de hidratación de s debe ser evaluado por una prueba de elasticidad de la piel. Suavemente se levanta la piel por encima de los hombros. En un animal normalmente hidratado, la piel rápidamente caerá de vuelta en su lugar, mientras que en un animal deshidratado, la piel no volverá inmediatamente a su posición normal. En general el aspecto, como la postura y la condición de la capa de pelo, debe señalarse también. Un animal que está mostrando una postura jorobada o una capa de cabello desarreglado, puede albergar una enfermedad. El examen debe realizarse justo antes de la administración de la anestesia, y anotar cualquier condición anormal en el animal ' gráfico de s. ² por último, consideraciones para la anatomía y fisiología de la rata o el ratón deben hacerse durante la preparación para la cirugía.

2. plataforma

ambas especies tienen un elevada área superficial al cociente del volumen del cuerpo haciéndolos susceptibles a la hipotermia durante procedimientos quirúrgicos, especialmente cuando la cirugía expone la cavidad del cuerpo. Esfuerzos para prevenir la hipotermia incluyen el uso de una plataforma quirúrgica caliente.

la plataforma utilizada para la cirugía de roedor, que se construye generalmente de acero inoxidable o plástico duro, debe cubrirse con un material aislante o fuente de calor suplementaria para evitar que el animal ' calor de cuerpo s de escape durante el procedimiento. Fuentes de calor suplementarias incluyen agua de circulación calefacción almohadillas, forzadas de mantas de calentamiento de aire, lámparas de calor o una capa de espuma acolchado que cubre la plataforma quirúrgica. Plataformas quirúrgicas con construido en fuente de calor están disponibles en el mercado. Todas las plataformas deben ser de un material que es fácilmente desinfectada e impermeable a la humedad.

otros métodos de prevención de la hipotermia incluyen el uso de aisladores de masa, colocar aislante entre el animal y la plataforma quirúrgica y uso de fuentes de calor externas. ³ aisladores de masa atrapan aire dentro de una matriz de fibra, producción de " todavía aire " que rodea el animal. Mantas de agua caliente que circula puede ser utilizado debajo de la paciente. Este equipo está disponible en varios tamaños de roedores para equinos y permite apoyo térmico precisa con termostatos incorporados.

químicamente activado fuentes de calefacción puede ser antiguo uso o reutilizables. Un tipo consta de una bolsa de plástico llenada de una solución química y un disco de metal, que cuando presiona crea una reacción exotérmica. Esto hace que el líquido se solidifica y liberación de calor. Por lo general, tienen una cantidad limitada de calor y sólo son adecuadas para procedimientos cortos. Otras fuentes de calefacción química disponibles como sólidos a temperatura ambiente, pero cuando se calienta, se convierten en líquido. Como un animal se coloca en la almohadilla, el líquido libera calor, y el contenido de la almohadilla solidifica como enfríe. Éstos pueden liberar calor durante mucho más tiempo. Como un beneficio, no pueden exceder la temperatura de activación (~ 39° C), eliminando así la necesidad de un termostato de.

paquetes de agua están disponibles como botellas de agua caliente que consiste en una bolsa con un tapón de goma o silicona. Los paquetes están llenos de agua caliente que entonces emite calor en la superficie exterior. El paquete poco a poco perderá calor como el agua se enfría. Una versión más moderna consiste en un plástico de hoja con tejido permeable al agua adherida a la parte superior. Entre el espacio está lleno de un polvo hidrofílico, que absorbe agua y se hincha. Puede ser utilizado como una fuente de calor o como una fuente de enfriamiento. Dependiendo de la calidad de los materiales, puede ser reutilizado y recalentarse en el microondas o empapado en agua caliente.

deberán tomarse precauciones cuando se utilizan fuentes de calor externas. Temperatura del cuerpo se debe controlar con una sonda rectal o termómetro colocado junto a los animales en la fuente de calor. Todas las fuentes de calor externas deberán comprobarse defectos antes del uso.

3. Retiro del pelo

del sitio quirúrgico debe estar preparado para minimizar la contaminación de la incisión. El pelo debe sujetado cerca o quitar con una crema depilatoria química, que se disuelve el pelo en el folículo. ^2,3 aunque a veces se puede realizar el recorte de pelo en un animal consciente con sujeción manual, la aplicación de la crema depilatoria sólo puede hacerse en un animal anestesiado para evitar la ingestión del producto, daño ocular y eliminación de de exceso de cabello. Afeitar con una maquinilla de afeitar es una opción si no existe alternativa. Este método requiere habilidad técnica, tiempo extra y paciencia para evitar laceraciones en la piel. El campo quirúrgico debe ser lo suficientemente grande para permitir la incisión y sutura sin la inclusión de la piel en la herida quirúrgica, pero más pequeña posible para evitar la exacerbación de la hipotermia.

1. 1. De recorte pelo se puede acortar utilizando cortaúñas eléctricos corded o con pilas, preferentemente con una cuchilla quirúrgica A40. Debe considerarse el ancho de la hoja. Un estándar 2 " hoja puede utilizarse para las ratas, mientras que un ½-1 " es más apropiado para los ratones.
   2. El pelo se recorta contra la dirección del crecimiento. Estirar la piel para estabilizar, como roedores tienen accesorio suelto de la piel al músculo subyacente.
   3. Se debe tener cuidado para evitar mellar o cortar la piel. El extremo plano de la lámina se coloca sobre la piel cuando recorte el pelo. La hoja no debe usarse nunca con los dientes perpendicularmente a la piel.

figura 1. La posición correcta de una recortadora de pelo mientras se afeita.

2. lociones o cremas depilatorias químicas
   1. aplique el producto en la zona del sitio quirúrgico.
   2. Después de 10 minutos, la piel debe ser enjuague completamented y limpiar de los restos de talco para evitar irritación o químico quemaduras a la piel.

4. Quirúrgico friegue

soluciones de lavado quirúrgico a ser utilizado deben: 1) substancialmente reducir los microbios presentes en la piel y contienen una preparación antimicrobiana nonirritating; 2) poseen un amplio espectro de propiedades antimicrobianas; 3) ser acción rápida; y 4) tienen una actividad persistente y acumulativa.

las dos soluciones de limpieza limpieza utilizados son chlorhexidines y yodóforos. Soluciones de clorhexidina son eficaces contra bacterias y virus incluso en presencia de materia orgánica. En contraste, los yodóforos tienen una amplia gama de acción microbicida, pero su eficacia se reduce en presencia de materia orgánica; la actividad residual es menor que el de la chlorhexidines.

enjuagues entre los matorrales son agua estéril o alcohol. Soluciones basadas en alcohol que contenga alcohol al 60-95% tienen grandes acciones antimicrobianas mediante la desnaturalización de las proteínas. ² Sin embargo, alcohol puede ser un irritante de la piel fuerte. Agua estéril es eficaz en el enjuague de la zona, sin embargo, no tiene propiedades antimicrobianas.

1. Usar una esponja de gasa humedecida para quitar la suciedad incluyendo pelo y caspa de.
2. Solución limpiadora antiséptica empapada en una gasa se aplica a la piel a partir de la incisión. Desinfección debe comenzar a lo largo de la línea de incisión y se extienden hacia fuera en un patrón circular.
3. El antiséptico enjuague se aplica comenzando en el sitio de la incisión. La piel se limpia en un patrón circular espiral desde la línea de incisión hacia la periferia del campo quirúrgico para eliminar la solución de limpieza.
4. Esto se repite tres veces.
5. Después de un enjuague final, se coloca una gasa estéril sobre el campo quirúrgico. Esta gasa puede ser mojada con alcohol o yodo. La gasa se eliminará una vez que el animal es transportado y colocado en posición sobre una plataforma quirúrgica o la mesa/Banco quirúrgica.

áreas del cuerpo donde no se utilizan los métodos de lavado quirúrgicos estándar incluyen los ojos, la boca y la zona anal. Porque se dañaría la superficie del ojo si se utilizan soluciones de limpieza, se realiza un lavado quirúrgico sólo a los párpados después de infundir una pomada protectora en el ojo. En algunas situaciones, se utiliza una solución salina fisiológica equilibrada para limpiar el ojo para eliminar la suciedad y a diluir las bacterias a un nivel aceptable para una cirugía que se produzca. La boca también resulta difícil de limpiar suficientemente para la cirugía. Puede ser aclarado con una solución salina equilibrada fisiológico para diluir las bacterias; sin embargo, es importante evitar el uso demasiado salino, que puede ocasionar aspiración del fluido. Encías, dientes y la lengua se pueden limpiar con un no tóxico antisépticos. Sin embargo, la aplicación de soluciones a las membranas mucosas puede resultar en absorción sistémica. Cirugías en la zona anal, como la reducción quirúrgica de prolapso rectal, no se consideran cirugías limpias. El uso de algunas soluciones antisépticas puede aumentar el daño tisular y prevenir o prolongar la curación. El uso de una solución salina equilibrada fisiológico para lavar el área limpia de la suciedad es el método preferido de preparación quirúrgica. ^{2, 4}

5. Posicionamiento

posicionamiento del paciente para procedimientos abdominales consiste en la obtención de las extremidades del animal propenso a la plataforma con una cinta o una ligadura. Cuando se usa una ligadura para extender las extremidades, se debe tener cuidado para evitar la circulación en los pies se ve comprometida, para evitar excesiva tensión en las extremidades y un estiramiento excesivo de las extremidades que podrían afectar a las articulaciones y para evitar el impedimento de la respiración. Los lazos deben ser una liberación rápida con sólo un bucle de enganche de media sobre la extremidad. Algunas plataformas disponibles en el mercado vienen con retracción del miembro incorporado que consiste en ganchos o lazos de alambre de acero inoxidable o cadena de la bola, que se puede ajustar según el tamaño del animal. Si se utiliza cinta, deben respetarse para superficies secas.

6. Draping

una vez el animal está preparado y colocado en la plataforma quirúrgica, cortinas quirúrgicas se utilizan para prevenir la contaminación del material de sutura y para mantener un campo estéril en el sitio quirúrgico. Cortinas pueden ser un material de tela reutilizables, un material desechable de papel o un material adhesivo plástico disponible.

cortinas desechables tienen una matriz de fibra tejida para la fuerza que permite cortar en cualquier forma o tamaño, incluyendo cortar un hueco o abertura en la cortina, sin lagrimeo o deshilachamiento de los bordes de corte. También es repelentes de la humedad. Las cortinas desechables pueden adquirirse envasados y preesterilizado en una variedad de tamaños y formas. Cortinas de paño no están diseñados para ser cortado por el cirujano para crear un hueco. Se compran con un hueco del borde de corte y límite. Cortinas de paño requieren lavado y esterilización. Cuando se cuida bien, cortinas de tela pueden durar años, lo que les hace una inversión económica.

tanto de papel y cortinas de paño se sujetan con abrazaderas de la toalla por la piel del animal si se trata de un roedor más grande, como una rata adulta. Para los roedores más pequeños, el cobertor no se fija a la piel, que requiere vigilancia y cuidado por parte del cirujano para no desplazar o cambiar de puesto la cortina una vez que se ha posicionado en el animal.

cortinas adhesivas son ya sea transparente u opaco. Las cortinas claras son preferibles para las cirugías de roedores, ya que permiten la visualización directa del animal. Algunas cortinas de plástico son una combinación de plástico y papel, con la zona plástica que es directamente sobre el animal y el área de papel definición extendido campo estéril. La parte de la cortina que está directamente sobre el sitio de la incisión quirúrgica está diseñada para adherirse a la zona de incisión. El cirujano puede entonces cortar directamente a través de la plástica al hacer la incisión en la piel. Envoltura de plástico esterilizado ha sido aceptado como un material útil y rentable para las cirugías de roedores. Debe tenerse cuidado para evitar la constricción del movimiento para respirar cuando la envoltura se coloca alrededor del paciente. El abrigo de conservar calor del cuerpo, permite la visualización del paciente y proporcionar una barrera de humedad entre el campo estéril y los animales. También puede servir para ayudar en la colocación y sujeción del animal para la cirugía en lugar de fijación de extremidades.

cortinas de cualquier tipo deben ser cuidadosamente desplegadas para evitar el contacto con áreas no estériles, equipos y personal, nunca debe ser revelados por sacudir o agitar.

1. Cortinas de papel: en la cortina método único, el cobertor está desplegado para permitir el corte de la fenestración si uno no es precortado.
   1. El cirujano colocará el cobertor sobre el animal manteniendo las manos en el lado de la cortina que no va a tocar al paciente.
   2. El cobertor se ajusta para que el campo quirúrgico es visible a través de la fenestración.
   3. El paño se sujeta con las abrazaderas de la toalla por la piel del animal en el caso de las ratas más grandes.
2. Papel o plástico con una ventana adhesivo
   1. un paño con un adhesivo ventana requiere peeling de la zona de papel para permitir que el área de adhesivo pegar en el campo quirúrgico.
   2. Al desplegar el paño estéril, el área adhesivo generalmente es la región más alta y es fácilmente accesible al cirujano.
   3. Una vez al descubierto el adhesivo, el cobertor está cuidadosamente desplegado y forma que el lado adhesivo quede hacia el animal.
   4. Es imperativo que el cobertor se coloca correctamente, como una vez que el adhesivo entra en contacto con el animal no podrá ajustarse.
   5. El cirujano debe gentrabajo Pulse el campo quirúrgico para crear un sello con la piel el adhesivo.
3. Cortinas de paño
   1. cortinas de paño fenestrado no debe ser cortado, por lo tanto, es el cirujano ' responsabilidad s para seleccionar un paño con una abertura lo suficientemente grande para exponer adecuadamente la zona quirúrgica, pero no tan grande para permitir la exposición de cualquiera superficies del cuerpo unshaved y desprevenida.
   2. El cobertor está desplegado cuidadosamente para revelar la fenestración.
   3. El cirujano colocará el cobertor sobre el animal, manteniendo las manos en el lado de la cortina que no va a tocar al paciente.
   4. El cobertor se ajusta para que el campo quirúrgico es visible a través de la fenestración.

figura 2. Campo quirúrgico visible a través de la fenestración de un paño colocado correctamente.

4. adhesivo cortinas: un material útil y rentable para cirugías roedores. ⁵
   1. el cobertor debe tirar del rollo de una manera para garantizar la sección se utiliza estéril.
   2. El asistente quirúrgico abre la caja y tira de una longitud de la envoltura hacia fuera, teniendo cuidado de evitar tocar a la caja o cualquier otra superficie.
   3. El cirujano agarra el envoltorio de cada lado, y el ayudante corta el extremo que está sosteniendo a (aproximadamente 3-4 pulgadas).
   4. Después de descartar el borde cortado, el Asistente también corta la sección del resto del rollo.
   5. El cirujano agarra un lado de la envoltura y lo coloca sobre el animal.
   6. Las propiedades de la envoltura le permiten adherirse a las superficies de todos.
   7. El cirujano presiona la película a los animales y crea un campo estéril.
   8. No es necesario usar toalla abrazaderas o te preocupes que la cortina se desplazará.
   9. Se debe tener cuidado para evitar la constricción del movimiento para la respiración. El abrigo será conservar calor del cuerpo, permite visualización del paciente y proporcionar una barrera de humedad entre el campo estéril y los animales.

7. Monitorización intraoperatoria

Anesthetized pacientes deben controlarse para temperatura corporal, respiración y ritmo cardíaco hasta que se recuperaran completamente.

la temperatura corporal puede ser controlada directamente o indirectamente. Para monitoreo directo, debe usarse una sonda rectal diseñada específicamente para los roedores. Pequeños animales rectales Termómetros de mercurio o digital, son demasiado grandes para el uso en ratones y ratas sin daño a los tejidos rectales y esfínter anal. En cepas susceptibles, su uso podría precipitar el prolapso rectal. Supervisión indirecta consiste en colocar un termómetro al lado de los animales o en el cuerpo en una fuente de calor externa. Aunque esto no le dará una temperatura exacta del cuerpo, puede indicar la eficacia de la fuente de calor y permite ajustes reducir o aumentar el calor según sea necesario.

es difícil de auscultar la frecuencia cardíaca y contar las respiraciones en pequeños roedores sin equipo especializado.

monitoreo mayoría es visual y sólo indica la presencia o ausencia de pecho o respiración abdominal. Frecuencias cardíacas son evaluados como presente o ausente por palpación u observación visual del movimiento fino de la pared torácica. Esto no es posible durante una cirugía debido al drapeado y al pequeño tamaño de los animales.

control adicional puede hacerse a través de electrocardiogramas (ECG) y Oxímetros de pulso. ECG ' s de evaluar la situación cardiaca de un roedor durante anestesia y cirugía. El oxímetro de pulso utiliza la refracción de la luz roja e infrarroja para medir oxígeno en sangre arterial. Esta tecnología ha sido adaptada para el uso en los roedores con la cola o una pata. Ambos tipos de medición continua no invasiva del paciente ' s los signos vitales son fácilmente accesibles con una interrupción mínima del campo quirúrgico.

8. seguimiento postoperatorio

uno debe considerar el uso de una almohadilla térmica en la recuperación la jaula después de la cirugía. Además, la analgesia preventiva y postoperatorio se deberá siempre que sea posible. Disposiciones de analgesia son más eficaces en la reducción de la intensidad de la estimulación dolorosa cuando se administra antes del evento doloroso. Ventajas del uso preventivo de analgésicos incluyen la reducción de la intensidad de la estimulación dolorosa, mejora del animal ' s confort nivel después de la cirugía, la reducción en la cantidad de anestesia necesaria para mantener un plano quirúrgico y un suave recuperación de la anestesia una vez que concluye el procedimiento. Medicamentos preventivos y postoperatorio comúnmente utilizados se muestran en la tabla 1. ⁶

De de de

clase de fármaco	nombre	dosis	Frecuencia
droga antiinflamatoria no-steroidal (sustancia prohiba)	ketoprofeno	2-5 mg/kg SC ratones ratas de 5 mg/kg SC	cada 12 – 24 horas cada 12 – 24 horas
Non-steroidal anti-i drogas inflamatorias (sustancia prohiba)	Meglumina de Flunixina	ratones de 2,5 mg/kg SC	cada 12 – 24 horas
droga antiinflamatoria no-steroidal (sustancia prohiba)	Meloxicam	5-10 mg/kg PO ratones o ratones de 1-2 mg/kg SC 5-10 mg/kg PO o 1-2 mg/kg SC o PO ratas	cada 12 – 24 horas cada 24 horas cada 12 – 24 horas cada 24 horas
droga antiinflamatoria no-steroidal (Noncontrolle d sustancia)	paracetamol	50 mg/kg SC/IP o 100 mg/kg PO ratas	cada 8 – 12 horas
opiáceos (sustancias controladas)	butorfanol	0.5-3.0 mg/kg SC o 0.2-2 mg/kg ratones IP 2.0 mg / kg SC 0.2-2 mg/kg rata IP	cada 4 horas cada 2 – 4 horas cada 4 horas cada 2 – 4 horas
opiáceos (sustancias controladas)	buprenorfina	0.05-2.5 mg/kg SC o IP ratones 0.01 – ratas de 0.5 mg/kg SC	cada 6 – 12 horas cada 8 – 12 horas
opiáceos (sustancias controladas)	oximorfona	0.2-0.5 mg/kg SC ratones 0.2-0.5 mg/kg SC ratas	cada 6 – 1 2 horas cada 6 – 12 horas

tabla 1. Utilizan medicamentos preventivos y postoperatorios.