1. planificación prequirúrgica
aunque las directrices no requieren realizar cirugías roedores en una instalación quirúrgica dedicada, la zona de uso debe limpiarse con una apropiada superficie dura desinfectante, que se debe utilizar según el fabricante ' s figuran las concentraciones y tiempos de contacto. El área también debe mantenerse libre de obstáculos y no estar en la línea directa de la fuente y conductos de escape como los bosquejos podrían contribuir a la hipotermia del animal. Acceso a la sala debe limitarse cuando se llevan a cabo procedimientos quirúrgicos. Un área para preparación quirúrgica (especialmente para la eliminación de los animales ' pelo de s) y para la recuperación postoperatoria y cuidados, también debe ser señalado y en proximidad cercana, si no dentro de la sala de cirugía. En general, si las cirugías se realizan habitualmente en un área específica, el área debe no utilizarse para otras actividades.
preparación preoperatoria debe incluir un examen físico del paciente quirúrgico para identificar cualquier condición de salud subyacentes que puede interferir con la cirugía. Ya que los roedores tienen una alta tasa metabólica, y reservas de grasa muy limitada, no debería ayunaron antes de la cirugía. El animal ' estado de hidratación de s debe ser evaluado por una prueba de elasticidad de la piel. Suavemente se levanta la piel por encima de los hombros. En un animal normalmente hidratado, la piel rápidamente caerá de vuelta en su lugar, mientras que en un animal deshidratado, la piel no volverá inmediatamente a su posición normal. En general el aspecto, como la postura y la condición de la capa de pelo, debe señalarse también. Un animal que está mostrando una postura jorobada o una capa de cabello desarreglado, puede albergar una enfermedad. El examen debe realizarse justo antes de la administración de la anestesia, y anotar cualquier condición anormal en el animal ' gráfico de s. 2 por último, consideraciones para la anatomía y fisiología de la rata o el ratón deben hacerse durante la preparación para la cirugía.
2. plataforma
ambas especies tienen un elevada área superficial al cociente del volumen del cuerpo haciéndolos susceptibles a la hipotermia durante procedimientos quirúrgicos, especialmente cuando la cirugía expone la cavidad del cuerpo. Esfuerzos para prevenir la hipotermia incluyen el uso de una plataforma quirúrgica caliente.
la plataforma utilizada para la cirugía de roedor, que se construye generalmente de acero inoxidable o plástico duro, debe cubrirse con un material aislante o fuente de calor suplementaria para evitar que el animal ' calor de cuerpo s de escape durante el procedimiento. Fuentes de calor suplementarias incluyen agua de circulación calefacción almohadillas, forzadas de mantas de calentamiento de aire, lámparas de calor o una capa de espuma acolchado que cubre la plataforma quirúrgica. Plataformas quirúrgicas con construido en fuente de calor están disponibles en el mercado. Todas las plataformas deben ser de un material que es fácilmente desinfectada e impermeable a la humedad.
otros métodos de prevención de la hipotermia incluyen el uso de aisladores de masa, colocar aislante entre el animal y la plataforma quirúrgica y uso de fuentes de calor externas. 3 aisladores de masa atrapan aire dentro de una matriz de fibra, producción de " todavía aire " que rodea el animal. Mantas de agua caliente que circula puede ser utilizado debajo de la paciente. Este equipo está disponible en varios tamaños de roedores para equinos y permite apoyo térmico precisa con termostatos incorporados.
químicamente activado fuentes de calefacción puede ser antiguo uso o reutilizables. Un tipo consta de una bolsa de plástico llenada de una solución química y un disco de metal, que cuando presiona crea una reacción exotérmica. Esto hace que el líquido se solidifica y liberación de calor. Por lo general, tienen una cantidad limitada de calor y sólo son adecuadas para procedimientos cortos. Otras fuentes de calefacción química disponibles como sólidos a temperatura ambiente, pero cuando se calienta, se convierten en líquido. Como un animal se coloca en la almohadilla, el líquido libera calor, y el contenido de la almohadilla solidifica como enfríe. Éstos pueden liberar calor durante mucho más tiempo. Como un beneficio, no pueden exceder la temperatura de activación (~ 39° C), eliminando así la necesidad de un termostato de.
paquetes de agua están disponibles como botellas de agua caliente que consiste en una bolsa con un tapón de goma o silicona. Los paquetes están llenos de agua caliente que entonces emite calor en la superficie exterior. El paquete poco a poco perderá calor como el agua se enfría. Una versión más moderna consiste en un plástico de hoja con tejido permeable al agua adherida a la parte superior. Entre el espacio está lleno de un polvo hidrofílico, que absorbe agua y se hincha. Puede ser utilizado como una fuente de calor o como una fuente de enfriamiento. Dependiendo de la calidad de los materiales, puede ser reutilizado y recalentarse en el microondas o empapado en agua caliente.
deberán tomarse precauciones cuando se utilizan fuentes de calor externas. Temperatura del cuerpo se debe controlar con una sonda rectal o termómetro colocado junto a los animales en la fuente de calor. Todas las fuentes de calor externas deberán comprobarse defectos antes del uso.
3. Retiro del pelo
del sitio quirúrgico debe estar preparado para minimizar la contaminación de la incisión. El pelo debe sujetado cerca o quitar con una crema depilatoria química, que se disuelve el pelo en el folículo. 2,3 aunque a veces se puede realizar el recorte de pelo en un animal consciente con sujeción manual, la aplicación de la crema depilatoria sólo puede hacerse en un animal anestesiado para evitar la ingestión del producto, daño ocular y eliminación de de exceso de cabello. Afeitar con una maquinilla de afeitar es una opción si no existe alternativa. Este método requiere habilidad técnica, tiempo extra y paciencia para evitar laceraciones en la piel. El campo quirúrgico debe ser lo suficientemente grande para permitir la incisión y sutura sin la inclusión de la piel en la herida quirúrgica, pero más pequeña posible para evitar la exacerbación de la hipotermia.
figura 1. La posición correcta de una recortadora de pelo mientras se afeita.
4. Quirúrgico friegue
soluciones de lavado quirúrgico a ser utilizado deben: 1) substancialmente reducir los microbios presentes en la piel y contienen una preparación antimicrobiana nonirritating; 2) poseen un amplio espectro de propiedades antimicrobianas; 3) ser acción rápida; y 4) tienen una actividad persistente y acumulativa.
las dos soluciones de limpieza limpieza utilizados son chlorhexidines y yodóforos. Soluciones de clorhexidina son eficaces contra bacterias y virus incluso en presencia de materia orgánica. En contraste, los yodóforos tienen una amplia gama de acción microbicida, pero su eficacia se reduce en presencia de materia orgánica; la actividad residual es menor que el de la chlorhexidines.
enjuagues entre los matorrales son agua estéril o alcohol. Soluciones basadas en alcohol que contenga alcohol al 60-95% tienen grandes acciones antimicrobianas mediante la desnaturalización de las proteínas. 2 Sin embargo, alcohol puede ser un irritante de la piel fuerte. Agua estéril es eficaz en el enjuague de la zona, sin embargo, no tiene propiedades antimicrobianas.
áreas del cuerpo donde no se utilizan los métodos de lavado quirúrgicos estándar incluyen los ojos, la boca y la zona anal. Porque se dañaría la superficie del ojo si se utilizan soluciones de limpieza, se realiza un lavado quirúrgico sólo a los párpados después de infundir una pomada protectora en el ojo. En algunas situaciones, se utiliza una solución salina fisiológica equilibrada para limpiar el ojo para eliminar la suciedad y a diluir las bacterias a un nivel aceptable para una cirugía que se produzca. La boca también resulta difícil de limpiar suficientemente para la cirugía. Puede ser aclarado con una solución salina equilibrada fisiológico para diluir las bacterias; sin embargo, es importante evitar el uso demasiado salino, que puede ocasionar aspiración del fluido. Encías, dientes y la lengua se pueden limpiar con un no tóxico antisépticos. Sin embargo, la aplicación de soluciones a las membranas mucosas puede resultar en absorción sistémica. Cirugías en la zona anal, como la reducción quirúrgica de prolapso rectal, no se consideran cirugías limpias. El uso de algunas soluciones antisépticas puede aumentar el daño tisular y prevenir o prolongar la curación. El uso de una solución salina equilibrada fisiológico para lavar el área limpia de la suciedad es el método preferido de preparación quirúrgica. 2, 4
5. Posicionamiento
posicionamiento del paciente para procedimientos abdominales consiste en la obtención de las extremidades del animal propenso a la plataforma con una cinta o una ligadura. Cuando se usa una ligadura para extender las extremidades, se debe tener cuidado para evitar la circulación en los pies se ve comprometida, para evitar excesiva tensión en las extremidades y un estiramiento excesivo de las extremidades que podrían afectar a las articulaciones y para evitar el impedimento de la respiración. Los lazos deben ser una liberación rápida con sólo un bucle de enganche de media sobre la extremidad. Algunas plataformas disponibles en el mercado vienen con retracción del miembro incorporado que consiste en ganchos o lazos de alambre de acero inoxidable o cadena de la bola, que se puede ajustar según el tamaño del animal. Si se utiliza cinta, deben respetarse para superficies secas.
6. Draping
una vez el animal está preparado y colocado en la plataforma quirúrgica, cortinas quirúrgicas se utilizan para prevenir la contaminación del material de sutura y para mantener un campo estéril en el sitio quirúrgico. Cortinas pueden ser un material de tela reutilizables, un material desechable de papel o un material adhesivo plástico disponible.
cortinas desechables tienen una matriz de fibra tejida para la fuerza que permite cortar en cualquier forma o tamaño, incluyendo cortar un hueco o abertura en la cortina, sin lagrimeo o deshilachamiento de los bordes de corte. También es repelentes de la humedad. Las cortinas desechables pueden adquirirse envasados y preesterilizado en una variedad de tamaños y formas. Cortinas de paño no están diseñados para ser cortado por el cirujano para crear un hueco. Se compran con un hueco del borde de corte y límite. Cortinas de paño requieren lavado y esterilización. Cuando se cuida bien, cortinas de tela pueden durar años, lo que les hace una inversión económica.
tanto de papel y cortinas de paño se sujetan con abrazaderas de la toalla por la piel del animal si se trata de un roedor más grande, como una rata adulta. Para los roedores más pequeños, el cobertor no se fija a la piel, que requiere vigilancia y cuidado por parte del cirujano para no desplazar o cambiar de puesto la cortina una vez que se ha posicionado en el animal.
cortinas adhesivas son ya sea transparente u opaco. Las cortinas claras son preferibles para las cirugías de roedores, ya que permiten la visualización directa del animal. Algunas cortinas de plástico son una combinación de plástico y papel, con la zona plástica que es directamente sobre el animal y el área de papel definición extendido campo estéril. La parte de la cortina que está directamente sobre el sitio de la incisión quirúrgica está diseñada para adherirse a la zona de incisión. El cirujano puede entonces cortar directamente a través de la plástica al hacer la incisión en la piel. Envoltura de plástico esterilizado ha sido aceptado como un material útil y rentable para las cirugías de roedores. Debe tenerse cuidado para evitar la constricción del movimiento para respirar cuando la envoltura se coloca alrededor del paciente. El abrigo de conservar calor del cuerpo, permite la visualización del paciente y proporcionar una barrera de humedad entre el campo estéril y los animales. También puede servir para ayudar en la colocación y sujeción del animal para la cirugía en lugar de fijación de extremidades.
cortinas de cualquier tipo deben ser cuidadosamente desplegadas para evitar el contacto con áreas no estériles, equipos y personal, nunca debe ser revelados por sacudir o agitar.
figura 2. Campo quirúrgico visible a través de la fenestración de un paño colocado correctamente.
7. Monitorización intraoperatoria
Anesthetized pacientes deben controlarse para temperatura corporal, respiración y ritmo cardíaco hasta que se recuperaran completamente.
la temperatura corporal puede ser controlada directamente o indirectamente. Para monitoreo directo, debe usarse una sonda rectal diseñada específicamente para los roedores. Pequeños animales rectales Termómetros de mercurio o digital, son demasiado grandes para el uso en ratones y ratas sin daño a los tejidos rectales y esfínter anal. En cepas susceptibles, su uso podría precipitar el prolapso rectal. Supervisión indirecta consiste en colocar un termómetro al lado de los animales o en el cuerpo en una fuente de calor externa. Aunque esto no le dará una temperatura exacta del cuerpo, puede indicar la eficacia de la fuente de calor y permite ajustes reducir o aumentar el calor según sea necesario.
es difícil de auscultar la frecuencia cardíaca y contar las respiraciones en pequeños roedores sin equipo especializado.
monitoreo mayoría es visual y sólo indica la presencia o ausencia de pecho o respiración abdominal. Frecuencias cardíacas son evaluados como presente o ausente por palpación u observación visual del movimiento fino de la pared torácica. Esto no es posible durante una cirugía debido al drapeado y al pequeño tamaño de los animales.
control adicional puede hacerse a través de electrocardiogramas (ECG) y Oxímetros de pulso. ECG ' s de evaluar la situación cardiaca de un roedor durante anestesia y cirugía. El oxímetro de pulso utiliza la refracción de la luz roja e infrarroja para medir oxígeno en sangre arterial. Esta tecnología ha sido adaptada para el uso en los roedores con la cola o una pata. Ambos tipos de medición continua no invasiva del paciente ' s los signos vitales son fácilmente accesibles con una interrupción mínima del campo quirúrgico.
8. seguimiento postoperatorio
uno debe considerar el uso de una almohadilla térmica en la recuperación la jaula después de la cirugía. Además, la analgesia preventiva y postoperatorio se deberá siempre que sea posible. Disposiciones de analgesia son más eficaces en la reducción de la intensidad de la estimulación dolorosa cuando se administra antes del evento doloroso. Ventajas del uso preventivo de analgésicos incluyen la reducción de la intensidad de la estimulación dolorosa, mejora del animal ' s confort nivel después de la cirugía, la reducción en la cantidad de anestesia necesaria para mantener un plano quirúrgico y un suave recuperación de la anestesia una vez que concluye el procedimiento. Medicamentos preventivos y postoperatorio comúnmente utilizados se muestran en la tabla 1. 6
| clase de fármaco | nombre | dosis | Frecuencia |
| droga antiinflamatoria no-steroidal (sustancia prohiba) | ketoprofeno | 2-5 mg/kg SC ratones ratas de 5 mg/kg SC | cada 12 – 24 horas cada 12 – 24 horas |
| Non-steroidal anti-i drogas inflamatorias (sustancia prohiba) | Meglumina de Flunixina | ratones de 2,5 mg/kg SC | cada 12 – 24 horas |
| droga antiinflamatoria no-steroidal (sustancia prohiba) | Meloxicam | 5-10 mg/kg PO ratones o ratones de 1-2 mg/kg SC 5-10 mg/kg PO o 1-2 mg/kg SC o PO ratas | cada 12 – 24 horas cada 24 horas cada 12 – 24 horas cada 24 horas |
| droga antiinflamatoria no-steroidal (Noncontrolle d sustancia) | paracetamol | 50 mg/kg SC/IP o 100 mg/kg PO ratas | cada 8 – 12 horas |
| opiáceos (sustancias controladas) | butorfanol | 0.5-3.0 mg/kg SC o 0.2-2 mg/kg ratones IP 2.0 mg / kg SC 0.2-2 mg/kg rata IP | cada 4 horas cada 2 – 4 horas cada 4 horas cada 2 – 4 horas |
| opiáceos (sustancias controladas) | buprenorfina | 0.05-2.5 mg/kg SC o IP ratones 0.01 – ratas de 0.5 mg/kg SC | cada 6 – 12 horas cada 8 – 12 horas |
| opiáceos (sustancias controladas) | oximorfona | 0.2-0.5 mg/kg SC ratones 0.2-0.5 mg/kg SC ratas | cada 6 – 1 2 horas cada 6 – 12 horas |
tabla 1. Utilizan medicamentos preventivos y postoperatorios.
Fuente: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Universidad de Notre Dame, en
la Guía para el cuidado y uso de animales de laboratorio 1 dicta que supervivencia roedores cirugía realizarse asépticamente. Técnica aséptica utiliza prácticas específicas que reduzcan al mínimo la contaminación del sitio quirúrgico, incluyendo la preparación del paciente, preparación del cirujano, esterilización de instrumental y otros suministros y el uso de un ambiente limpio y controlado. Planificación prequirúrgica, monitorización intraoperatoria y cuidado postoperatorio son esenciales para una recuperación exitosa de animales de cirugías supervivencia.
1. planificación prequirúrgica
aunque las directrices no requieren realizar cirugías roedores en una instalación quirúrgica dedicada, la zona de uso debe limpiarse con una apropiada superficie dura desinfectante, que se debe utilizar según el fabricante ' s figuran las concentraciones y tiempos de contacto. El área también debe mantenerse libre de obstáculos y no estar en la línea directa de la fuente y conductos de escape como los bosquejos podrían contribuir a la hipotermia del animal. Acceso a la sala debe limitarse cuando se llevan a cabo procedimientos quirúrgicos. Un área para preparación quirúrgica (especialmente para la eliminación de los animales ' pelo de s) y para la recuperación postoperatoria y cuidados, también debe ser señalado y en proximidad cercana, si no dentro de la sala de cirugía. En general, si las cirugías se realizan habitualmente en un área específica, el área debe no utilizarse para otras actividades.
preparación preoperatoria debe incluir un examen físico del paciente quirúrgico para identificar cualquier condición de salud subyacentes que puede interferir con la cirugía. Ya que los roedores tienen una alta tasa metabólica, y reservas de grasa muy limitada, no debería ayunaron antes de la cirugía. El animal ' estado de hidratación de s debe ser evaluado por una prueba de elasticidad de la piel. Suavemente se levanta la piel por encima de los hombros. En un animal normalmente hidratado, la piel rápidamente caerá de vuelta en su lugar, mientras que en un animal deshidratado, la piel no volverá inmediatamente a su posición normal. En general el aspecto, como la postura y la condición de la capa de pelo, debe señalarse también. Un animal que está mostrando una postura jorobada o una capa de cabello desarreglado, puede albergar una enfermedad. El examen debe realizarse justo antes de la administración de la anestesia, y anotar cualquier condición anormal en el animal ' gráfico de s. 2 por último, consideraciones para la anatomía y fisiología de la rata o el ratón deben hacerse durante la preparación para la cirugía.
2. plataforma
ambas especies tienen un elevada área superficial al cociente del volumen del cuerpo haciéndolos susceptibles a la hipotermia durante procedimientos quirúrgicos, especialmente cuando la cirugía expone la cavidad del cuerpo. Esfuerzos para prevenir la hipotermia incluyen el uso de una plataforma quirúrgica caliente.
la plataforma utilizada para la cirugía de roedor, que se construye generalmente de acero inoxidable o plástico duro, debe cubrirse con un material aislante o fuente de calor suplementaria para evitar que el animal ' calor de cuerpo s de escape durante el procedimiento. Fuentes de calor suplementarias incluyen agua de circulación calefacción almohadillas, forzadas de mantas de calentamiento de aire, lámparas de calor o una capa de espuma acolchado que cubre la plataforma quirúrgica. Plataformas quirúrgicas con construido en fuente de calor están disponibles en el mercado. Todas las plataformas deben ser de un material que es fácilmente desinfectada e impermeable a la humedad.
otros métodos de prevención de la hipotermia incluyen el uso de aisladores de masa, colocar aislante entre el animal y la plataforma quirúrgica y uso de fuentes de calor externas. 3 aisladores de masa atrapan aire dentro de una matriz de fibra, producción de " todavía aire " que rodea el animal. Mantas de agua caliente que circula puede ser utilizado debajo de la paciente. Este equipo está disponible en varios tamaños de roedores para equinos y permite apoyo térmico precisa con termostatos incorporados.
químicamente activado fuentes de calefacción puede ser antiguo uso o reutilizables. Un tipo consta de una bolsa de plástico llenada de una solución química y un disco de metal, que cuando presiona crea una reacción exotérmica. Esto hace que el líquido se solidifica y liberación de calor. Por lo general, tienen una cantidad limitada de calor y sólo son adecuadas para procedimientos cortos. Otras fuentes de calefacción química disponibles como sólidos a temperatura ambiente, pero cuando se calienta, se convierten en líquido. Como un animal se coloca en la almohadilla, el líquido libera calor, y el contenido de la almohadilla solidifica como enfríe. Éstos pueden liberar calor durante mucho más tiempo. Como un beneficio, no pueden exceder la temperatura de activación (~ 39° C), eliminando así la necesidad de un termostato de.
paquetes de agua están disponibles como botellas de agua caliente que consiste en una bolsa con un tapón de goma o silicona. Los paquetes están llenos de agua caliente que entonces emite calor en la superficie exterior. El paquete poco a poco perderá calor como el agua se enfría. Una versión más moderna consiste en un plástico de hoja con tejido permeable al agua adherida a la parte superior. Entre el espacio está lleno de un polvo hidrofílico, que absorbe agua y se hincha. Puede ser utilizado como una fuente de calor o como una fuente de enfriamiento. Dependiendo de la calidad de los materiales, puede ser reutilizado y recalentarse en el microondas o empapado en agua caliente.
deberán tomarse precauciones cuando se utilizan fuentes de calor externas. Temperatura del cuerpo se debe controlar con una sonda rectal o termómetro colocado junto a los animales en la fuente de calor. Todas las fuentes de calor externas deberán comprobarse defectos antes del uso.
3. Retiro del pelo
del sitio quirúrgico debe estar preparado para minimizar la contaminación de la incisión. El pelo debe sujetado cerca o quitar con una crema depilatoria química, que se disuelve el pelo en el folículo. 2,3 aunque a veces se puede realizar el recorte de pelo en un animal consciente con sujeción manual, la aplicación de la crema depilatoria sólo puede hacerse en un animal anestesiado para evitar la ingestión del producto, daño ocular y eliminación de de exceso de cabello. Afeitar con una maquinilla de afeitar es una opción si no existe alternativa. Este método requiere habilidad técnica, tiempo extra y paciencia para evitar laceraciones en la piel. El campo quirúrgico debe ser lo suficientemente grande para permitir la incisión y sutura sin la inclusión de la piel en la herida quirúrgica, pero más pequeña posible para evitar la exacerbación de la hipotermia.
figura 1. La posición correcta de una recortadora de pelo mientras se afeita.
4. Quirúrgico friegue
soluciones de lavado quirúrgico a ser utilizado deben: 1) substancialmente reducir los microbios presentes en la piel y contienen una preparación antimicrobiana nonirritating; 2) poseen un amplio espectro de propiedades antimicrobianas; 3) ser acción rápida; y 4) tienen una actividad persistente y acumulativa.
las dos soluciones de limpieza limpieza utilizados son chlorhexidines y yodóforos. Soluciones de clorhexidina son eficaces contra bacterias y virus incluso en presencia de materia orgánica. En contraste, los yodóforos tienen una amplia gama de acción microbicida, pero su eficacia se reduce en presencia de materia orgánica; la actividad residual es menor que el de la chlorhexidines.
enjuagues entre los matorrales son agua estéril o alcohol. Soluciones basadas en alcohol que contenga alcohol al 60-95% tienen grandes acciones antimicrobianas mediante la desnaturalización de las proteínas. 2 Sin embargo, alcohol puede ser un irritante de la piel fuerte. Agua estéril es eficaz en el enjuague de la zona, sin embargo, no tiene propiedades antimicrobianas.
áreas del cuerpo donde no se utilizan los métodos de lavado quirúrgicos estándar incluyen los ojos, la boca y la zona anal. Porque se dañaría la superficie del ojo si se utilizan soluciones de limpieza, se realiza un lavado quirúrgico sólo a los párpados después de infundir una pomada protectora en el ojo. En algunas situaciones, se utiliza una solución salina fisiológica equilibrada para limpiar el ojo para eliminar la suciedad y a diluir las bacterias a un nivel aceptable para una cirugía que se produzca. La boca también resulta difícil de limpiar suficientemente para la cirugía. Puede ser aclarado con una solución salina equilibrada fisiológico para diluir las bacterias; sin embargo, es importante evitar el uso demasiado salino, que puede ocasionar aspiración del fluido. Encías, dientes y la lengua se pueden limpiar con un no tóxico antisépticos. Sin embargo, la aplicación de soluciones a las membranas mucosas puede resultar en absorción sistémica. Cirugías en la zona anal, como la reducción quirúrgica de prolapso rectal, no se consideran cirugías limpias. El uso de algunas soluciones antisépticas puede aumentar el daño tisular y prevenir o prolongar la curación. El uso de una solución salina equilibrada fisiológico para lavar el área limpia de la suciedad es el método preferido de preparación quirúrgica. 2, 4
5. Posicionamiento
posicionamiento del paciente para procedimientos abdominales consiste en la obtención de las extremidades del animal propenso a la plataforma con una cinta o una ligadura. Cuando se usa una ligadura para extender las extremidades, se debe tener cuidado para evitar la circulación en los pies se ve comprometida, para evitar excesiva tensión en las extremidades y un estiramiento excesivo de las extremidades que podrían afectar a las articulaciones y para evitar el impedimento de la respiración. Los lazos deben ser una liberación rápida con sólo un bucle de enganche de media sobre la extremidad. Algunas plataformas disponibles en el mercado vienen con retracción del miembro incorporado que consiste en ganchos o lazos de alambre de acero inoxidable o cadena de la bola, que se puede ajustar según el tamaño del animal. Si se utiliza cinta, deben respetarse para superficies secas.
6. Draping
una vez el animal está preparado y colocado en la plataforma quirúrgica, cortinas quirúrgicas se utilizan para prevenir la contaminación del material de sutura y para mantener un campo estéril en el sitio quirúrgico. Cortinas pueden ser un material de tela reutilizables, un material desechable de papel o un material adhesivo plástico disponible.
cortinas desechables tienen una matriz de fibra tejida para la fuerza que permite cortar en cualquier forma o tamaño, incluyendo cortar un hueco o abertura en la cortina, sin lagrimeo o deshilachamiento de los bordes de corte. También es repelentes de la humedad. Las cortinas desechables pueden adquirirse envasados y preesterilizado en una variedad de tamaños y formas. Cortinas de paño no están diseñados para ser cortado por el cirujano para crear un hueco. Se compran con un hueco del borde de corte y límite. Cortinas de paño requieren lavado y esterilización. Cuando se cuida bien, cortinas de tela pueden durar años, lo que les hace una inversión económica.
tanto de papel y cortinas de paño se sujetan con abrazaderas de la toalla por la piel del animal si se trata de un roedor más grande, como una rata adulta. Para los roedores más pequeños, el cobertor no se fija a la piel, que requiere vigilancia y cuidado por parte del cirujano para no desplazar o cambiar de puesto la cortina una vez que se ha posicionado en el animal.
cortinas adhesivas son ya sea transparente u opaco. Las cortinas claras son preferibles para las cirugías de roedores, ya que permiten la visualización directa del animal. Algunas cortinas de plástico son una combinación de plástico y papel, con la zona plástica que es directamente sobre el animal y el área de papel definición extendido campo estéril. La parte de la cortina que está directamente sobre el sitio de la incisión quirúrgica está diseñada para adherirse a la zona de incisión. El cirujano puede entonces cortar directamente a través de la plástica al hacer la incisión en la piel. Envoltura de plástico esterilizado ha sido aceptado como un material útil y rentable para las cirugías de roedores. Debe tenerse cuidado para evitar la constricción del movimiento para respirar cuando la envoltura se coloca alrededor del paciente. El abrigo de conservar calor del cuerpo, permite la visualización del paciente y proporcionar una barrera de humedad entre el campo estéril y los animales. También puede servir para ayudar en la colocación y sujeción del animal para la cirugía en lugar de fijación de extremidades.
cortinas de cualquier tipo deben ser cuidadosamente desplegadas para evitar el contacto con áreas no estériles, equipos y personal, nunca debe ser revelados por sacudir o agitar.
figura 2. Campo quirúrgico visible a través de la fenestración de un paño colocado correctamente.
7. Monitorización intraoperatoria
Anesthetized pacientes deben controlarse para temperatura corporal, respiración y ritmo cardíaco hasta que se recuperaran completamente.
la temperatura corporal puede ser controlada directamente o indirectamente. Para monitoreo directo, debe usarse una sonda rectal diseñada específicamente para los roedores. Pequeños animales rectales Termómetros de mercurio o digital, son demasiado grandes para el uso en ratones y ratas sin daño a los tejidos rectales y esfínter anal. En cepas susceptibles, su uso podría precipitar el prolapso rectal. Supervisión indirecta consiste en colocar un termómetro al lado de los animales o en el cuerpo en una fuente de calor externa. Aunque esto no le dará una temperatura exacta del cuerpo, puede indicar la eficacia de la fuente de calor y permite ajustes reducir o aumentar el calor según sea necesario.
es difícil de auscultar la frecuencia cardíaca y contar las respiraciones en pequeños roedores sin equipo especializado.
monitoreo mayoría es visual y sólo indica la presencia o ausencia de pecho o respiración abdominal. Frecuencias cardíacas son evaluados como presente o ausente por palpación u observación visual del movimiento fino de la pared torácica. Esto no es posible durante una cirugía debido al drapeado y al pequeño tamaño de los animales.
control adicional puede hacerse a través de electrocardiogramas (ECG) y Oxímetros de pulso. ECG ' s de evaluar la situación cardiaca de un roedor durante anestesia y cirugía. El oxímetro de pulso utiliza la refracción de la luz roja e infrarroja para medir oxígeno en sangre arterial. Esta tecnología ha sido adaptada para el uso en los roedores con la cola o una pata. Ambos tipos de medición continua no invasiva del paciente ' s los signos vitales son fácilmente accesibles con una interrupción mínima del campo quirúrgico.
8. seguimiento postoperatorio
uno debe considerar el uso de una almohadilla térmica en la recuperación la jaula después de la cirugía. Además, la analgesia preventiva y postoperatorio se deberá siempre que sea posible. Disposiciones de analgesia son más eficaces en la reducción de la intensidad de la estimulación dolorosa cuando se administra antes del evento doloroso. Ventajas del uso preventivo de analgésicos incluyen la reducción de la intensidad de la estimulación dolorosa, mejora del animal ' s confort nivel después de la cirugía, la reducción en la cantidad de anestesia necesaria para mantener un plano quirúrgico y un suave recuperación de la anestesia una vez que concluye el procedimiento. Medicamentos preventivos y postoperatorio comúnmente utilizados se muestran en la tabla 1. 6
De de de| clase de fármaco | nombre | dosis | Frecuencia |
| droga antiinflamatoria no-steroidal (sustancia prohiba) | ketoprofeno | 2-5 mg/kg SC ratones ratas de 5 mg/kg SC | cada 12 – 24 horas cada 12 – 24 horas |
| Non-steroidal anti-i drogas inflamatorias (sustancia prohiba) | Meglumina de Flunixina | ratones de 2,5 mg/kg SC | cada 12 – 24 horas |
| droga antiinflamatoria no-steroidal (sustancia prohiba) | Meloxicam | 5-10 mg/kg PO ratones o ratones de 1-2 mg/kg SC 5-10 mg/kg PO o 1-2 mg/kg SC o PO ratas | cada 12 – 24 horas cada 24 horas cada 12 – 24 horas cada 24 horas |
| droga antiinflamatoria no-steroidal (Noncontrolle d sustancia) | paracetamol | 50 mg/kg SC/IP o 100 mg/kg PO ratas | cada 8 – 12 horas |
| opiáceos (sustancias controladas) | butorfanol | 0.5-3.0 mg/kg SC o 0.2-2 mg/kg ratones IP 2.0 mg / kg SC 0.2-2 mg/kg rata IP | cada 4 horas cada 2 – 4 horas cada 4 horas cada 2 – 4 horas |
| opiáceos (sustancias controladas) | buprenorfina | 0.05-2.5 mg/kg SC o IP ratones 0.01 – ratas de 0.5 mg/kg SC | cada 6 – 12 horas cada 8 – 12 horas |
| opiáceos (sustancias controladas) | oximorfona | 0.2-0.5 mg/kg SC ratones 0.2-0.5 mg/kg SC ratas | cada 6 – 1 2 horas cada 6 – 12 horas |
tabla 1. Utilizan medicamentos preventivos y postoperatorios.
Las pautas para el cuidado y uso de animales de laboratorio dictan que la cirugía de supervivencia de roedores se realice de manera aséptica y humana. Esto es para garantizar que el trauma sea mínimo para el animal; no hay infección debido al procedimiento quirúrgico en sí; para prevenir la hipotermia; y para disminuir el dolor y las molestias inducidas por los pasos invasivos.
Este video revisará las consideraciones generales para la planificación prequirúrgica, el seguimiento intraoperatorio y los cuidados postoperatorios. A esto le seguirá la demostración de algunos tipos de cirugías que se realizan en la investigación biomédica en la actualidad.
En primer lugar, repasemos los pasos preparatorios que debe realizar un científico antes de cualquier cirugía con roedores. El área donde se realizaría la cirugía debe estar libre de desorden y debe desinfectarse con un desinfectante de superficies duras adecuado. Tenga en cuenta que el área no debe estar en línea directa con la ventilación, ya que las corrientes de aire podrían contribuir a la hipotermia del paciente. Para prevenir aún más la hipotermia, la plataforma de cirugía debe aislarse con una fuente de calor suplementaria.
Los instrumentos quirúrgicos deben esterilizarse de antemano. Envuélvalos en bolsas esterilizables en autoclave individualmente y colóquelos en una configuración de carpa dentro del autoclave para permitir la penetración completa del vapor. Cuando se realizan cirugías en serie, esterilice los instrumentos entre cada animal con un esterilizador de perlas durante 10-15 segundos. Asegúrese de enfriar el instrumento antes de usarlo en el próximo animal.
Varios días antes de la cirugía, observe al animal para evaluar su condición corporal, apetito, ingesta de agua y producción de orina y heces. Además, tenga en cuenta la postura corporal y el estado del pelaje. Un animal que muestra una postura encorvada o un pelaje descuidado puede albergar una enfermedad y puede no ser un buen candidato para la cirugía.
Debido a que los roedores tienen una tasa metabólica tan alta y reservas de grasa muy limitadas, no deben ayunar antes de la cirugía. Evaluar el estado de hidratación del animal realizando la prueba de elasticidad de la piel. Para hacer esto, levante suavemente la piel por encima de los hombros. En un animal normalmente hidratado, la piel volverá rápidamente a su lugar, mientras que en un animal deshidratado la piel no volverá inmediatamente a su posición normal.
Después de preparar el área de cirugía y asegurarse de que el animal esté en buen estado de salud, puede comenzar a preparar al animal para el procedimiento. El primer paso es la anestesia. Para entender cómo inducir y mantener la anestesia, consulte otro video de esta colección. Después de que el animal esté sedado, retíralo de la cámara y colócalo en la almohadilla de afeitar. Tenga en cuenta que el afeitado debe realizarse en un área alejada de la plataforma quirúrgica para evitar cualquier contaminación. Aplique un ungüento lubricante para los ojos para evitar la sequedad de los ojos, especialmente para cirugías relativamente largas.
El afeitado se realiza comúnmente con maquinillas eléctricas, preferiblemente con una cuchilla quirúrgica A40. Se puede usar una cuchilla estándar de dos pulgadas para ratas, mientras que una cuchilla de media a una pulgada es más apropiada para ratones. Para evitar rasguños y cortes, primero estire la piel para estabilizarla. A continuación, coloque la parte plana de la cuchilla sobre la piel y muévala en contra de la dirección del crecimiento del vello. El campo quirúrgico afeitado debe ser lo suficientemente grande como para permitir la incisión y la sutura sin inclusión de pelo en la herida quirúrgica, pero lo más pequeño posible para evitar la exacerbación de la hipotermia. Alternativamente, se puede eliminar el vello con una crema depilatoria, que disuelve el vello en el folículo. Primero, aplique el producto en el área del sitio quirúrgico con un hisopo. Pasados aproximadamente tres minutos, enjuague y limpie la piel con agua estéril para eliminar todo rastro de la crema y evitar irritaciones o quemaduras químicas.
Después de la depilación, use una esponja de gasa humedecida para eliminar cualquier residuo, incluido el cabello y la caspa. Luego, con una gasa previamente empapada en una solución antiséptica o limpiadora, frote el área comenzando en el sitio de la incisión y extendiéndose hacia afuera en un patrón circular. A continuación, aplique el líquido de enjuague en el mismo patrón circular, en espiral desde la línea de incisión hasta la periferia del campo quirúrgico. Repita el ciclo de limpieza y enjuague al menos tres veces. Después del enjuague final, coloque una gasa estéril, mojada con alcohol o yodo, sobre el campo quirúrgico. La gasa permanecerá en su lugar mientras el animal es transportado y colocado en la plataforma quirúrgica.
El siguiente paso es posicionar al animal. Para los procedimientos dorsales, coloque al animal en posición prona. Asegure las extremidades a la plataforma con una abrazadera o cinta adhesiva. Se debe tener cuidado de no: comprometer la circulación de las patas, causar una tensión excesiva en las extremidades, dañar las articulaciones debido al estiramiento excesivo o impedir la respiración del animal. Una vez que el animal esté preparado y colocado en la plataforma quirúrgica, retire la gasa que cubre el área de la incisión y ahora el animal está listo para cubrirlo.
Recuerde que el drapeado es una técnica aséptica, por lo que el cirujano debe usar guantes estériles, un gorro bouffant, una mascarilla quirúrgica y una bata de laboratorio limpia o una bata quirúrgica estéril. Las cortinas pueden estar hechas de tela, que es reutilizable, o de papel desechable o material adhesivo plástico. Las cortinas de cualquier tipo nunca deben sacudirse ni agitarse para desplegarse. Deben abrirse cuidadosamente para evitar el contacto con áreas, equipos y personal no estériles. Si el paño no está precortado, despliéguelo lo suficiente para que pueda crear una abertura con tijeras estériles que sea lo suficientemente grande como para exponer adecuadamente el área quirúrgica, pero no tan grande como para permitir la exposición de superficies corporales sin afeitar y sin preparar.
A continuación, coloque el paño sobre el animal manteniendo las manos en el lado del paño que no toque al paciente. Y por último, ajústelo para que el campo quirúrgico sea visible a través de la abertura. Esto permite mantener un campo estéril en el sitio quirúrgico durante todo el procedimiento. Si utiliza una cortina de papel con una ventana adhesiva, primero retire el papel de la zona adhesiva. Luego, despliega el paño con cuidado, gíralo de modo que el lado adhesivo quede hacia el animal y colócalo sobre el área quirúrgica. A continuación, presione suavemente el adhesivo sobre el campo quirúrgico para crear un sello con la piel.
Después de la preparación, el siguiente paso es la cirugía. Así que echemos un vistazo a algunas cosas que el cirujano debe tener en cuenta durante y después de la cirugía. Mientras están bajo anestesia, los animales deben ser monitoreados para determinar la temperatura corporal, la respiración y la frecuencia cardíaca hasta que se recuperen por completo.
Para el control directo de la temperatura corporal, se debe utilizar una sonda rectal diseñada específicamente para roedores. ¿El rango normal es de 35.3 a 38? C que es de 97,5 a 100,4? F. Alternativamente, para el monitoreo indirecto, coloque el termómetro al lado o debajo del animal. Aunque esto no dará una temperatura corporal exacta, puede indicar la efectividad de la fuente de calor y permitir el ajuste para reducir o aumentar el calor según sea necesario.
Mientras tanto, durante todo el procedimiento, controle visualmente la frecuencia cardíaca, las respiraciones y el color de la cola. Ocasionalmente, se puede realizar un monitoreo adicional mediante el uso de electrocardiogramas, que evalúan el estado cardíaco de un roedor durante la anestesia y la cirugía.
Después de la cirugía, el animal debe ser devuelto a una jaula de recuperación colocada parcialmente sobre una almohadilla térmica y la comida debe ser fácilmente accesible. La colocación parcial en la almohadilla térmica permite que el animal se aleje de la fuente de calor después de haber recuperado la conciencia. Además, se debe proporcionar analgesia preventiva y postoperatoria siempre que sea posible. Consulte la tabla 1 a continuación para ver la lista de analgésicos recomendados, su dosis, vía y frecuencia de administración.
Ahora que conoces bien las consideraciones, veamos algunas de las cirugías de supervivencia realizadas por investigadores biomédicos.
Con el fin de manipular el cerebro en animales vivos, los científicos a menudo realizan cirugías estereotáxicas utilizando un equipo especializado llamado "marco estereotáxico". Con esta herramienta y un sistema de coordenadas tridimensional, se puede apuntar a ubicaciones específicas para medir la actividad cerebral, inducir lesiones o realizar manipulaciones genéticas.
Los científicos también realizan cirugías para crear modelos animales de trastornos humanos. Aquí, los investigadores crearon un modelo de "colgajo de piel" para estudiar el daño tisular inducido por isquemia. Al implantar una ventana de metal en la piel afeitada, los investigadores pudieron visualizar la microcirculación de la región en un animal vivo durante varios días. En otro experimento, los investigadores realizaron una cirugía para inducir un defecto óseo perforando una placa en el fémur de una rata, y luego estudiaron el proceso de curación ósea in vivo con la ayuda de rayos X.
Acabas de ver el vídeo de JoVE sobre las consideraciones que hay que tener en cuenta antes, durante y después de realizar una cirugía con roedores. Juntas, estas medidas reducirían la probabilidad de infección e hipotermia, y ayudarían a mejorar el dolor y la incomodidad del animal, lo que a su vez aumentará la probabilidad de una cirugía de supervivencia exitosa. Como siempre, ¡gracias por mirar!
mediante el uso de técnica aséptica, es reducida grandemente la incidencia de infección postquirúrgica. Minimizar el trauma tisular durante el procedimiento, tomando precauciones para prevenir la hipotermia, controlar el dolor postoperatorio y malestar y el uso de suplementos nutricionales hasta que el animal es capaz de andar normalmente todo reducirá el alcance de la negativa respuestas metabólicas al proceso quirúrgico y aumento de la probabilidad de una cirugía exitosa supervivencia.
Chapters in this video
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Overview
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Preoperative Preparations: Area and Animal Health
2:40
Prepping Steps: Shaving, Scrubbing, Positioning, and Draping
6:52
Intra and Postoperative Procedures
8:31
Applications
9:38
Summary
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