Reacciones de ligación de ADN

DNA Ligation Reactions
JoVE Science Education
Basic Methods in Cellular and Molecular Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Basic Methods in Cellular and Molecular Biology
DNA Ligation Reactions

189,190 Views

07:34 min
February 01, 2013

Overview

En biología molecular, la ligadura se refiere a la Unión de dos fragmentos de ADN mediante la formación de un enlace fosfodiéster. Una enzima conocida como una ligasa cataliza la reacción de ligadura. En la célula, ligasas reparación de roturas del filamento solo y doble que se producen durante la replicación del ADN. En el laboratorio, ligase de la DNA se utiliza durante la clonación molecular para unir fragmentos de ADN de insertos con vectores – las moléculas de ADN del portador que se reproducen fragmentos del destino en los organismos de acogida.

Este video proporciona una introducción a la ligadura de la DNA. El principio básico de la ligadura se describe así como un procedimiento paso a paso para configurar una reacción generalizada de la ligadura. Se discuten los aspectos más importantes de las reacciones de ligadura, como cómo la longitud de una proyección final pegajoso afecta la temperatura de reacción y cómo la proporción de ADN coloca a vector debe ser adaptados para prevenir uno mismo-ligadura. Herramientas moleculares que ayudan con trompas como la fosfatasa alcalina fragmento Klenow y camarón (SAP) se mencionan, y aplicaciones como trompas de proximidad y la adición de conectores a los fragmentos de la secuencia también se presentan.

Procedure

La ligadura puede definirse como el acto de Unión y en biología, que el término se refiere a una reacción enzimática que se une a dos biomoléculas con un enlace covalente. Este video describe la aplicación de ligadura de ADN en la investigación de la biología molecular.

En la célula, ligasas del ADN son enzimas que identifican y sellan roturas en el ADN, catalizando la formación de enlaces fosfodiéster entre los grupos hidroxilo 3′ y 5′-fosfato de la espina dorsal de la DNA. La ligadura se produce como parte de procesos celulares normales, como la replicación del ADN, para reparar roturas de DNA filamento solo y doble.

En el laboratorio, ligasas de ADN se utiliza rutinariamente en la clonación molecular – un proceso que une endonucleasa digiere fragmentos de ADN, o insertos, con un vector de endonucleasa digiere, como un plásmido, por lo que el fragmento puede ser introducido en las células del huésped y entonces reproducido.

Digestión de la endonucleasa implica el uso de endonucleasas de restricción, o enzimas de restricción, que crear nicks en tramos específicos de ADN.

Estos nicks pueden parecerse a la hebra se rompe produciendo 3′ y 5′ salientes, llamados extremos pegajosos o doble cadena rompe con sin voladizos, llamados extremos romos. La ligadura de los extremos pegajosos es ventajosa, porque los pares de base sobresaliente cortesía estabilizar la reacción. Porque trompas de extremo romo no tienen ningún emparejamiento base gratuitos, la ligadura es menos eficiente y más difícil para la enzima a unir los extremos. Extremos pegajosos y contundentes no pueden, en circunstancias normales, se unen juntos.

Sin embargo, el fragmento de Klenow, el producto de la ADN polimerasa 1, digerido con subtilisin puede convertir extremos pegajosos para blunt extremos. Klenow posee 3′ a 5′ actividad exonucleasa que mastica hasta 3′ aleros y voladizos de actividad polimerasa que embota 5′ extendiendo el extremo 3′ de la hebra complementaria.

Cuando el objetivo es insertar un gen en un plásmido, resellado de ADN vector, llamado uno mismo-ligadura, es un resultado indeseable común para una reacción de ligadura. Fosfatasa alcalina tratamiento de digestión posterior de ADN vector elimina 5′ fosfatos en ambos extremos y evita que este indeseable resultado.

Como mencionamos anteriormente, DNAs vector y el inserto son digeridos con endonucleasas antes de comenzar con una ligadura. Después de gel-purificación del vector digerido y de inserción, se miden las concentraciones de ADN un espectrofotómetro para determinar la concentración del vector purificado e insertar.

De esta concentración, el número de moléculas de insertar o vector de 1 μl puede determinarse basado en el peso molecular promedio de un par de base de ADN y el número de pares de bases en cada fragmento. Basado en la concentración molecular calculada de vector y el inserto, un 3 a 1 relación de inserto vector se calcula, para determinar el volumen del vector y del inserto utilizados en la reacción. Este 3 a 1 cociente de ADN insertar a vector es deseable, porque sube la probabilidad de que el inserto está ligada en vector versus vector ligadura de sí mismo.

Ahora que han determinado la cantidad de vectores e insertar ADN en la reacción, se procede a configurar la reacción de la ligadura en el hielo. El orden de la adición en que reacción de componentes se deben agregar a su tubo de microcentrífuga es como sigue: estéril suficiente para una marca de agua un volumen final de 10 μl, en nuestro caso usaremos 4 μL, 1 μl de 10 X de buffer de ligadura, 1 μl de 10mM de ATP , 1 μl de vector y 3 μl insertar ADN, como calculado y finalmente 1 μl ADN ligasa. La reacción se mezcla completamente, centrifugada y se incuban a la temperatura adecuada.

Si haces una ligadura del extremo pegajoso o embotado afecta la temperatura y la duración de la reacción de ligadura. Por ejemplo, la ligadura de un extremo pegajoso con una proyección de seis pares puede realizarse cerca de temperatura ambiente durante aproximadamente 1 hora, porque los extremos complementarios estabilizan la Unión de fragmentos. Voladizos cortos o trompas de extremo romo deben llevarse a cabo entre 14-20 ° c durante la noche.

Ahora que hemos aprendido cómo establecer una reacción de la ligadura, echemos un vistazo a algunas de las aplicaciones de este procedimiento.

Trompas se pueden utilizar para insertar directamente fragmentos amplificados por PCR en plásmidos lineal. Aquí se puede apreciar un investigador toma una muestra de cerebro de ratón congelado, aislamiento de ADN genómico de él y luego someterlo a bisulfito de PCR, que es un método basado en PCR para detectar ADN metilado. Productos de PCR entonces se unen directamente en el plásmido para crear una biblioteca de genes que están metiladas en esa región particular del cerebro.

Trompas se pueden utilizar para fijar conectores de oligonucleótidos, que contienen sitios de Unión para primers PCR, para purificar fragmentos de ADN. Cuando se trabaja con muestras tumorales, los científicos pueden utilizar este enfoque para la secuencia de ADN genómico del tumor, con la esperanza de identificar las mutaciones que causan el tumor.

En este video, la ligadura se realiza en la DNA aislada de formaldehído fija las células y posteriormente tratadas con enzimas de restricción y klenow en presencia de la biotina, que se utiliza para tirar hacia abajo de ADN ligado. Esta DNA entonces se amplifica mediante PCR y los productos ordenados para identificar las interacciones de la cromatina en varias escalas como se muestra.

Ahora que has aprendido acerca de ligase de la DNA, varios principios involucrados en establecer la ligadura en el laboratorio, posibles problemas y soluciones y diversas aplicaciones de la ligadura en la investigación de la biología molecular. Gracias por ver.

Transcript

Ligation can be defined as the act of joining, and in biology the term refers to an enzymatic reaction that joins two biomolecules with a covalent bond. This video describes the application of DNA ligation in molecular biology research.

In the cell, DNA ligases are enzymes that identify and seal breaks in DNA by catalyzing the formation of phosphodiester bonds between the 3’-hydroxyl and 5’-phosphate groups of the DNA backbone. Ligation occurs as part of normal cellular processes, such as DNA replication, to repair single and double strand DNA breaks.

In the laboratory, DNA ligases is routinely used in molecular cloning – a process that joins endonuclease-digested DNA fragments, or inserts, with an endonuclease-digested vector, such as a plasmid, so that the fragment can be introduced into host cells and then replicated.

Endonuclease digestions involve the use of restriction endonucleases, or restriction enzymes, which create nicks at specific stretches of DNA.

These nicks can resemble single strand breaks producing 3’ and 5’ overhangs, called sticky ends or double strand breaks with no overhangs, called blunt-ends. Ligating sticky ends is advantageous, because the complimentary overhanging base pairs stabilize the reaction. Because blunt end ligations don’t have any complimentary base pairing, the ligation is less efficient and more difficult for the enzyme to join the ends. Sticky and blunt ends cannot, under normal circumstances, be ligated together.

However, the Klenow fragment, the product of DNA polymerase 1, digested with subtilisin can convert sticky ends to blunt ends. Klenow possesses 3’ to 5’ exonuclease activity that chews up 3’ overhangs and polymerase activity that blunts 5’overhangs by extending the 3’ end of the complementary strand.

When the goal is to insert a gene into a plasmid, resealing of vector DNA, called self-ligation, is a common undesirable outcome for a ligation reaction. Alkaline phosphatase treatment of vector DNA post-digestion removes 5’phosphates on both ends and prevents this undesirable outcome.

As we mentioned previously, vector and insert DNAs are digested with endonucleases prior to beginning a ligation. Following gel-purification of digested vector and insert, DNA concentrations are measured a spectrophotometer to determine the concentration of the purified vector and insert.

From this concentration, the number of molecules of insert or vector in 1 µl can be determined based on the average molecular weight for a DNA base pair and the number of base pairs in each fragment. Based on the calculated molecular concentration of vector and insert, a 3 to 1 ratio of insert to vector is calculated, to determine the volume of vector and insert used in the reaction. This 3 to 1 ratio of DNA insert to vector is desirable, because it ups the probability of the insert being ligated into vector versus vector ligating itself.

Now that we have determined the amount of vector and insert DNA to use in the reaction, we proceed to set up the ligation reaction on ice. The order of adding in which reaction components should be added to your microfuge tube is as follows: sterile water enough to a make a 10 µl final volume, in our case we’ll use 4 µl, 1 µl 10X of ligation buffer, 1 µl 10mM of ATP, 1 µl of vector and 3 µl insert DNA, as calculated, and finally 1 µl DNA Ligase. The reaction is mixed thoroughly, centrifuged and incubated at the appropriate temperature.

Whether you are doing a sticky or blunt end ligation impacts the temperature and duration of the ligation reaction. For example, a sticky end ligation with a six base pair overhang can be carried out near room temperature for about 1 hr, because the complementary ends stabilize the joining of fragments. Short overhangs or blunt end ligations should be carried out between 14-20˚C overnight.

Now that we learned how to set up a ligation reaction, let’s have a look at some of the applications of this procedure.

Ligations can be used to directly insert PCR-amplified fragments into linearized plasmids. Here you see a researcher taking a sample of frozen mouse brain, isolating genomic DNA from it, and then subjecting it to bisulfite PCR, which is a PCR-based method to detect methylated DNA. PCR products are then directly ligated into the plasmid to create a library of genes that are methylated in that particular brain region.

Ligations can be used to attach oligonucleotide linkers, which contain binding sites for PCR primers, to purify DNA fragments. When working with tumor samples, scientists can use this approach to sequence tumor genomic DNA, with the hope of identifying tumor-causing mutations.

In this video, ligation is performed on DNA isolated from formaldehyde fixed cells and subsequently treated with a restriction enzyme and klenow in presence of biotin, which is then used to pull down ligated DNA. This DNA is then amplified using PCR and the products sequenced to identify chromatin interactions at various scales as shown.

You have now learned about DNA ligase, various principles involved in setting up ligation in the laboratory, potential problems and fixes and various applications of ligation in molecular biology research. Thanks for watching.