FM los tintes son una clase de moléculas fluorescentes que ha encontrado su uso importante en el estudio de la vesícula en el proceso de reciclaje. En virtud de una estructura química, estas moléculas se pueden insertar en la hoja exterior de las membranas de bicapa de fosfolípido. Después de la inserción de la membrana, son internalizadas en la célula mediante vesículas de endocitosis y al reciclan estas vesículas hacia la membrana. Desde entonces, estos tintes fluorescencia fuertemente en el ambiente hidrofóbico dentro de las membranas y débil en el compartimiento extracelular, los niveles de fluorescencia FM pueden utilizarse para registrar la actividad vesicular durante todo el proceso de reciclaje.
Este video proporciona una introducción al uso de tintes de FM en experimentos para examinar la vesícula reciclaje. En primer lugar repasamos la bioquímica de tintes de la FM y cómo sus propiedades permiten su uso en estos experimentos. Vamos entonces a través de un protocolo general para el uso de tintes de FM en tales estudios y finalmente, se discuten algunas investigaciones recientes que hace uso de estas moléculas únicas.
FM los tintes son colorantes de membrana que son ampliamente utilizados para vesícula imagen de reciclaje. Este es el proceso por el cual una célula forma vesículas de su propia membrana preservar el tamaño de la célula, reutilizar las proteínas caras y consecutivamente transporte de moléculas al espacio extracelular. Este proceso es comúnmente estudiado en las sinapsis neuronales, donde participa en la liberación de neurotransmisores. Además de examinar vesícula reciclaje, FM colorantes se utilizan para estudiar varios otros fenómenos, como la secreción en células cromafines y la reparación de la membrana de la célula después de lesión.
Este video se centrará en el uso de tintes de FM en una vesícula de estudio experimento de reciclaje. Vamos a ir sobre un protocolo paso a paso que utiliza tintes FM para cuantificar el proceso de reciclaje en las neuronas estimuladas. Por último, revisaremos algunas experiencias del ejemplo, que utilizan esta molécula única de diferentes maneras.
Antes de saltar en el procedimiento, primero Repasemos las propiedades bioquímicas de los tintes de la FM, que nos ayudará a entender su función en vesícula reciclaje experimentos.
Estructuralmente, los tintes de FM son styryl moléculas que derivan su nombre del científico que los sintetiza — Fei Mao. Estos colorantes tienen tres características estructurales principales: cabeza, cola y puente. El puente consiste en dos anillos aromáticos con una región variable doble enlace entre ellos. Toda esta sección crea el fluoróforo.
Es la naturaleza de cualquier fluoróforo que cuando golpeado por entrada de luz en una cierta longitud de onda de excitación, sus átomos absorben esa energía y sus electrones a un estado excitado. Estos electrones volver al estado de tierra emitiendo energía vibrationally y, finalmente, como la luz de una longitud de onda de emisión. La cola hidrofóbica permite la molécula de FM a la partición en las bicapas lipídicas de la membrana celular, y su cabeza hidrofílica tiene una carga que restringe su localización para el folleto de la membrana externa.
Por lo tanto, la única forma que puede ir dentro de la célula es mediante endocitosis. Tintes de FM son muy sensibles al medio ambiente y muestran fluorescencia débil en solventes polares, pero fuerte fluorescencia en entornos hidrófobos como las membranas. Esto genera alto contraste membrana etiquetado que puede ser visualizado y cuantificado utilizando un microscopio de fluorescencia.
Estas propiedades hacen tintes FM adaptados específicamente para evaluar la vesícula de reciclaje en las sinapsis. Brevemente, el proceso consiste en incubar las culturas con tinte de FM. Algunas de las moléculas de FM llegan Unidos a las membranas, lo que aumenta significativamente su intensidad de fluorescencia. A continuación, un estímulo inicia el proceso de internalización de la membrana. Por lo tanto, algunas moléculas de FM están atrapados en la membrana de la vesícula y el resto de las moléculas de tinte localizada exterior son arrastrados.
En el segundo estímulo, internalizadas manchadas las vesículas se fusionan con la membrana de la célula para liberar su contenido, y el tinte departitions rápidamente, resultando en una disminución rápida de la intensidad de la fluorescencia. Esta extracción puede ser cuantificada con la ayuda de un microscopio de fluorescencia.
Ahora que usted está familiarizado con los principios bioquímicos de los tintes de FM, vamos a revisar un procedimiento sobre cómo realizar un experimento examinar vesícula sináptica reciclaje con estos colorantes.
Limpiar muestras de culturas neuronales en cubreobjetos se preparan de antemano. Estas células se mueven a una solución de tinte de FM, haciendo que las membranas a etiquetarse. El cubreobjetos de la muestra se monta luego en la cámara de proyección de imagen del microscopio.
Para permitir la salida y manipulaciones fluidas como lava, fluido de entrada líneas se unen para formar una cámara sellada de la perfusión. Monte la cámara en el escenario de un microscopio de fluorescencia. Conecte los cables a la cámara y unirlos con el estimulador eléctrico. Una vez fijado, los filtros de excitación y de emisión se establecen según el tinte de FM usado.
Colorante de carga en las vesículas a través de endocitosis se induce mediante una estimulación eléctrica. Después de la estimulación, terminales nerviosas pueden recuperar. Entonces, colorante extracelular se lava con buffer; Esto también minimiza la fluorescencia de fondo. Es importante mantener la intensidad de excitación mínima porque FM tintes son propensos a fotoblanqueo, que es debilitamiento de la intensidad de la fluorescencia debido a la excitación prolongada. Después de la incubación corta, se obtienen las imágenes iniciales. A continuación, exocitosis es inducida con una segunda señal eléctrica.
Después de medir fluorescencia en diferentes momentos después del estímulo, al final, terminales del nervio pueden ser estimulados exhaustivamente descargar todo tinte liberable. La fluorescencia restante después de se considera como la intensidad de la fluorescencia de fondo. Luego, se mide la fluorescencia intrínseca de cada imagen utilizando la herramienta de “Región de interés” en una zona no sináptico de la imagen. La fluorescencia de fondo y la fluorescencia intrínseca entonces se resta de la intensidad de fluorescencia de cada momento para obtener la intensidad de la fluorescencia normalizado, que entonces se representan gráficamente frente al tiempo. La disminución de intensidad con el tiempo representa extracción, que es una medida indirecta de la vesícula de reciclaje.
Ahora que hemos revisado la metodología, vamos a ver como colorantes de FM se utilizan en experimentos específicos.
Discutimos el protocolo utilizando tintes de FM en las neuronas estimuladas. Aquí, los científicos estaban interesados en estudiar reciclaje de vesícula espontánea. Hicieron esto con el protocolo establecido en combinación con un sistema de imagen lo suficientemente sensible como para detectar pequeños cambios en la intensidad de la fluorescencia. Los resultados representan una disminución en la intensidad de la fluorescencia es directamente debido a la liberación sináptica espontánea.
Dentro de la neurona presináptica, las vesículas se dividen en dos piscinas: una piscina de reserva o RP y una piscina fácilmente liberable o PVP. Aquí, científicos usaron tintes FM para analizar la fracción de cada tipo en la población de vesícula. Aplicación secuencial de estímulos eléctricos de intensidad creciente, estos científicos fueron capaces de cuantificar los porcentajes relativos de cada tipo de piscina de vesícula.
Por último, biólogo celular también utilizar tintes FM para diseccionar los factores implicados en la reparación de exocíticas de membranas de plasma heridas. En este experimento, los investigadores se centraron particularmente en el papel de esfingomielinasa, una enzima de modificación de lípidos, en el proceso mismo-resellado de la membrana. En primer lugar, generan las células deficientes en la enzima esfingomielinasa con la ayuda de silenciamiento tratamiento RNA. A continuación, trataron a estas células y un grupo control con tinte de FM exógena y una toxina que crea lesiones de la membrana plasmática. Por último, han consultado todas las muestras con un microscopio confocal. Los resultados mostraron que las células deficientes del sphingomyelinase mostraron robusta acumulación de moléculas intracelulares de FM. Por otro lado, las células del control mostraron mínima afluencia de FM, sugiriendo un papel de esfingomielinasa en la reparación de la membrana plasmática.
Sólo ha visto video de Zeus FM colorantes en el reciclaje de la vesícula. El video describe la bioquímica de los tintes de FM, detalla un protocolo de tinción y cuantificar la vesícula sináptica de reciclaje y finalmente había descrito experimentos actuales utilizando estos tintes de diferentes maneras. ¡Como siempre, gracias por ver!
FM dyes are membrane dyes that are widely used to image vesicle recycling. This is the process by which a cell forms vesicles from its own membrane to preserve cell size, reuse expensive proteins, and consecutively transport molecules to the extracellular space. This process is most commonly studied at neuronal synapses, where it’s involved in release of neurotransmitters. In addition to examining vesicle recycling, FM dyes are used to study several other phenomena, such as secretion in chromaffin cells and cell membrane repair following injury.
This video will focus on the use of FM dyes in an experiment studying vesicle recycling. We’ll go over a step-by-step protocol that uses FM dyes to quantify the recycling process in stimulated neurons. Lastly, we will review some example experiments, which utilize this unique molecule in different ways.
Before jumping into the procedure, let’s first review the biochemical properties of FM dyes, which will help us understand their function in vesicle recycling experiments.
Structurally, FM dyes are styryl molecules that derive their name from the scientist who synthesized them—Fei Mao. These dyes have three main structural features: head, tail, and bridge. The bridge consists of two aromatic rings with a variable double bond region between them. This entire section creates the fluorophore.
It is the nature of any fluorophore that when struck by incoming light at a certain excitation wavelength, its atoms absorb that energy and raise its electrons to an excited state. These electrons return to the ground state by emitting energy vibrationally, and finally as light of an emission wavelength. The hydrophobic tail allows the FM molecule to partition into the lipid bilayers of the cell membrane, and its hydrophilic head has a charge that restricts its localization to the outer membrane leaflet.
Therefore, the only way it can go into the cell is via endocytosis. FM dyes are acutely environment sensitive, and show weak fluorescence in polar solvents, but strong fluorescence in hydrophobic environments like membranes. This creates high contrast membrane labeling that can be visualized and quantified using a fluorescence microscope.
These properties make FM dyes specifically suited to assess vesicle recycling at synapses. Briefly, the process involves incubating the cultures with FM dye. Some of the FM molecules get attached to the membranes, which significantly increases their fluorescence intensities. Next, a stimulus initiates the membrane internalization process. Therefore, some FM molecules are trapped in the vesicle membrane, and the rest of the outer localized dye molecules are washed away.
On second stimulation, internalized stained vesicles fuse with the cell membrane to release their contents, and the dye quickly departitions, resulting in a rapid decrease in fluorescence intensity. This destaining can be quantified with the help of a fluorescence microscope.
Now that you’re familiar with the biochemical principles of FM dyes, let’s review a procedure on how to perform an experiment examining synaptic vesicle recycling using these dyes.
Clean, healthy samples of neuronal cultures on coverslips are prepared in advance. These cells are moved to a FM dye solution, causing the membranes to be labeled. The sample coverslip is then mounted onto the imaging chamber of the microscope.
To allow fluid manipulations like washes, fluid input and output lines are attached to form a sealed perfusion chamber. Mount the chamber onto the stage of a fluorescence microscope. Attach wires to the chamber and connect them to the electrical stimulator. Once attached, the excitation and emission filters are set according to the FM dye used.
Dye loading into vesicles via endocytosis is induced using an electrical stimulation. After stimulation, nerve terminals are allowed to recover. Then, extracellular dye is washed off with buffer; this also minimizes the background fluorescence. It is important to keep the excitation intensity minimum because FM dyes are prone to photobleaching, which is weakening of fluorescence intensity due to prolonged excitation. Following the short incubation, initial images are obtained. Next, exocytosis is induced with a second electric signal.
After measuring fluorescence at different time points following stimulation, at the end, nerve terminals can be exhaustively stimulated to unload all releasable dye. The fluorescence remaining after that is considered as the background fluorescence intensity. Then, intrinsic fluorescence of each image is measured using the “Region of Interest” tool in a non-synaptic area of the image. The background fluorescence and the intrinsic fluorescence is then subtracted from the fluorescence intensity of each time point to obtain normalized fluorescence intensity, which is then plotted versus time. The decrease in intensity over time represents destaining, which is an indirect measure of vesicle recycling.
Now that we’ve reviewed the methodology, let’s look at how FM dyes are used in specific experiments.
We discussed the protocol using FM dyes in stimulated neurons. Here, scientists were interested in studying spontaneous vesicle recycling. They did this using the established protocol in combination with an imaging system sensitive enough to detect small changes in fluorescence intensity. The results represent a decrease in fluorescence intensity that is directly due to spontaneous synaptic release.
Within the presynaptic neuron, vesicles are divided into two pools: a reserve pool or RP, and a readily releasable pool or RRP. Here, scientists used FM dyes to analyze the fraction of each type in the vesicle population. By sequential application of electrical stimuli of increasing intensities, these scientists were able to quantify the relative percentages of each type of vesicle pool.
Lastly, cell biologist also use FM dyes to dissect factors involved in the exocytic repair of wounded plasma membranes. In this experiment, researchers were particularly focused on the role of sphingomyelinase, a lipid-modifying enzyme, in the membrane resealing process. First, they generated cells deficient in the enzyme sphingomyelinase with the help of silencing RNA treatment. Next, they treated these cells and a control group with exogenous FM dye and a toxin that creates plasma membrane lesions. Finally, they viewed all the samples using a confocal microscope. The results showed that sphingomyelinase deficient cells showed robust accumulation of intracellular FM molecules. On the other hand, control cells showed minimal FM influx, suggesting a role of sphingomyelinase in plasma membrane repair.
You’ve just watched JoVE’s video on FM dyes in vesicle recycling. The video described the biochemistry of FM dyes, detailed a protocol to stain and quantify synaptic vesicle recycling, and finally outlined current experiments utilizing these dyes in different ways. As always, thanks for watching!
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