Photosynthèse

NotionsPréparation de l'instructeurProtocole étudiant
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  1. pigmentaire végétale
    • REMARQUE : Dans cette expérience, vous séparerez les pigments des feuilles d’épinards à l’aide de papier de chromatographie. Les pigments individuels se déplacent le long du papier à des vitesses différentes et peuvent avoir des couleurs différentes. En calculant la distance relative parcourue par les pigments, leur facteur de résolution et en les comparant aux valeurs de la littérature, vous pouvez identifier différents pigments. HYPOTHÈSES : Dans cet exercice, l’hypothèse expérimentale est qu’il y aura plusieurs pigments dans les feuilles d’épinards qui absorbent différentes longueurs d’onde de la lumière du soleil. L’hypothèse nulle est qu’il n’y a qu’un seul type de pigment à l’intérieur de la feuille d’épinard.
    • Utilisez un crayon pour tracer une ligne à deux centimètres d’une extrémité du papier de chromatographie.
    • Ensuite, posez un cure-pipe horizontalement sur le dessus d’un bécher propre de 400 ml.
    • Placez le côté marqué d’un crayon de la bande de chromatographie au bas du bécher.
    • Ensuite, enroulez le papier autour du cure-pipe de manière à ce que le bord inférieur touche à peine le bas du bécher, puis fixez-le avec un trombone.
    • Lorsque le papier est fixé autour du cure-pipe, retirez-le du bécher, puis placez une feuille d’épinard sèche sur la ligne marquée sur le papier de chromatographie.
    • Faites rouler une pièce de monnaie sur la feuille d’épinard le long de la ligne de crayon, en faisant plusieurs allers-retours et en appliquant une pression constante. Lorsque la feuille est enlevée, une ligne verte doit être clairement présente.
    • Ensuite, placez 8 mL de solvant de chromatographie dans le bécher.
    • Abaissez la bande de chromatographie dans le bécher de manière à ce que le bord du papier touche le solvant mais pas la ligne verte. Ajustez le cure-pipe si nécessaire.
    • Sans déranger le bécher, observez le solvant pendant qu’il remonte sur le papier et que les pigments individuels se séparent.
    • Lorsque le solvant a parcouru la moitié du papier de chromatographie, ce qui prendra environ 10 minutes, et que les pigments se sont séparés en bandes bien définies, retirez le papier du bécher.
    • Marquez la distance parcourue par le solvant avec un crayon puis laissez le papier sécher. REMARQUE : Le solvant s’évapore rapidement.
    • Ensuite, notez le nombre de bandes visibles et décrivez leur couleur et leur taille relative.
    • Mesurez la distance parcourue par le solvant et les pigments et notez cette information pour chaque pigment dans le tableau 1. Cliquez ici pour télécharger le Tableau 1
    • Jetez le solvant de chromatographie dans un conteneur à déchets sous une hotte. Jetez les bandes de chromatographie à la poubelle ordinaire, puis nettoyez les béchers avec de l’eau et du savon.
  2. Disques à feuilles flottantes dans le vide ul class="lab-items">
  3. NOTE : Dans cette expérience, vous observerez indirectement la photosynthèse et la respiration cellulaire à l’aide d’un disque de feuille flottant dans une solution. Pendant la photosynthèse, les bulles d’air feront flotter les feuilles, et pendant la respiration, les disques couleront. HYPOTHÈSES : Dans cet exercice, l’hypothèse expérimentale est que les disques foliaires auront un taux de photosynthèse plus élevé dans la solution de bicarbonate, car le bicarbonate fournit duCO2 ajouté pour alimenter la photosynthèse, ce qui fait flotter davantage de disques foliaires. De plus, tous les disques couleront dans des conditions sombres pendant qu’ils effectuent la respiration cellulaire. L’hypothèse nulle est qu’il n’y aura pas de différence dans le taux de photosynthèse, et donc le nombre de disques flottants, entre le bicarbonate et l’eau, ou les traitements clairs et sombres.
  4. Pour placer des disques à feuilles sous vide, retirez d’abord les pistons de deux seringues de 20 ml, puis placez 10 disques à feuilles à l’intérieur de chaque tube de seringue. Étiquetez une seringue « bicarbonate » et étiquetez l’autre seringue « eau ».
  5. Remplacez les pistons et poussez le piston jusqu’à ce qu’il ne reste qu’une petite quantité d’air dans la seringue. Veillez à ne pas endommager les disques foliaires.
  6. Tirez 5 ml de la solution de bicarbonate dans l’une des seringues. Retournez et faites tourner la seringue pour suspendre les disques de feuilles en solution.
  7. Poussez autant d’air que possible sans expulser la solution ni endommager les disques de feuilles.
  8. Ensuite, tirez 5 ml de la solution aqueuse dans l’autre seringue et faites-la tourner comme décrit précédemment (étape 3).
  9. Pour créer un vide, maintenez un doigt sur l’extrémité de la seringue tout en tirant sur le piston. Maintenez-le enfoncé pendant 10 secondes tout en faisant tourner la seringue pour maintenir les disques de feuilles en suspension.
  10. Ensuite, relâchez le vide. REMARQUE : Les disques devraient avoir absorbé la solution dans les espaces d’air de leurs tissus et vous devriez les voir couler. Si les disques ne s'enfoncent pas, vous pouvez répéter la création du vide jusqu'à trois fois.
  11. Ensuite, ajoutez 50 ml de solution de bicarbonate dans un gobelet en plastique ou un bécher en verre, puis ajoutez délicatement les disques de la seringue à vide de bicarbonate.
  12. Pour le contrôle, ajoutez la même quantité d’eau dans une tasse identique, puis ajoutez les disques de feuilles de la seringue sous vide d’eau. Étiquetez les contenants de manière appropriée.
  13. Placez les deux tasses sous une source de lumière.
  14. Toutes les cinq minutes, notez le nombre de disques flottant à la surface de la tasse dans le tableau 3 jusqu’à ce que 20 minutes se soient écoulées. Cliquez ici pour télécharger le Tableau 3
  15. Ensuite, retirez les coupelles de la source lumineuse, puis faites-les tourner de manière à ce que les disques à la surface se mélangent avec tous les gaz également à la surface.
  16. Déplacez les tasses dans un endroit sombre. Toutes les cinq minutes, notez le nombre de disques foliaires flottant à la surface jusqu’à ce que 20 minutes se soient écoulées. Faites tourner la tasse à chaque fois avant de la remettre dans l’obscurité.
  17. Pour nettoyer, jetez les disques de feuilles à la poubelle et versez la solution de bicarbonate dans le drain. Lavez soigneusement les seringues et les gobelets.
  18. Résultats
    • NOTE : Dans la première expérience, vous avez observé la distance parcourue par les pigments des feuilles d’épinards sur du papier de chromatographie. Différents pigments absorbent la lumière à différentes longueurs d’onde.
    • À l’aide de stylos ou de crayons de couleur, dessinez les positions des bandes de pigment et du solvant sur la figure 3.
    • Calcule le facteur de rétention, ou valeurs Rf pour les pigments, ce qui se fait en divisant la distance à laquelle le pigment en question s’est déplacé vers le haut du papier à partir de la ligne par la distance à laquelle le solvant s’est déplacé vers le haut du papier à partir de la ligne.
    • Comparez vos valeurs Rf calculées à celles du tableau 2 pour déterminer l’identité du pigment. Cliquez ici pour télécharger le Tableau 2
    • Enregistrez ces données dans le tableau 1. REMARQUE : Dans la deuxième expérience, vous avez observé des disques de feuilles flottants et coulants comme mesure indirecte de la photosynthèse et de la respiration.
    • Représente graphiquement les résultats avec le temps et les minutes sur l’axe des x et le nombre de disques flottants sur l’axe des y. Utilisez deux lignes différentes pour représenter le contrôle de l’eau et le traitement au bicarbonate.
    • Ajoutez une ligne au graphique pour indiquer le point où les disques ont été retirés de l’état de lumière et placés dans l’obscurité.
    • Ensuite, en commençant par la condition du bicarbonate, utilisez le graphique pour déterminer le point auquel 50 % des disques de feuilles flottaient. C’est ce qu’on appelle le temps effectif, ou ET50. REMARQUE : Vous remarquerez que les disques atteignent probablement la barre des 50 % flottants une fois à l’état clair, puis à nouveau à l’état sombre.
    • Vos échantillons d’eau peuvent ou non avoir atteint la marque ET50. Si c’est le cas, ajoutez également la ligne pour cet échantillon.
    • Enfin, comparez vos valeurs et graphiques ET50 avec le reste de la classe.

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