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La cytométrie en flux analyse une population cellulaire hétérogène telle que les globules blancs en fonction de plusieurs paramètres, tels que la taille et la complexité.
Lorsque la suspension est chargée sur un cytomètre en flux, le liquide de gaine et la buse vibrante forment des gouttelettes unicellulaires qui passent à travers un faisceau laser, diffusant la lumière dans plusieurs directions.
La taille de la cellule de mesure de la diffusion vers l’avant et la diffusion latérale indiquant la complexité de la cellule sont détectées par différents systèmes de détection.
Le tracé de la diffusion vers l’avant ou latérale sur un graphique permet de différencier les populations cellulaires et leurs proportions dans un échantillon. Par exemple, la diffusion vers l’avant et sur les côtés est plus élevée pour les granulocytes, qui sont plus grands et plus granuleux que les lymphocytes.
Le trieur de cellules activé par fluorescence ou FACS, une cytométrie en flux spécialisée, aide à analyser et à trier les cellules. Il utilise des anticorps marqués par fluorescence spécifiques contre certains composants cellulaires - tels que les marqueurs CD4 ou CD8 sur les cellules T - ajoutés à l’échantillon.
Un anneau de charge électrique ajoute une charge sur des gouttelettes unicellulaires en fonction de l’étiquette fluorescente.
Les électroaimants utilisent ensuite cette charge pour dévier différents types de cellules dans des tubes séparés.
Le développement des techniques de cytométrie en flux a commencé en 1934 avec les premières tentatives d'Andrew Moldavan, un bactériologiste qui compt…
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