- Avant de commencer le processus, les éléments suivants doivent être recueillis et préparés à:
- Glace
- Seringue de 5 ml avec aiguille 27G
- Seringue de 5 ml avec aiguille 25g
- Styrofoam blocs et des épingles pour le montage de la souris
- Plateau sur lequel le bloc de montage peut être placé
- Ciseaux et pinces
- Tubes de prélèvement
- 70% d'éthanol
- PBS avec 3% sérum de veau foetal (FCS) (pré refroidis et conservés sur glace)
- Euthanasier la souris, le vaporiser avec de l'éthanol 70% et le monter sur le bloc de styromousse sur le dos.
- En utilisant une paire de ciseaux et des pinces à couper la peau externe du péritoine et tirez en arrière pour exposer la peau intérieure tapissant la cavité péritonéale.
- Injecter 5 ml de PBS glacé (avec 3% de FCS) dans la cavité péritonéale à l'aide d'une aiguille 27G. Poussez l'aiguille lentement dans le péritoine en faisant attention à ne pas percer tous les organes.
- Après l'injection, masser doucement le péritoine pour déloger les cellules attachées dans la solution PBS.
- Insérer une aiguille de 25 g, biseau vers le haut, attachée à une seringue de 5 ml dans le péritoine et recueillir le liquide tout en déplaçant la pointe de l'aiguille doucement pour éviter le colmatage par le tissu adipeux ou d'autres organes. Recueillir autant de liquide que possible et le dépôt de la suspension cellulaire recueilli dans des tubes conservés sur la glace après avoir retiré l'aiguille de la seringue.
En option: 4-6 Répétez l'étape - Faire une incision dans la peau intérieure du péritoine et tout en maintenant la peau avec une pince utiliser une pipette Pasteur en plastique pour recueillir le liquide restant dans la cavité.
- Si à l'étape 6 ou 7 contamination du sang visible est détectée, alors l'échantillon contaminé doit être jeté.
- Faites tourner la suspension de cellules recueillies à 1500 RPM pendant 8 minutes, éliminer le surnageant et remettre en suspension les cellules dans les médias souhaités ou PBS pour le comptage.
Protocole alternatif pour obtenir thioglycolate suscité des macrophages:
Cette méthode est utilisée pour obtenir un rendement plus élevé des macrophages.
- Injecter 5 ml de 3% (p / v) Brewer milieu au thioglycolate (7) dans la cavité péritonéale de chaque souris.
- Attendre pendant 3-5 jours, et passez à l'étape 1 ci-dessus pour la collecte des cellules.
Comparativement à l'approche nonelicited, environ 10 fois plus de macrophages peuvent être collectées. Le seul souci est que les macrophages obtenus par cette procédure diffèrent dans certaines de leurs propriétés physiologiques.
Les résultats représentatifs:
De une souris non manipulée, 5-10 millions de cellules cavité péritonéale peut être obtenue avec un protocole de bonne isolation. Parmi toutes les cellules vivantes, 50-60% sont des cellules B, macrophages ~ 30% et 5-10% sont des cellules T (figure 1).

Figure 1. Phénotype des cellules isolées de la cavité péritonéale. Isolement de cellules Après la cavité péritonéale, ils ont été colorés avec anti-souris-FITC TCRβ, B220-PE-rouge Texas, CD11b-Pacifique bleu, CD23-PE-Cy7 et CD5-APC. Parcelles de flux représentant cytométrie montrent des pourcentages de cellules B et T (a), les macrophages (b), B1 et B2 cellules (c) et les cellules B1a et B1b (d).