Article de méthode

Dosage de l’immunofluorescence CTC : une technique pour caractériser les cellules tumorales circulantes

30 avril 2023

Dans cet article

Résumé

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Source : Garcia, J., et al. Caractérisation et dénombrement semi-automatiques de-L1 de cellules tumorales circulantes de patients atteints d’un cancer du poumon non à petites cellules par immunofluorescence.J. Vis. Exp.(2019)

Cette vidéo décrit le test d’immunofluorescence des cellules tumorales circulantes (CTC), une technique permettant de caractériser les biomarqueurs sur les cellules tumorales circulantes dans des échantillons de patients atteints de cancer du poumon non à petites cellules. Ce test pourrait être utilisé pour surveiller les changements dynamiques de la tumeur et de la réponse immunitaire, qui peuvent refléter la réponse à la chimiothérapie, à la radiothérapie et à d’éventuels traitements d’immunothérapie.

Protocole

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Coloration par immunofluorescence

  1. Énumérer sur une lame chambrée avec une grille de type hémocytomètre le nombre de cellules par ml. Diluer l’échantillon enrichi avec une solution anti-liaison à 0,2 % (tableau des matériaux) jusqu’à une concentration atteignant 100 000 cellules/100 μL par cytospin.
  2. Humidifiez le contour de la chambre d’échantillonnage à l’aide de coton (tableau des matériaux) avec 50 μL de solution anti-liant à 0,2 %. Placez une lame de verre en polylysine dans la chambre d’échantillonnage et fermez-la.
  3. Enduisez une pointe d’une solution anti-liant à 0,2 % en pipetant 3 fois de haut en bas. Remettez l’échantillon enrichi en suspension et transférez la solution cellulaire dans la chambre d’échantillonnage. Centrifugeuse avec une centrifugeuse dédiée (Table des Matériaux) à 400 tr/min pendant 4 min (accélération faible).
  4. Placez un isolateur en silicium autour de la zone de dépôt. Laissez sécher la lame de verre sous une enceinte de sécurité microbiologique pendant 2 min.
  5. Préparez la solution de fixation en diluant 1 mL de paraformaldéhyde (PFA) à 16 % avec 3 mL de PBS stérile. Ajouter 100 μL de solution de fixation (4 % de PFA) par échantillon et incuber à RT pendant 10 min. Retirer la solution de fixation et effectuer trois lavages avec 200 μL de PBS et incuber à RT chacun pendant 2 min
    ATTENTION : Utilisez le PFA sous une enceinte de sécurité chimique pour éviter l’inhalation.
  6. Préparez la solution de saturation en diluant le sérum de veau fœtal (FBS) à 5 %, le réactif bloquant le récepteur Fc (FcR) à 5 % et l’albumine sérique bovine (BSA) à 1 % dans du PBS stérile (Table des matériaux). Ajouter 100 μL de solution de saturation par échantillon et incuber pendant 30 min à RT. Retirer la solution de saturation.
  7. Ajouter 100 μL de solution d’anticorps par échantillon (anticorps CD45 1/20 ; Anticorps PanCK 1/500 ; Anticorps-L1 1/200 ; Qsp solution de saturation 100 μL) (Tableau des matériaux). Placez la lame de verre polylysine dans une boîte de Pétri de 100 mm x 15 mm. Humidifiez un papier absorbant avec 2 mL d’eau stérile et fermez la boîte de Pétri avec le couvercle. Placer à 4 °C pendant la nuit et à l’abri de la lumière.
  8. Retirez le mélange d’anticorps et effectuez 3 lavages avec 200 μL de PBS en incubant chaque lavage pendant 2 min. Laissez sécher l’échantillon pendant 5 minutes et protégez-le de la lumière. Placez 10 μL de solution de montage (table des matériaux) dans la zone de dépôt et recouvrez avec une lamelle de microscope sans faire de bulle. Scellez la lamelle avec du vernis à ongles.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
F-68 Pluronic 10 % Gibco Référence 24040-032Solution anti-liaison. Conditions de conservation : Température ambiante
Cytoentonnoirs EZ ThermoFisherA78710003Chambre d’échantillonnage avec coton. Conditions de conservation : Température ambiante
Centrifugeuse Shandon Cytopsin4ThermoFisher A78300003Centrifugeuse dédiée. Conditions de conservation : Température ambiante
Paraformaldéhyde 16 %ThermoFisher 11490570Solution de fixation. Conditions de stockage : +4°C
Saline tamponnée au phosphate Ultra Pure Grade 1X – 1LLaboratoire de la 1ère BaseBUF-2040-1X1LConditions de conservation : Température ambiante
Agent de blocage FcR Miltenyi BiotecTél. : 130-059-901Conditions de stockage : +4°C
Anticorps monoclonal-L1 (clone 29E2A3) - PhycoérythrineBioLégende BLE329706 Conditions de stockage : +4°C
Anticorps monoclonal PanCK (clone AE1/AE3) Alexa Fluor 488ThermoFisherRéférence 53-9003-80 Conditions de stockage : +4°C
Anticorps monoclonal CD45 (clone HI30) Alexa Fluor 647BioLégende BLE304020Conditions de stockage : +4°C
Monture Fluoro sigma Réf. F4680Solution de montage. Conditions de conservation : Température ambiante
PétriDutscherRéférence 632180Conditions de conservation : Température ambiante
Saline tamponnée au phosphate (PBS)OzymeBE17-512FConditions de stockage : +4°C
Lames en polylysine ThermoFisherJ2800AMNZConditions de conservation : Température ambiante
Isolateur en silicium Grace bio-Labs Référence 664270Conditions de conservation : Température ambiante
Eau déminéralisée stérile – 100 mLLaboratoire de la 1ère Base CUS-4100-100ml Conditions de conservation : Température ambiante
Sérum de veau fœtal (FCS)GibcoRéférence 10270-106Conditions de stockage : +4°C

Réimpressions et autorisations

Demander l’autorisation de réutiliser le texte ou les figures de cet article JoVE

Demander une autorisation

Mots-clés

Cytocentrifugationmicroscopie fluorescencecaract risation du PD L1cancer du poumon non petites cellulesfixation cellulairemarquage par anticorpslavage au PBSmilieu de montage

Articles connexes