Method Article

Imagerie chronique des souris cortex visuel en utilisant une préparation Diluée-crâne

DOI:

10.3791/2060

October 25th, 2010

In This Article

Summary

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dans ce matériel vidéo et complémentaires, nous montrons un protocole pour les maladies chroniques In vivo du cerveau intact en utilisant une préparation amincie crâne.

Abstract

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L'imagerie in vivo en utilisant microscopie à deux photons laser à balayage (2PLSM) permet l'étude des cellules vivantes et des processus neuronaux dans le cerveau intact. La technique présentée ici permet l'imagerie de la même zone du cerveau à différents moments (chronique d'imagerie) avec une résolution microscopique, permettant le suivi des épines dendritiques qui sont les petites structures qui représentent la majorité des sites de post-synaptiques excitateurs dans le SNC. La capacité à résoudre clairement fines structures corticales plus de points plusieurs fois a de nombreux avantages, en particulier dans l'étude de la plasticité du cerveau dans lequel les changements morphologiques au niveau des synapses et le remodelage du circuit peut aider à expliquer les mécanismes sous-jacents. Dans ce matériel vidéo et complémentaires, nous montrons un protocole pour l'imagerie in vivo chroniques du cerveau intactes en utilisant une préparation amincie crâne. La préparation éclaircis-crâne est une approche minimalement invasive, ce qui évite les dommages potentiels à la mère et / ou du cortex, réduisant ainsi le déclenchement d'une réponse inflammatoire. Lorsque ce protocole est réalisé correctement, il est possible de bien surveiller les changements dans les caractéristiques des épines dendritiques dans le cerveau intact sur une période de temps prolongée.

Protocol

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  1. Pour visualiser les neurones dans le cerveau intact en utilisant microscopie à deux photons, une préparation où les neurones sont étiquetées avec des marqueurs fluorescents sont utilisés. Dans les expériences présentées ici, nous utilisons la ligne de la GFP-M de souris transgéniques dont les étiquettes couche 5 cellules pyramidales 1. Couche 5 cellules pyramidales de projet dans le processus dendritiques couches superficielles, permettant la visualisation des dendrites et des épines dendritiques jusqu'à une profondeur de 300 um en dessous du niveau de la pie. Une autre approche consiste à marquer les cellules en utilisant des marqueurs viraux (voir Lowery et al.,

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Discussion

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D'imagerie utilisant chronique microscopie à deux photons est de plus en plus populaire d'une technique pour étudier les changements morphologiques déclenchée pendant 2-5 plasticité. Ici nous démontrons une préparation éclaircis-crâne à suivre identifié épines dendritiques dans le cerveau de souris intactes les jours d'imagerie. Dans ce protocole, le crâne est laissé intact, causant des dégâts minimes au cortex et résultant en des niveaux très bas de la neuroinflammation, qui peuvent altérer les f.......

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Disclosures

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Aucun conflit d'intérêt déclaré.

Acknowledgements

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Ce travail a été soutenu par le Prix Carrière Burroughs Wellcome dans les sciences biomédicales (AKM), La Fondation de recherche sur Whitehall Grant (AKM), Sloan Foundation Fellowship (AKM), NIH EY019277 (AKM), et une IEN financé, formation Vision Grant, EY013319 ( EAK).

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
de fentanyldans le cocktail de: cocktail anesthésique ;
IP Dose : 0,0125 ml/g

Cocktail final : 0,05 mg/kg
médetomindineCocktail maisonfentanyl : Cocktail anesthésique ;
IP Dose : 0,0125 ml/g

Cocktail final : 0,05 mg/kg
Midazolam HCLCocktail maisonde fentanyl : Cocktail anesthésique ;
IP Dose : 0,0125 ml/g

Cocktail final : 0,05 mg/kg
2,2,2-tribrom– ; thanol Avertin Cocktail : Anesthésique ;
IP Dose : 0,0075 cc / g

Cocktail final conc. : 1%
2-méthyl-2-butanol (Concentration finale : 0,775 %)Avertin Cocktail : Anesthésique ;
IP Dose : 0.0075 cc/ g

Cocktail final conc. : .775 %
TC-1000 Système de contrôle de la température pour sourisCWE, Inc.TC-1000 Régulationde la température du corps
ToberadexPommade oculaire maison
10 % chlorureRicca Chemical Company3120-32Préparation du crâne mince
LameSable IndustriesS-6400Préparation du crâne mince
Cyanoacrylate 404,401LoctiteP/N 46551Préparation du crâne mince
Cyanoacrylate 401LoctiteP/N 40140Préparation du crâne mince
Zip Kicker Glue AcceleratorPacer TechnologyPT-29Préparation du crâne mince
Drill Meules en acier DiamètreOutils scientifiques fins19008-07Préparation du crâne mince
Boîtier de commande Microtorque et pièceà main Tech2000Produits Ram, Inc.TECH2000ON/OFFPréparation du crâne mince
#6-0 (0,7 métrique ) sutureEthicon Inc.K8894Hconique C-1
, 10 cm, largeur de pointe 0,5 mm, incurvéeOutils descience fine11152-10
Ciseaux Bonn extra fins, 8,5 cm, pointe droite, tranchant 13 mmOutils chirurgicauxOutils de science fine14084-08
Pince à motif standard, droite, pointe 2,5 mm x 1,35 mm, 12 cmOutils chirurgicauxOutils de science fine11000-12
Citrate fentanyl maison Chlorhydrate de de de souris ferrique microchirurgicale Micro de pointe de 0,7 mm en soie Pince à pansement oculaire

References

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  1. Feng, G. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of GFP. Neuron. 28 (1), 41-51 (2000).
  2. Holtmaat, A. high-resolution imaging in the mouse neocortex through a chronic cranial window. Nat Protoc. 4<....

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Two Photon ImagingDendritic Spine ImagingThinned Skull PreparationChronic Brain ImagingMouse Visual CortexGFP Labeled NeuronsDendritic Spine MorphologyCortical Plasticity StudyIn Vivo MicroscopySkull Thinning Protocol

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