Method Article

Méthode d'insertion de levure Colony

DOI:

10.3791/2510

March 22nd, 2011

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Une méthode pour l'intégration des colonies de levures permettant la coupe pour la microscopie optique et électronique. Ce protocole permet la détermination de la distribution de cellules et les cellules sporulées pseudohyphal au sein des colonies fournissant un nouvel outil pour comprendre l'organisation de types de cellules dans une communauté fongiques.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Modélisation des différents types de cellules dans des embryons est un mécanisme clé dans le développement des métazoaires. Communautés de microorganismes, comme les colonies et les biofilms également afficher les modèles de types cellulaires. Par exemple, dans la levure S. cerevisiae, les cellules et les cellules sporulées pseudohyphal ne sont pas réparties uniformément dans les colonies. L'importance fonctionnelle de la structuration et les mécanismes moléculaires qui sous-tendent ces tendances sont encore mal compris.

Un défi à l'égard de schémas de enquêter types de cellules dans les colonies fongiques, c'est que contrairement au tissu métazoaires, les cellules en colonies sont relativement faiblement attaché à un autre. En particulier, colonies de champignons ne contiennent pas le même niveau complète de la matrice extracellulaire dans la plupart des tissus. Nous rapportons ici une méthode pour intégrer et de sectionnement des colonies de levures qui révèle les habitudes intérieures de types de cellules dans ces colonies. La méthode peut être utilisée pour préparer des coupes épaisses (0,5 μ) utiles pour la microscopie optique et lames minces (0,1 μ) adapté à la microscopie électronique à transmission. Cellules asques et pseudohyphal peuvent être facilement distingués des cellules de levure ovoïde par microscopie optique, tandis que la structure intérieure de ces cellules peuvent être visualisées par EM.

La méthode est basée sur les colonies environnantes avec de l'agar, les infiltrer avec des moyennes de Spurr, puis sectionner. Colonies avec un diamètre de l'ordre de 1-2 mm sont adaptés à ce protocole. En plus de visualiser l'intérieur des colonies, la méthode permet la visualisation de la région de la colonie qui envahit la gélose sous-jacente.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Isolement des colonies et de fixation

  1. Incuber 300 colonies sur milieu gélosé pendant le temps indiqué (une colonie isolée devrait être de 1-2 mm de diamètre).
  2. Retirez la colonie (face) et moyennes sous-jacentes à l'aide d'une spatule étroite.
  3. Placez quelques gouttes d'agar à 2% 42 ° C sur une lame de microscope en utilisant 1 ml Pipetman pointe et la colonie place immédiatement sur le visage d'agar-vous avant qu'il se solidifie.
  4. Placez quelques gouttes d'agar à 2% 42 ° C sur la colonie et laisser se solidifier.
  5. Portez des gants pour toutes les étapes jusqu'à la fin de ce protocole
  6. Bloc de Trim avec lame ....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La méthode présentée révèle les structures internes des colonies. Parce que la méthode est efficace pour déterminer les schémas de types de cellule dans une plage de S. souches cerevisiae avec des morphologies différentes colonies, et aussi dans une espèce apparentée S. paradoxus 5, la méthode est également susceptible de travailler sur un large éventail de champignons et autres micro-organismes.

Une étape cruciale pour le succès de la méthode est de s'assure.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Aucun conflit d'intérêt déclaré.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La recherche a été financée par le NIH 1R15GM094770.

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Tétroxyde d’osmiumMicroscopie électronique SciencesRT 19152
Moules d’enrobage en siliconeFisher ScientificNC 9975029
Résine époxyde cycloaliphatiqueMicroscopie électronique SciencesRT 15004ERL 4221
Résine époxyMicroscopie électronique SciencesRT 13000DER 736
AnhydridenonénylsucciniqueMicroscopie électronique SciencesRT 19050NSA
2-Diméthyl amin– ; thanolMicroscopie électronique SciencesRT 13300DMAE
Supports de montageKPL Inc71-00-16
Roue tournanteTed Pella, Inc.Microtome Pelco 1055
Leica MicrosystemsUltracut S

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kimmel, A. R., Firtel, R. A. Breaking symmetries: regulation of Dictyostelium development through chemoattractant and morphogen signal-response. Curr Opin Genet Dev. 14, 540-540 (2004).
  2. Palkova, Z., Vachova, L. Life within a c....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Yeast Colony EmbeddingAgar EmbeddingSpurrs Resin InfiltrationLight MicroscopyElectron MicroscopyColony SectioningFungal Colony AnalysisSporulated Cell DistributionPseudohyphal Cell PatterningAgar Invasion Visualization

Related Articles