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Génération de cellules souches neurales induites (iNSC) à partir de cellules mononucléées du sang périphérique (PBMNC) : une procédure basée sur le virus Sendai pour reprogrammer les PBMNC en iNSCs

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Zheng, W. et al. Génération de cellules souches neurales induites à partir de cellules mononucléées périphériques et différenciation vers les précurseurs de neurones dopaminergiques pour les études de transplantation.J. Vis. Exp. (2019)

Cette vidéo montre la reprogrammation de cellules mononucléées du sang périphérique (PBMNC) en cellules souches neurales induites (iNSC) à l’aide du virus Sendai. Le virus Sendai est un virus non intégrateur qui offre un véhicule efficace et sûr pour reprogrammer les cellules.

Protocole

1. Reprogrammation des PBMNCs en iNSCs par infection par SeV

  1. Préparation de la solution et du milieu de culture
    1. Préparez une solution mère de poly-D-lysine (PDL) en dissolvant 100 mg de PDL avec 100 mL de H2O à une concentration de 1 mg/mL. Conserver à -20 °C dans des aliquotes de 1 mL.
    2. Préparez une solution mère d’insuline en dissolvant 100 mg d’insuline dans 20 ml de HCl 0,01 N jusqu’à une concentration de 5 mg/mL. Conserver à -20 °C dans des aliquotes de 1 mL.
    3. Pour préparer 200 mL de milieu de base iNSC, combinez 96 mL de DMEM-F12 et 96 mL de milieu basique (Table des matières) avec 2 mL de solution mère de glutamine 100x, 2 mL d’acide aminé non essentiel (NEAA), 2 mL de supplément N2 et 2 mL de supplément B27. Ajouter 10 ng/mL de facteur inhibiteur de la leucémie humaine recombinante, 3 μM CHIR99021 et 2 μM SB431542 avant l’utilisation. Filtrez le fluide et rangez-le à 4 °C
      note: Utilisez le milieu dans les 2 semaines. Ajouter le facteur inhibiteur de la leucémie humaine recombinante, CHIR99021 et SB431542 immédiatement avant l’utilisation.
  2. Reprogrammation des PBMNCs en iNSC par infection par SeV
    1. Stérilisez aux ultraviolets un banc propre avant de l’utiliser. Stérilisez toutes les surfaces et l’équipement avec de l’alcool à 75 %. Stérilisez tous les embouts à l’aide d’un autoclave.
    2. Le jour 0, prélever les cellules dans un milieu MNC et les transférer dans un tube conique de 15 ml. Centrifuger les cellules à 200 x g pendant 5 min. Aspirez le surnageant et remettez les cellules en suspension avec 1 mL de milieu MNC préchauffé.
    3. Comptez les cellules viables avec du bleu trypan. Remettre les cellules en suspension avec un milieu MNC préchauffé (37 °C) à une concentration de 2 x 105 cellules par puits dans des plaques à 24 puits.
    4. Après avoir retiré les tubes SeV de l’entreposage à -80 °C, décongelez les tubes contenant du SeV dans un bain-marie à 37 °C pendant 5 à 10 s, puis laissez-les décongeler à RT. Une fois décongelés, placez-les immédiatement sur de la glace.
    5. Ajoutez le SeV codant pour l’humain Klf4, Oct3/4, SOX2 et c-MyC dans les puits, à une multiplicité d’infection (MOI) de 10. Cellules de centrifugation avec plaques à 1 000 x g pendant 30 min pour faciliter la fixation des cellules. Laissez les cellules et le surnageant dans les plaques. Placez les plaques dans l’incubateur à 37 °C, 5 % CO2.
      ATTENTION : Toutes les procédures impliquant le SeV doivent être effectuées dans une enceinte de sécurité, et tous les embouts et tubes doivent être traités avec de l’éthanol ou de l’eau de Javel avant d’être éliminés.
    6. Le jour 1, transférez le milieu et les cellules dans un tube à centrifuger de 15 ml. Rincez le puits avec 1 mL de milieu MNC. Centrifuger la suspension cellulaire à 200 x g pendant 5 min. Aspirer le surnageant et remettre les cellules en suspension avec 500 μL de milieu MNC frais préchauffé dans des plaques à 24 puits.
      note: Utilisez une plaque à 24 puits à faible fixation pour empêcher la fixation de cellules avant le placage sur PDL/laminine.
    7. Le jour 2, diluer 1 mL de DEL à 1 mg/mL avec 19 mL de D-PBS à une concentration de 50 μg/mL. Enduire les plaques à 6 puits d’une quantité de PDL de 50 μg/mL pendant au moins 2 h à RT.
    8. Diluer 200 μL de laminine à 0,5 mg/mL avec 20 mL de D-PBS à une concentration de 5 μg/mL. Aspirez le PDL dans les plaques à 6 puits et séchez-le sur le banc de nettoyage vertical.
    9. Enduire les plaques à 6 puits de laminine de 5 μg/mL et incuber pendant 4 à 6 h à 37 °C. Laver avec du D-PBS avant utilisation.
    10. Le jour 3, plaquez les cellules transduites obtenues à l’étape 1.2.6 en milieu iNSC sur des plaques à 6 puits recouvertes de PDL/laminine.
      note: Déplacez doucement les plaques si nécessaire après que les cellules ont été placées sur des plaques recouvertes de PDL / laminine, en essayant de ne pas perturber la fixation des cellules.
    11. Le jour 5, ajouter doucement 1 mL de milieu iNSC préchauffé (37 °C) dans chaque puits dans des assiettes à 6 puits.
      note: On s’attend à ce que les cellules subissent une mort drastique (>60 %).
    12. Le 7e jour, ajouter doucement 1 mL de milieu iNSC préchauffé (37 °C) dans chaque puits dans des assiettes à 6 puits.
    13. Du jour 9 au jour 28, remplacez chaque jour le milieu épuisé par un milieu iNSC frais préchauffé (37 °C). Surveiller l’émergence des colonies d’iNSC. Choisissez et transférez des clones iNSC pour une expansion dans environ 2 à 3 semaines. Prélever les colonies avec la morphologie appropriée à l’aide de pipettes en verre brûlé, à l’exclusion de toute cellule susceptible de contaminer, et aspirer les colonies avec des pointes de 200 μL.

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Supplément B27 Invitrogen17504044
CHIR99021Opération des gènesRéférence 04-0004
DMEM-F12GibcoRéférence 11330
DMEM-F12GibcoRéférence 11320
LaminineRoche 11243217001
Supplément N2 Invitrogen17502048
NEAAInvitrogen11140050Acide aminé non essentiel
NeurobasaleGibcoRéférence 10888Média de base
PdlSigma-AldrichP7280Poly-D-lysine
SB431542Opération des gènes04-0010-10mgStocker à l’abri de la lumière à -20 ?
Virus SendaiTechnologies de la vieMAN0009378
insulineRoche 12585014
Plaque à 24 puitsCorningRéférence 3337
Tube conique de 15 mlCorning430052
Plaque à 6 puitsCorningRéférence 3516
L’EPOPeprotechRéférence 100-64-50UGÉrythropoïétine humaine
Facteur inhibiteur de la leucémie humaineMillporeLIF1010
SCF recombinant humainPeprotechRéférence 300-07-100UG
L’IGF-1Peprotech100-11-100UGFacteur de croissance analogue à l’insuline humaine
L’IL-3PeprotechRéférence 200-03-10UGInterleukine humaine 3
dexaméthasoneSigma-AldrichD2915-100MG
IMDMGibcoRéférence 215056-023médium Dulbecco modifié d'Iscove
insulineRoche 12585014
ITS-XInvitrogenRéférence 51500-056Supplément insuline-transferrine-sélénium-X
GlutaMAXInvitrogen21051024100 × de solution mère de glutamine
Jambon-F12GibcoRéférence 11765-054
1-ThioglycérolSigma-AldrichRéférence M6145Toxique par inhalation et par contact avec la peau
acide ascorbiqueSigma-AldrichN° A92902Toxique en cas de contact avec la peau
Remplacement du sérum knockoutGibco10828028Milieu basal libre de sérum
Concentré de lipides chimiquement définisInvitrogen11905031
TransferrineSystèmes de R&DRéférence 2914-HT-100G
Trypan bleuGibcoRéf. T10282
Le

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Mots-clés

Reprogrammation par le virus SendaiProc dure de reprogrammation cellulaireFormation de colonies d iNSCRev tement la poly D lysine et laminineComptage cellulaire au bleu trypanMultiplicit d infection 10Suppl mentation du milieu d iNSCM thode de pr l vement de colonies

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