Whole fixation par perfusion des animaux pour rongeurs

1. Préparer fixateur

(Voir Fixatif table et tampons.)

2. Préparation des tampons de perfusion

(Voir Fixatif table et tampons.)

3. Préparer un appareil et d'anesthésie

1. Utilisation de l'eau du bain, tampon de perfusion chaude à 37 ° C. Vanne de sortie Placer dans un bécher rempli de tampon. Remplir une seringue de 50 ml avec le tampon et le joindre à tube de fixateur. Rincer tube à plusieurs reprises par l'expulsion et de retrait du tampon.
2. Effacer la ligne avec un tampon jusqu'à ce que toutes les bulles d'air dans le tube sont éliminés. Il est crucial pour le succès d'une perfusion de ne pas avoir de bulles d'air dans l'une des lignes.
3. Retirer la seringue et connecter le fixateur du paraformaldéhyde à 4% (température ambiante) conteneur. Pour éviter les bulles d'air à l'extrémité du tuyau, presser le tube tout en positionnant le tube dans le récipient de telle sorte qu'une goutte de tampon dépasse de la fin to contact avec la surface de fluide à l'intérieur du récipient.
4. Fermer l'orifice de sortie (extrémité de l'aiguille). Tournez la vanne de tampon (bleu) à la même position que la soupape de fixateur (blanc). Cela permettra d'écoulement de la ligne de tampon seul.
5. Ouvrez l'orifice de sortie et répétez l'étape A1 à A3 pour le remplissage de la ligne de tampon. Après toutes les bulles d'air sont éliminées à proximité du port de sortie, retirer la seringue et raccorder le réservoir tampon, en prenant soin de ne pas introduire de bulles d'air dans le tube.
6. Système de test pour la capacité à maintenir la pression en pompant le blub manomètre en caoutchouc. Il est normalement une résistance due à la compression de l'air dans le système.
7. Configuration des outils de chirurgie pour que facile d'accès. Remplir l'aiguille de perfusion avec un tampon pour éliminer la possibilité de bulles d'air.
8. Avant la chirurgie, un mélange kétamine / xylazine (jusqu'à 80 mg / kg de poids corporel et de la kétamine 10 mg / kg de xylazine poids corporel) est administré par injection intrapéritonéale (aiguille de calibre 27 et 1 seringue cc). L'administration du produit de l'anesthésique est réalisée comme nécessaire au cours de chaque opération de maintenir un plan chirurgical de l'anesthésie.

4. Chirurgie perfusion

1. Une fois que l'animal a atteint un plan chirurgical de l'anesthésie, le placer sur le plateau peu profond rempli de glace pilée. (Utilisez orteil pincement réponse de la méthode pour déterminer la profondeur de l'anesthésie. L'animal doit être insensible avant de continuer).
2. Faire une incision latérale 5-6 cm à travers le tégument et la paroi abdominale juste en dessous de la cage thoracique. Soin séparer le foie du diaphragme.
3. Faire une petite incision dans la membrane à l'aide des courbes, ciseaux à bouts ronds. La position et la pression de votre doigt peut aider à la possibilité de couper la membrane.
4. Continuer l'incision membrane sur toute la longueur de la cage thoracique pour exposer la cavité pleurale.
5. Placez courbes, ciseaux à bouts ronds le long d'un côté des nervures, soigneusement déplacer les poumons, et de faire une cut par le biais de la cage thoracique jusqu'à la clavicule. Faites une coupe similaire sur le côté opposé.
6. Levée du sternum loin, couper avec précaution tout tissu de le connecter au coeur. Serrer la pointe du sternum à la pince hémostatique et placez la pince hémostatique sur la tête. Une fois fait correctement, le thymus se soulève du fond du cœur avec le sternum, fournissant une vue claire des principaux vaisseaux.
7. Faire une petite incision à l'extrémité postérieure du ventricule gauche à l'aide de ciseaux à iris.

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8. Passez une aiguille de calibre 15 perfusion contondant ou d'olive-pointe à travers le ventricule coupe dans l'aorte ascendante. La pointe doit être visible à travers la paroi de l'aorte, et ne devrait pas atteindre la crosse aortique, où les artères brachiales et carotides divergent.
9. Utilisez une pince hémostatique pour serrer le cœur, ce sécurise l'aiguille et empêche les fuites. Si vous le souhaitez, la pince hémostatique modifié peut être utilisé pour bloquer l'aorte autour de la pointe de l'aiguille (ces hémostatiques restera en place jusqu'à la dissection commence, mais ne figurent pas dans l'avenir illustrations pour plus de clarté).
10. Enfin, faire une incision à l'oreillette droite de l'animal en utilisant des ciseaux à iris pour créer aussi grand que possible une prise sans endommager l'aorte descendante. À ce stade, l'animal est prêt à être perfusé.

5. Perfusion

1. Ouvrez et joindre orifice de sortie de base de l'aiguille en prenant soin de ne pas introduire de bulles d'air.
2. Pomper l'ampoule à une pression manométrique de 80 mm Hg rapidement et uniformément. Maintenir cette pression pendant toute la durée de la perfusion de tampon. Démarrer la minuterie.
3. Ajustez l'angle de l'aiguille. L'angle de l'aiguille est essentiel à la réalisation d'un débit maximal (noter le changement de flux avec réglage de l'angle).
4. Mettez le buffer de valve (bleu), une fois de tampon est presque terminé (200 ml). Le liquide doit être claire courante. La compensation du foie est un indicateur d'une bonne perfusion. Le foie doit être clair à ce stade. Indiquer le temps pour vos dossiers.
5. Tremblements de fixation doivent être observées en quelques secondes, ce qui devrait être considéré comme le véritable temps de fixation. Indiquer le temps pour vos dossiers.
6. La pression peut être progressivement augmenter jusqu'à un maximum de 130 mm Hg ² à maintenir un débit constant.
7. Fermez la vanne de sortie une fois que le fixateur est presque terminé. Indiquez l'heure de fin pour vos dossiers.
8. Le rat doit être rigide à ce stade.
9. Le paraformaldéhyde utilisé doit être recueillies et stockées pour l'élimination conformément aux règlements de votre établissement.

6. Dissection ^4,11

1. Retirez la tête à l'aide d'une paire de ciseaux.
2. Faire une incision médiane le long du tégument de la nuque au nez et à exposer lacrâne.
3. Coupez le muscle du cou restant de sorte que la base du crâne est exposé; enlever tout le muscle résiduel en utilisant ciseaux ou rongeurs.
4. Placez l'extrémité pointue d'une paire de ciseaux iris dans le foramen magnum d'un côté, soigneusement glisser les ciseaux le long de la surface interne du crâne.
5. Ensuite, faire une découpe s'étendant jusqu'à la bordure distale de la surface du crâne postérieur. Faire une coupe identique sur le côté opposé. Utilisez les rongeurs pour déblayer le crâne autour du cervelet.
6. Faites glisser délicatement les ciseaux le long de la surface interne du crâne que la pointe se déplace à partir du coin dorsale postérieure distale jusqu'à la bordure distale frontale du crâne, soulevant la lame que vous êtes de coupe pour éviter d'endommager le cerveau. Répéter pour le côté opposé.
7. Utilisation de rongeurs peler la surface dorsale du crâne loin du cerveau. Rogner les côtés du crâne en utilisant ainsi rongeurs.
8. Avec une spatule, détacher les bulbes olfactifs et branchements nerveuxtions le long de la surface ventrale du cerveau.
9. Doucement taquiner le cerveau loin de la tête, coupe toute mère qui relie encore le cerveau du crâne avec des ciseaux à iris.
10. Enlever le cerveau et le placer dans un flacon de liquide fixateur contenant au moins 10x le volume du cerveau lui-même. Agiter le flacon de temps en temps.

7. Post-fixation et de stockage

1. Gardez le cerveau dans un fixateur pendant 24 heures à 4 ° C, en agitant de temps en temps.
2. Après 24 heures, laver le cerveau avec du tampon phosphate salin en échangeant les 3 médias et tourbillonnant fois à chaque fois.
3. Brains peuvent ensuite être stockées en tampon phosphate salin ou HBHS avec l'azoture de sodium et conservé à 4 ° C.

8. Les résultats représentatifs

Un premier indicateur de la réussite de la perfusion est la compensation des extrémités comme le nez, les oreilles, les pattes et les organes internes tels que le thymus et le foie (IHC mondiale).L'inspection brut du cerveau révèle le vide des vaisseaux sanguins du sang (blanc à l'apparence jaune pâle). Ce sera également vrai au sein des sections de tissus destinera pour la coloration et l'immunohistochimie. Le dernier indicateur de résultat de la perfusion est la condition de l'ultrastructure dans le tissu. ^1,6,7,8

Tableau 1. Préparation de fixateur et de tampons.

Figure 1.

Figure 2. Préparation de l'appareil de perfusion I. Commencez par la ligne de fixateur. Rincer le tube de bulles d'air et de remplir avec le tampon en mettant rapidement expulser et de retrait du tampon dans la seringue et par le biais de la ligne. Fermez la vanne sur la pointe d'aiguille hors tension. Placez la ligne de fixateur dans la bouteille de fixateur sans introduire de bulles d'air.

Figure 3. Préparation de l'appareil de perfusion II. 1. Ouvrir le robinet à l'extrémité de l'aiguille. 2. Tournez la vanne de tampon (bleu) pour positionner pour l'écoulement. 3. Rincer le tube de bulles d'air et de remplir avec le tampon en mettant rapidement expulser et de retrait du tampon avec la seringue. 4. Fermer le robinet à l'extrémité de l'aiguille. Placez le tube dans le flacon. Pression d'épreuve pour s'assurer que le système est scellé correctement par pompage jusqu'à l'ampoule manomètre et en observant le manomètre. L'appareil est maintenant prêt pour la technique de perfusion.

Figure 4. Appareil de perfusion en position pour la livraison de tampon.

Figure 5. Perfusion Chirurgie I. a) Faire une incision latérale à travers le tégument et la paroi abdominale. b) Faire une incision dans la membrane et couper à travers la membrane d'exposer le cœur. Faire des coupes parallèles de chaque côté des nervures jusqu'à la clavicule. c) serrer la pointe du sternum avec la pince hémostatique et placer la pince hémostatique sur la tête.

Figure 6. Chirurgie perfusion II. a) Passez l'aiguille de perfusion à travers le ventricule coupe dans l'aorte ascendante. b) Fixer lel'utilisation de seringues de perfusion un ensemble de pinces hémostatiques pour serrer le cœur. Un second ensemble de pince hémostatique une modification peut également être utilisé pour serrer l'aorte autour de la pointe de l'aiguille à éviter les fuites. L'aide de ciseaux iris faire une petite incision à l'extrémité postérieure du ventricule gauche.

Figure 7. Perfusion avec pompe tampon de l'ampoule manomètre pour créer une pression dans la ligne. Ouvrez la vanne (1) et le joindre à l'embout de l'aiguille. Il est essentiel de s'assurer qu'aucune bulle d'air sont introduits. Pomper l'ampoule à une pression manométrique de 80 mm de Hg et à maintenir cette pression pendant toute la période d'infusion tampon.

Figure 8. Perfusion avec fixateur fois tampon est presque terminé (200 ml) basculer la vanne de tampon (1) pour permettre le fixateur d'écoulement. La pression peut être augmenté progressivement jusqu'à unmaximale de 130 mm Hg.

I. Dissection Figure 9. A) d'enlever la tête en utilisant une paire de ciseaux. b) faire une incision dans la peau le long de la ligne médiane du cou au nez et à exposer le crâne. c) couper le muscle du cou restant de sorte que la base du crâne est exposé. Maintenez la tête de telle sorte que la grande ouverture dans la surface du crâne (foramen magnum) est accessible. Insérez soigneusement l'extrémité pointue d'une paire de ciseaux iris dans le foramen magnum et faire une coupe. Répéter la même manoeuvre pour le côté controlatéral. Utilisez les rongeurs pour déblayer le crâne autour du cervelet.

Figure 10. Dissection II. a) faire glisser soigneusement les ciseaux le long de la surface intérieure du crâne. Soulevez la pointe que vous coupez pour éviter d'endommager le cerveau. Répétez la même chose pour lescôté opposé. Utilisez rongeurs peau du crâne loin du cerveau. b) illustration avec le crâne et le cerveau enlevé exposés. c) utiliser une spatule pour couper les bulbes olfactifs et connexions nerveuses à l'endroit le plus antérieur du cerveau. Guider avec précaution le long de la pointe de spatule dessous du cerveau pour couper les connexions pour la facilité de supprimer. Enlever le cerveau et le placer dans un flacon de fixateur.

Les auteurs n'ont rien à révéler.