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1. Préparation Patron de l'ADN et la transcription in vitro
- Le gène d'intérêt est cloné dans un T7 et / ou, par exemple sur la base promoteur SP6 plasmide. Pour obtenir RNC d'intérêt, C-terminale du polypeptide cible est étendu par adjonction séquence inducteur d'arrêt de SecM FXXXXWIXXXXGIRAGP 7. Afin d'assurer que le fragment polypeptide d'intérêt se extruder hors du tunnel ribosomique, la partie C-terminale de la protéine cible doit être augmentée d'au moins 30 acides aminés 12-14. Un flexible glycine-sérine lieur riche peut être introduite entre la protéine et la séquence d'arrêt SecM à éviter toutes contraintes possibles de conformation.
- Pour la transcription in vitro, l'ADN modèle doit être linéarisé par l'enzyme de restriction coupe en aval de l'ORF. Il faut vérifier linéarisation complète de l'ADN plasmidique en exécutant le produit de digestion de restriction à l'électrophorèse sur gel d'agarose.
- Le plasma linéariséIdentifiant est en outre utilisée dans la réaction de transcription in vitro. Concentration différente de la matrice ADN peuvent être testés pour déterminer la concentration d'ADN optimale requise pour la transcription in vitro. En général, avec Ambion Trousse MEGAscript à haut rendement de transcription (Ambion / Life Technologies, Grand Island, NY), 1 pg d'ADN linéarisé donne 40-60 ARNm pg. La transcription in vitro se fait suivant les instructions du fabricant (Ambion / Life Technologies, Grand Island, NY) .
- Après transcription in vitro, l'ARNm est purifié par précipitation au chlorure de lithium selon les instructions du fabricant (Ambion de MEGAscript Kit Haut de transcription rendement, Ambion / Life Technologies, Grand Island, NY).
- l'intégrité ARNm est encore vérifiée par électrophorèse utilisant de l'acrylamide ou des gels d'agarose.
2. La traduction in vitro
Pour la traduction in vitro en utilisant le RTS 100 E. coli HY Kit (5 Premier, Gaithersburg, MD), suivez les étapes ci-dessous:
- Préparer 100 ul d'instruction dans le fabricant de réaction de traduction in vitro suivante. En bref, dans la nucléase l'eau libre ajouter 24 ul mélange d'acides aminés moins méthionine (1 mM), 10 unités d'inhibiteur de ribonucléase (Invitrogen / Life Technologies, Grand Island, NY), 20 pCi de matières radioactives [35 S]-méthionine (MP Biomedicals, Solon, OH), 20 pl mélange réactionnel, 24 pl de tampon de reconstitution et 24 pi de E. coli lysat.
- Incuber la réaction à 30 ° C pendant 5 min à l'avance au chaud la réaction de traduction. Ajouter 1-2 ug d'ARNm de la réaction de traduction et incuber à 30 ° C pendant 10-15 min.
- Arrêter la réaction en plaçant la réaction de traduction sur la glace.
3. Isolement de polypeptide naissant de réaction de traduction in vitro
- Pour isoler RNC, la réaction de traduction est posée sur le dessus de 4,5 ml de gradient de saccharose 5-30% dans 20 mM HEPES-KOH pH 70,5, 15 mM MgCl 2, 100 mM d'acétate de potassium, DTT 1 mM et centrifugé à l'aide Beckman Coulter SW55-Ti rotor à 41000 rpm, 4 ° C pendant 2 heures.
- Après centrifugation, gradient de saccharose est fractionné pour isoler les différentes populations ribosomique et associés des chaînes naissantes. La séparation est contrôlée à l'aide de la CITP système programmable gradient de densité avec un enregistrement en continu à 254 nm en utilisant un détecteur de CITP UA-6 absorbance.
- La fraction (s) contenant des ribosomes 70S sont recueillies et analysées en outre en fonction du but de l'expérience.
4. Observation de la protéine liée à ribosome avec Tris-tricine SDS-PAGE
Pour vérifier si la protéine SecM prolongée reste attaché aux 70S du ribosome, fractions du gradient ont été collectées et traitées comme suit:
- La protéine dans chaque fraction a été précipité par addition d'acide trichloracétique (TCA) à une concentration finale de 10% et incubées à 4 ° C overniGHT.
- Après une nuit d'incubation, les échantillons ont été centrifugés à 14.000 X g pendant 15 min à la pastille de la protéine. Surnageant de centrifugation suivant a été éliminé et le culot lavé deux fois avec de l'acétone solution contenant: 1 mM de Tris-HCl pH 7,6 (4:1). Pellet était de l'air encore séché et dissous dans un tampon de chargement SDS-PAGE.
- L'échantillon traité a été résolu et analysé par Tris-tricine SDS-PAGE.
- Après l'électrophorèse, les gels ont été fixés, séché à l'aide de gel sous vide teinturier et soumis à une autoradiographie. La distribution des polypeptides naissants ont été observées à l'aide phosphoimaging.
5. Les résultats représentatifs
Nous présentons ici une expérience décrivant l'isolement de la pleine longueur bovine Gamma-B cristallin stable lié aux ribosomes 70S. La figure 1 illustre les étapes impliquées dans l'isolement de l'espèce bovine RNC cristallines Gamma-B. Le C-terminale de la Gamma-cristallin B a été prolongé d'ensemble de 32 acides aminés to s'assurer que les extrusions de protéines pleine longueur la sortie du tunnel du ribosome, ce qui inclut également la séquence SecM décrochage mis à la très extrémité C-terminale du polypeptide de fusion. Après la traduction in vitro, les ribosomes 70S ont été isolées par centrifugation sur gradient de saccharose (Figure 2.1). Afin de veiller à ce que la protéine reste stable lié au ribosome, les 70S contenant fractions ont été réunies, dessalée, un échange de tampon et soumis à une série supplémentaire de centrifugation en gradient de saccharose (Figure 2.2). Le résultat présenté dans la figure 2 montre clairement que SecM peut induire efficacement arrestation de translation des RNC cristallines Gamma-B.

Figure 1. Explication schématique des étapes impliquées dans l'isolement de RNC. C-terminale de bovins Gamma-B cristallin a été prolongée de 32 séquence d'acides aminés. Cette étendueC-terminales des régions inclut également la séquence d'arrêt SecM. Gamma-B cristallin avec une séquence SecM a été cloné dans PIVEX 2.3 (basé sur T7) plasmide. Pour la transcription in vitro de l'ADN modèle a été linéarisé par XbaI. Modèle linéarisé a en outre été utilisé pour la transcription in vitro. Le T7 dans la matrice d'ADN est reconnu par l'ARN polymérase T7 qui transcrit en aval gamma-B cristallin gène situées du promoteur T7. ARNm a été purifié en utilisant la méthode de précipitation au chlorure de lithium. L'ARNm purifié a ensuite été utilisé pour la traduction in vitro. Après l'incubation, la réaction de traduction a été superposé au-dessus de gradient de saccharose 5-30% et centrifugé dans Beckman Coulter SW55-Ti rotor à 41000 rpm, 4 ° C pendant 2 heures.

Figure 2. Isolement de bovins Gamma-B cristallin stable RNC liés au ribosome 70S. 1 ug d'ARNm a été mélangé dans 100 ul de réaction E. Système coli Extrait S30 tel que mentionné dans la section du protocole avec 20 pCi de [35 S]-méthionine et incubées à 30 ° C pendant 15 min. Après l'incubation, la réaction de traduction a été superposé au-dessus de gradient de saccharose 5-30% dans 20 mM HEPES-KOH pH 7,5, 15 mM MgCl 2, 100 mM d'acétate de potassium, DTT 1 mM et centrifugé dans Beckman Coulter SW55-Ti rotor à 41000 rpm, 4 ° C pendant 2 heures. Après la sédimentation de vitesse, le gradient a été déchargé et le ribosome pro le a été obtenu. Les données ont été enregistrées par le programme PeakTrak (gradient de densité CITP fractionnement dégradé système). Les fractions ont été recueillies, la protéine a été précipité TCA et résolu sur T 16,5%, 6% C Tris-Tricine PAGE gel à 15. Le gel a été séché et exposé pour autoradiographie. Après l'exposition du gel a été numérisé à l'aide du scanner Typhoon imagerie 9410. Figure 2.1 montre que sur toute la longueur Gamma-B cristallin est présent dans 70S du ribosome fractions. Ainsi, la séquence SecM décrochage permet l'isolement de l'écurie de l'espèce bovine RNC cristallines Gamma-B. Les données de la figure 2.2 indiquent clairement que les RNC isolés sont en effet stables. Dans l'expérience en cours des fractions 70S après première série de centrifugation en gradient de saccharose ont été regroupés et le saccharose a été éliminé à l'aide Amicon ultra-4 Unité de filtre centrifuge (Millipore), suivie par un tampon d'échange en solution contenant 20 mM de HEPES KOH pH 7,5, 15 mM MgCl 2, 100 mM acétate de potassium, DTT 1 mM. Cet échantillon a été ensuite soumis à une série supplémentaire de centrifugation à travers gradient de saccharose 5-30% et fractionnés. Chaque fraction a été traité et analysé comme dans la Figure 2.1.