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Article de méthode

En imagerie calcique in vivo des neurones en C. elegans

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DOI :

10.3791/50357

10 avril 2013

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Avec son petit corps, transparent et documenté neuroanatomie et une foule de techniques génétiques qui se prêtent et réactifs, C. elegans Fait un organisme modèle idéal pour In vivo Imagerie neuronale utilisant relativement simples et peu coûteuses techniques. Nous décrivons ici l'imagerie seul neurone dans les animaux adultes intacts génétiquement codés à l'aide des indicateurs de calcium fluorescentes.

Résumé

Le ver nématode C. elegans est un organisme modèle idéal pour relativement simple, l'imagerie à faible coût neuronale in vivo. Son petit corps transparentes et simples, bien caractérisé le système nerveux permet l'identification et l'imagerie de fluorescence d'un neurone à l'intérieur de l'animal intact. Techniques d'immobilisation simples avec un impact minimal sur la physiologie de l'animal permettent prolongée imagerie time-lapse. Le développement de fluorophores calcium génétiquement encodés sensibles tels que cameleon 1 et 2 GCaMP permettre l'imagerie in vivo de calcium neuronal concernant la physiologie cellulaire et l'activité neuronale. De nombreuses souches transgéniques exprimant ces fluorophores dans des neurones spécifiques sont facilement disponibles ou peuvent être construits en utilisant des techniques bien établies. Ici, nous décrivons des procédures détaillées pour la mesure dynamique du calcium dans un seul neurone in vivo en utilisant à la fois GCaMP et caméléon. Nous discutons des avantages et des disadvantles âges de deux, ainsi que diverses méthodes de préparation des échantillons (immobilisation des animaux) et l'analyse d'image. Enfin, nous présentons les résultats de deux expériences: 1) Utilisation GCaMP pour mesurer la réponse d'un neurone sensoriel spécifique à un champ électrique externe et 2) Utilisation cameleon pour mesurer la réponse physiologique de calcium d'un neurone à l'endommagement laser traumatique. Techniques d'imagerie calcique comme ceux-ci sont largement utilisés dans C. elegans et ont été étendues aux mesures chez les animaux se déplaçant librement, les neurones multiples simultanément et de comparaison entre fonds génétiques. C. elegans présente un système robuste et flexible pour l'imagerie neuronale in vivo avec des avantages par rapport aux systèmes d'autres modèles de simplicité et de coût.

Introduction

Nous présentons ici des méthodes pratiques pour l'imagerie in vivo de calcium dans C. neurones elegans. Le développement de la codés génétiquement sensible au calcium avec une grande fluorophores signal sur bruit rend C. elegans un système relativement simple et rentable pour la mesure de la neurophysiologie et de l'activité. Notre formation d'image est effectuée avec un microscope standard à l'aide d'imagerie à grand champ de fluorescence des fluorophores couramment disponibles. Nous présentons plusieurs techniques employant différents fluorophores et la préparation des échantillons différents, de disc....

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Protocole

1. Configuration optique

  1. Utiliser un microscope composé standard avec des capacités d'imagerie à épifluorescence. Nous utilisons un Nikon Eclipse Ti-U microscope inversé avec un illuminateur Intensilight HG.
  2. Pour une meilleure qualité d'image et du signal utiliser un fort grossissement, objectif haute ouverture numérique. Nous utilisons généralement un Nikon X60 1.4 Objectif NA immersion dans l'huile. Dans certains cas, il est possible d'utiliser plus faible grossissement (X40, X20) en fonction du niveau d'expression du fluorophore et la force du signal.
  3. Utilisez une haute sensibilité refroidie caméra CCD, comme une ....

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Résultats

Nous présentons ici les résultats de deux expériences distinctes. Le premier emploie GCaMP pour mesurer la réponse d'un neurone sensoriel spécifique à un stimulus externe définie, ce qui donne un bon exemple de la façon dont les journalistes de calcium fluorescents peuvent être utilisés pour surveiller optiquement l'activité neuronale dans intacts C. elegans. La seconde emploie cameleon pour mesurer le calcium intracellulaire transitoire déclenché dans le neurone en réponse aux dommages laser spécifique.......

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Discussion

Indicateurs de calcium génétiquement codés ont été largement utilisés dans C. elegans neurobiologie. De nombreux groupes ont utilisé ces techniques pour étudier la réponse des neurones sensoriels primaires à des stimuli externes comme démontré ici avec la réponse ASJ à un champ électrique. Exemples les plus notables figurent sensation du toucher mécanique, des produits chimiques spécifiques, de la température et un champ électrique 12, 16-19. L'activité des interneurones et les cellules musculair.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent n'avoir aucun conflit d'intérêts financiers.

Remerciements

Plusieurs personnes ont contribué aux travaux décrits dans le présent document. CVG a construit le dispositif expérimental, et LS, SHC, et CVG a effectué les expériences. CVG et SHC a écrit le manuscrit. Tous les auteurs par la suite participé au processus de révision et approuvé la version finale du manuscrit. Nous remercions Paul Sternberg pour la souche GCaMP. Certaines souches de nématodes utilisées dans ce travail ont été fournies par le Centre de Caenorhabditis Genetics (CCG), qui est financé par le NIH Centre National de Ressources de recherche (NCRR). Le programme MATLAB analyse d'image a été adaptée de celle utilisée dans 18 ans. Les auteurs o....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Microscope inversé Eclipse Ti-U
Nikon
Intensilight HG IlluminatorNikonC-HGFISource lumineuse fluorescente
CFI Plan Apo VC 60X HuileNikon
Table optique ou 3'X3' < / > qualité ThorLabsSi une table optique n’est pas utilisée, une plaque d’essai de qualité optique
sur une paillasse de laboratoire solide
devrait suffire
.
Clara Interline CameraAndor
Technology
Caméra CCD haute sensibilité
wtGFP Longpass EmissionChroma Technology
Corp.
41015Jeu de filtres GFP pour l’imagerie Filtre GCaMP
440 +/- 10 nmChromaD440/20x EXFiltre d’excitation pour cameleon
Miroir dichroïque > 455 nm
Microscope passe-long
Chroma455DCLP BSdichroïque pour l’imagerie caméléon
Miroir dichroïque > 515 nm
longpass
Chroma515DCLP BSMiroir dichroïque pour caméléon
imagerie Filtre 535 +/- 15 nmChromaD535/30m Filtred’émission EM YFP
Filtre 480 +/- 20 nmChromaD485/40m Filtred’émission EM CFP
Lentille, 200 mm, AchromatThor LabsAC508-200-A1Lentille relais pour optique FRET (3)
Miroir large bande argentéThor LabsME2S-P01Optique FRET (2)
Tampon
lévamisoleSigma
Polysciences, Inc.08691-10, volume de 2,5 % by
, nanoparticules de polystyrène de 50 nm
de diamètre
pour C.
elegans immobilisation
Souche transgénique, Souche
gpa-9 ::GCaMP3(en pha-1 ;
him-5 bkg)
Sternberg LabStrain PS6388
Souche transgénique, mec-
4 ::YC3.60Gabel
LabStrain CG1B
NGM Microsphères de polybilles de

Références

  1. Miyawaki, A., Llopis, J., Heim, R., McCaffery, J. M., Adams, J. A., Ikura, M., Tsien, R. Y. Fluorescent indicators for Ca2+ based on green fluorescent proteins and calmodulin. Nature. 388, 882-887 (1997).
  2. Nakai, J., Ohkura, M., Imoto, K. A high sig....

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Réimpressions et autorisations

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