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Article de méthode

Enregistrement électrophysiologique simultané et imagerie calcique des neurones du noyau suprachiasmatique

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DOI :

10.3791/50794

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8 décembre 2013

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Dans cet article

Résumé

Les procédures sont décrites pour effectuer des enregistrements simultanés du potentiel ou du courant de la membrane et des changements de concentration intracellulaire de calcium. Les neurones du noyau suprachiasmatique sont remplis de l’indicateur de calcium bis-fura-2 à l’aide d’une électrode de patch clamp dans la configuration de patch clamp de cellule entière.

Résumé

Des méthodes d’enregistrement simultanées d’imagerie électrophysiologique et fluorescente ont été utilisées pour étudier le rôle des changements de potentiel ou de courant membranaire dans la régulation de la concentration intracellulaire de calcium. Les conditions environnementales changeantes, telles que le cycle lumière-obscurité, peuvent modifier l’activité des réseaux neuronaux et neuronaux et l’expression d’une famille de gènes de l’horloge circadienne dans le noyau suprachiasmatique (SCN), l’emplacement de l’horloge circadienne maîtresse dans le cerveau des mammifères. La transmission synaptique excitatrice entraîne une augmentation de la concentration postsynaptique de Ca2+ qui est censée activer les voies de signalisation qui modifient l’expression rythmique des gènes de l’horloge circadienne. Des tranches hypothalamiques contenant le NSC ont été clampées par patch à l’aide de microélectrodes remplies d’une solution interne contenant l’indicateur de calcium bis-fura-2. Après qu’un joint ait été formé entre la microélectrode et la membrane neuronale du NKS, la membrane a été rompue par une aspiration douce et la sonde de calcium s’est diffusée dans le neurone, remplissant à la fois le soma et les dendrites. Des mesures ratiométriques quantitatives de la concentration intracellulaire de calcium ont été enregistrées simultanément avec le potentiel ou le courant membranaire. En utilisant ces méthodes, il est possible d’étudier le rôle des changements de la concentration intracellulaire de calcium produite par l’activité synaptique et l’activation du potentiel d’action des neurones individuels. Dans cette présentation, nous démontrons les méthodes permettant d’enregistrer simultanément l’activité électrophysiologique avec le calcium intracellulaire à partir de neurones SCN individuels maintenus dans des coupes de cerveau.

Introduction

Des modifications de l’expression des gènes sont connues pour se produire dans les neurones à la suite de la signalisation synaptique. La signalisation par le glutamate, un neurotransmetteur excitateur, peut dépolariser le potentiel de la membrane neuronale, conduisant finalement à la transcription et à la traduction des gènes1,2. L’activation des récepteurs ionotropiques par le glutamate permet aux ions calcium extracellulaires de pénétrer dans la cellule, qui jouerait un rôle essentiel en tant que second messager dans l’activation de la transcription des gènes. L’évaluation de la relation entre l’activité électrique membranaire, telle que la fréquence de....

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Protocole

1. Préparation des tranches de cerveau hypothalamique

  1. Obtenir à l’avance l’approbation du Comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux (IACUC) pour toute procédure impliquant des animaux. Les procédures sur les animaux décrites ici sont conformes aux directives de l’AVMA pour l’euthanasie des animaux 2013 et ont été approuvées à l’avance par l’IACUC de l’Oregon Health & Science University.
  2. Préparez 500 ml de tampon de tranchage sans le MgCl2 et le CaCl2 (tableau 1). Faites buller la solution avec 95 % d’O2 et 5 % de CO2 à température ambiante puis a....

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Résultats

À l'aide de tranches cérébrales hypothalamiques, nous avons simultanément enregistré les variations du calcium intracellulaire en mode tout-cellule, dans des conditions de blocage de tension et de blocage de courant. L'électrode microscopique illustrée dans la figure 1A est abaissée en position sous fort grossissement (objectifs UV 40X ou 63X) avec une faible pression positive appliquée. Après contact avec le neurone, un scellement gigaohm est formé par aspiration douce. En mode blocage de tension, après.......

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Discussion

Les méthodes décrites ci-dessus fournissent un outil puissant pour enregistrer simultanément le lien entre l’activité électrique de la membrane neuronale et la concentration intracellulaire de calcium. La méthode présente un certain nombre d’avantages en ce sens qu’elle combine deux méthodes très bien caractérisées : l’enregistrement par patch clamp de cellules entières et la mesure du calcium intracellulaire à l’aide de colorants fluorescents. Notre approche est similaire à celles décrites par d’autres chercheurs

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Les travaux ont été financés par une subvention de l’Institut national des sciences médicales générales (GM096972).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
NaClFisher Scientific Co.S271-3
KClFisher Scientific Co.P217-500
NaH2PO4&bull ; H2OSigma Chemical Co.S-9638
MgCl2&bull ; 6H2OFisher Scientific Co.M33-500
CaCl2&bull ; 2H2OFisher Scientific Co.C79-500
D-glucoseFisher Scientific Co.D16-500
NaHCO3Fisher Scientific Co.S233-500
SaccharoseFisher Scientific Co.S5-500
D-gluconate de potassiumSigma-AldrichG4500
HEPESSigma-AldrichH4034
Adénosine 5&prime ;-triphosphate dipotassique sel dihydratéSigma-AldrichA8937
Guanosine 5&prime ;-triphosphate tris selSigma-AldrichG9002
Agarose (ultrapure)Life Technologies15510-027Gel poré dans une boîte de Pétri stérile Couche de 6 mm d’épaisseur
KOHSigma-AldrichP-6310
NaOHSigma-AldrichS-5881
Bis-fura-2, sel hexapotassiqueInvitrogenB6810Imperméabilisation de la cellule
Nom de l’équipementEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
MicrotomeLeicaVT1000STranchage des tissus
Colle cyanoacrylique (Roti-Coll1)Carl Roth GmbH+CoArt-Nr. 0258.1
Extracteur de microélectrodesNarshige International USAPP-83
Microelectrode Tubes capillairesWorld Precision Instruments1B150F-4
Microfil 34 gWorld Precision InstrumentsMF34G-5
Filtre à seringueCorning#431212
MicroscopeLeicaDM LFSAvec objectifs 4X, 40X UV et 63X UV, et caméra CCD à épifluorescence
HamamatsuORCA ER12 bit CCD
Fura-2 FilterCube Chroma71500ASet avec filtre UG11
Polychrome IVTill Photonics GmBHMonochronomètre
Lunettes de sécurité anti-ultravioletsultra-violets
EPC-9 amplificateurHEKA Eletronik
MetafluorMolecular DevicesLogiciel d’imagerie
PatchmasterHEKA EletronikLogiciel d’acquisition de données
Igor version 6WavemetricsElectrophysiologie & Ca2+ Analyse des données
VAPRO 5520Osmomètre à pression de vapeurWestcor
Produits

Références

  1. Bading, H., Ginty, D. D., Greenberg, M. E. Regulation of gene expression in hippocampal neurons by distinct calcium signaling pathways. Science. 260, 181-186 (1993).
  2. Ghosh, A., Ginty, D. D., Bading, H., Greenberg, M. E. Calcium regulation of gene expression in neuronal cells.....

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Réimpressions et autorisations

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