Method Article

Analyser craniofaciale morphogenèse chez le poisson zèbre Utilisation de 4D microscopie confocale

DOI:

10.3791/51190

January 30th, 2014

In This Article

Summary

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Time-lapse imagerie confocale est une technique puissante utiles pour caractériser le développement embryonnaire. Ici, nous décrivons la méthodologie et de caractériser la morphogenèse craniofaciale dans le type sauvage, ainsi que PDGFRA, Smad5, et SMO embryons mutants.

Abstract

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Imagerie time-lapse est une technique qui permet l'observation directe du processus de morphogenèse, ou la génération de forme. En raison de leur clarté optique et la susceptibilité à la manipulation génétique, la embryon de poisson zèbre est devenu un organisme modèle populaire avec laquelle effectuer l'analyse time-lapse de la morphogenèse des embryons vivants. L'imagerie confocale d'un embryon de poisson zèbre direct requiert qu'un tissu d'intérêt est constamment marqué avec un marqueur fluorescent, comme un transgène ou d'un colorant injecté. Le processus exige que l'embryon est anesthésié et maintenu en place de manière à ce que le développement sain se déroule normalement. Paramètres pour l'imagerie doivent être définis pour tenir compte de la croissance en trois dimensions et à concilier les exigences de la résolution des cellules individuelles tout en obtenant des clichés de développement. Nos résultats démontrent la possibilité d'effectuer à long terme dans l'imagerie in vivo d'embryons de poisson zèbre de marquées par fluorescence et de détecter des comportements de tissus variés dansla crête neurale crânienne qui causent des anomalies cranio-faciales. Les retards de développement causés par l'anesthésie et le montage sont minimes, et les embryons sont sains et saufs par le processus. Embryons Time-lapse imagées peuvent être retournés pour un milieu liquide et ensuite imagés ou fixés à des points plus tard dans le développement. Avec une abondance croissante des lignes de poisson zèbre transgénique et cartographie sort bien caractérisé et techniques de transplantation, imagerie n'importe quel tissu désiré est possible. En tant que tel, time-lapse imagerie in vivo combine puissamment avec des méthodes génétiques de poisson zèbre, y compris les analyses des embryons mutants et micro-injection.

Introduction

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Morphogenèse craniofaciale est un processus multi-étapes complexe qui nécessite des interactions coordonnées entre plusieurs types de cellules. La majorité du squelette cranio-facial est dérivé de cellules de la crête neurale, dont beaucoup doivent migrer du tube neural dorsal dans des structures appelées transitoires arcs branchiaux 1. Comme avec de nombreux tissus, la morphogenèse du squelette cranio-facial est plus complexe que ce qui peut être compris par des images statiques d'embryons à des points spécifiques de temps de développement. Bien que cela prend beaucoup de temps pour réaliser, in vivo microscopie time-lapse donnent un aspect c....

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Protocol

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Une. Elevage et Mutant allèles

  1. Élever du poisson zèbre comme décrit 21.
  2. Allèles mutants de poisson zèbre utilisés dans cette étude étaient PDGFRA b1059 16, B1100 Smad5 22, et SMO b577 23. Sources de ces souches de poisson zèbre comprennent ZIRC.

2. Préparation des solutions et met en œuvre

Remarque: Toutes les solutions et les outils peuvent être faites à l'avance et stockés pour une utilisation future.

  1. Sensibiliser les médias de l'embryon (EM) comme décrit précédemment 21.
  2. Faire 4 g / L MS-222 (Trica....

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Results

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Chez les embryons de type sauvage, à la suite de neurones population de crête, les arcs pharyngiens allongés le long des antérieure / postérieure et dorsale / ventrale axes tout en se déplaçant dans une direction rostrale (Film 1). 30 heures après la fécondation (HPF), la longueur antérieure / postérieure du premier arc pharyngien est comprise entre 1.8 à 1.9 fois sa dorsale / ventrale hauteur. Dorsale / ventrale allongement procède régulièrement, plus rapide que l'extension antérieure / postérieure jus.......

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Discussion

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Time-lapse microscopie confocale est un outil puissant pour l'analyse du développement. Ici, nous démontrons l'utilité de la méthode dans l'étude de la morphogenèse arc branchial chez le poisson zèbre qui sont mutantes pour voies de signalisation importantes en utilisant un transgéniques qui marque les cellules de la crête neurale. En plus du niveau des tissus analyses, des analyses de déchéance de temps sont également applicables à des analyses à l'échelle cellulaire 28. De nombreuses méthode.......

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Disclosures

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Les auteurs déclarent qu'ils n'ont aucun intérêt financier concurrents.

Acknowledgements

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Nous remercions Melissa Griffin et Jenna Rozacky pour leurs soins de poissons d'experts. PDM grâce EGN pour aide à la rédaction, la générosité et la patience. Ce travail a été soutenu par le NIH / NIDCR R01DE020884 à JKE.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
6 lb Ligne monofilament d’essaiCortland Line CompanySLB16
Agarose IAmresco0710
Laser à argonLASOS Lasertechnik GmbHLGN 3001
Chlorure de calciumSigma-AldrichC8106
Tube capillaire, 100 mm, 0,9 mm IDFHC30-31-0
Huile de clou de girofleHilltech Canada, Inc.HB-102
Graisse sous vide pousséDow Corning2021846-0807
Incubateur à bain sec IsotempFisher Scientific2050FS
Microscope à balayage laserCarl Zeiss AGLSM 710
Sulfate de magnésium hexahydratéSigma-Aldrich230391
Verre de protection de microscope, 22 x 22-1Fisher Scientific12-542-B
Verre de protection de microscope, 24 x 60-1Fisher Scientific12-545-M
Chlorure de potassiumFisher ScientificM-11321
Phosphate de potassium dibasiqueSigma-AldrichP3786
Chlorure de sodiumFisher ScientificM-11624
Phosphate de sodium dibasiqueSigma-AldrichS7907
TempController 2000-2PeCon GmbH
Tricaine-SWestern Chemical, Inc.

References

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  1. Trainor, P. A., Melton, K. R., Manzanares, M. Origins and plasticity of neural crest cells and their roles in jaw and craniofacial evolution. Int. J. Dev. Biol. 47, 541-553 (2003).
  2. Eberhart, J. K., Swartz, M. E., Crump, J. G., Kimmel, C. B.

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Zebrafish EmbryoTime lapse ImagingConfocal MicroscopyPharyngeal ArchCraniofacial MorphogenesisMethylcellulose MountingAnesthetic AgaroseFluorescent LabelingHeated StageZ stack Acquisition

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