Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Purification à grande échelle d'origine porcine ou bovine photorécepteur Outer Segments pour phagocytose essais sur les cellules épithélium pigmentaire rétinien

12.1K vues

⸱

DOI :

10.3791/52100

⸱

12 décembre 2014

 ,  ,  ,  , 
1INSERM, U968, 2Sorbonne Universités, UPMC Paris 06, UMR_S 968, Institut de la Vision, 3CNRS, UMR_7210, 4Department of Biological Sciences, Center for Cancer, Genetic Diseases and Gene Regulation, Fordham University

Dans cet article

Résumé

Cet article décrit le protocole de purification des fragments du segment externe des photorécepteurs (POS) par ultracentrifugation à partir de rétines porcines/bovines par homogénéisation et centrifugation par gradient de saccharose. Ce protocole permet de préparer d’importants stocks d’aliquotes POS, étiquetées ou non, qui peuvent ensuite être stockées à -80 °C.

Résumé

Analyse de l'une des fonctions vitales de l'épithélium rétinien pigmentaire (RPE) des cellules, la phagocytose des fragments passés distales âgées de segments externes des photorécepteurs (OP) peut être effectuée in vitro. Photoréceptrices segments extérieurs avec des piles de disques membraneuses contenant les machines de phototransduction sont constamment renouvelés dans la rétine. POS usés sont éliminés quotidiennement par des cellules RPE. Rongeur, porcin / bovin et cellules RPE humaines reconnaître POS partir de diverses espèces d'une manière similaire. Pour faciliter l'exécution grande série d'expériences avec peu de variabilité, un stock important de POS peut être isolé de yeux porcins et conservé congelé en aliquotes. Ce protocole prend avantage de la caractéristique de photopigments qui affichent une couleur orange lorsqu'il est maintenu dans l'obscurité. Sous une lumière rouge sombre, rétines sont collectés dans un tampon d'œilletons ouverts coupées en deux. La suspension de cellules de la rétine est homogénéisé, filtré et chargé sur un gradient de sucrose continu. Après centrifugation, POS sont situés dans une bande distincte dans la partie supérieure de la pente qui a une couleur orange caractéristique. POS sont ensuite collectés, filés, remises en suspension séquentielle dans des tampons de lavage, comptés et aliquotés. POS obtenus de cette manière peuvent être utilisées pour des essais et l'analyse de l'activation des protéines, la localisation ou l'interaction à différents moments après la provocation POS phagocytose. Alternativement, POS peut être étiqueté avec des fluorophores, e. G., FITC, avant aliquotage pour la fluorescence ultérieure quantification des POS de liaison ou engloutissement. Autres applications possibles comprennent l'utilisation de défi POS ou POS modifié combiné à des conditions de stress pour étudier l'effet du stress oxydatif ou de vieillissement sur les cellules de l'EPR.

Introduction

Dans la rétine, la vision est provoquée par isomérisation des molécules photosensibles appelées opsines, avant d'être transformé en un signal qui peut être transmis entre les neurones jusqu'à des zones visuelles du cerveau. Ces molécules sont intégrées dans des piles de disques membraneuses ressemblant à crêpes qui constituent les parties de segments extérieurs des cellules photoréceptrices (PR). Être soumis à une exposition constante à des niveaux considérables donc du stress oxydatif et de la lumière, les PR renouveler continuellement leurs segments extérieurs à limiter les dommages oxydatifs potentiel. Photoréceptrices segments extérieurs sont en contact étroit avec microvillosités apicale des cellules voisines épithélium pigmentaire rétinien (EPR). Cellules RPE constitue la partie extérieure de la barrière hémato-rétinienne et assurent de nombreuses tâches qui sont cruciaux pour photorécepteurs santé et de la fonction 1, telles que la trempe des rayons lumineux par l'intermédiaire de pigments mélaniques, re-isomérisation du photoréactif rétine de composante de opsine, fournissant des nutriments et de gCROISSANCE facteurs, en participant à l'élimination PR métabolite.

En outre, les cellules RPE éliminent passé POS et recyclent leurs composants, une occupation quotidienne qui est réglementée par le rythme circadien dans la rétine des mammifères 2,3. La clairance du hangar POS est absolument nécessaire pour la survie de PR. Quand il est complètement abrogée, les débris se accumulent POS et PRS dégénèrent provoquant rapide de 4,5 perte de vision. Si le profil rythmique est perdu et remplacé par une activité constante, PR et RPE défauts se accumulent avec l'âge de 6. Par conséquent, il est très important de caractériser la régulation moléculaire d'un EPR phagocytose in vitro afin de comprendre phénotypes liés à son dysfonctionnement. Fait intéressant, la machinerie moléculaire dans les cellules RPE est très similaire à celle utilisée par les macrophages pour effacer les cellules apoptotiques et les deux dépendent de la reconnaissance de la phosphatidylsérine exposée sur les débris phagocytaire 9.7. Pourtant, les cellules macrophages et RPE réguler le pHagocytosis différemment, comme les macrophages optent pour l'élimination immédiate de cellules apoptotiques au moment de la rencontre tandis que les cellules RPE engloutir rythmiquement POS seulement une fois par jour en dépit de leur contact permanent avec des segments extérieurs. Cela suggère des mécanismes de régulation spécifiques qui ne sont pas encore bien compris.

Un grand nombre de molécules impliquées dans le mécanisme de phagocytose RPE ont été identifiés validé ou grâce à l'utilisation de POS isolé et culture de cellules tests de phagocytose. Le récepteur d'intégrine alphavbeta5 située à la surface apicale des cellules RPE, en coordination avec son ligand MFG-E8, se lie spécifiquement à POS 10-12, qui sont ensuite internalisée par l'intermédiaire du récepteur de kinase de tyrosine MerTK 13-15. Le récepteur scavenger CD36 a été montré pour participer à la prise de point de vente et d'influer sur sa vitesse 16,17 et peut servir de capteur de phospholipides oxydés à la surface de 18 points de vente. L'internalisation doit le recrutement de F-cytosquelette d'actine-assdes protéines telles que l'annexine ociated 2 19, la myosine II 20 et de la myosine VIIA 21,22. POS native ou oxydée in vitro sont également utilisés pour comprendre le vieillissement phénotypes de cellules RPE in vivo liés à l'accumulation de mal digéré POS oxydé 23-28. La génération de cellules RPE dérivées de cellules souches a lancé une nouvelle application pour POS isolé qui sont utilisés pour prouver la fonctionnalité des cellules avant qu'elles sont transplantées à des animaux ou patients 29,30,27.

Première décrit par Molday et ses collègues en 1987 31, le protocole pour l'isolement de POS bovine combine une étape d'ultracentrifugation d'homogénats rétiniennes sur des gradients de saccharose continues avec l'observation de l'apparition d'orange caractéristique de la rétine photopigment écrus (portant 11- rétinien cis). Au cours des 10 dernières années, en raison de précautions prises afin de minimiser le risque de maladie de la vache folle, l'utilisation des yeux porcins est devenu increasingly important. Le protocole décrit ici montre comment obtenir de grandes quantités de POS de porc ou les yeux bovins qui peuvent être aliquotés et conservés pendant de longues périodes de temps. Ceci élimine la nécessité de préparer POS des regards de rongeurs, ce qui nécessite l'aide d'un grand nombre d'animaux par la préparation de POS et le dosage 32,33,21,22. En outre, des détails concernant l'étiquetage POS avant stockage en utilisant des molécules fluorescentes sont données, pour quantifier et visualiser POS de manière simplifiée et comparables pour certaines applications par rapport à l'étiquetage POS après l'essai de phagocytose 32,10. Par conséquent, ces stocks importants pour permettre la reproductibilité et la facilité d'utilisation dans de nombreux types d'expériences.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

Cette expérience de l'isolement de POS prend du temps et peut nécessiter jusqu'à 12 heures pour compléter si POS sont étiquetés avant le stockage. Le protocole a été adapté à partir d'un document publié par RS Molday et ses collègues en 1987 31 et modifié par SC Finnemann et ses collègues en 1997 10.

Les animaux ont été traités selon l'Association pour la recherche en vision et ophtalmologie (ARVO) Déclaration pour l'utilisation d'animaux dans ophtalmique et Vision Research. Des protocoles ont été examinés et approuvés par le comité d'éthique de l'Université Charles Darwin Pierre et Marie Curie-Paris 06 et le Comité institutionnel de protection et d'utilisation des animaux Université Fordham.

1. Généralités Set Up

  1. Obtenir 80 porcs ou de vaches fraîches yeux aussi frais dès après l'abattage que possible et garder réfrigéré dans l'obscurité. Fournir des instructions au fournisseur afin que l'entreprise procède de la même façon. Ce protocole est optimisé pour 80 yeux. Àprocéder à plus d'yeux et obtenir des stocks plus importants (par exemple, à partir de 160 yeux), doubler les quantités de solutions et effectuer deux tours de ultracentrifugation; Des échantillons de la piscine par la suite à l'étape de collecte (voir étape 2.2.2).
  2. Mis en place sur le banc la lampe inactinique rouge, tampons absorbants, lingettes (Table des matières). Préparer des plats de 15 cm et des sacs de risque biologique pour la collecte des déchets (parties de l'œil vitreux, utilisé ...). Porter blouse moulante, gants, manches protectrices et des lunettes.
  3. Précautions:
    1. Pré-refroidir toutes les solutions, puis les conserver au froid durant toutes les étapes. Gardez les yeux et les gradients réfrigérés sur la glace autant que possible.
    2. Gardez les yeux et les tissus dérivés dans l'obscurité autant que possible jusqu'à ce que l'étape de collecte après l'ultracentrifugation pour éviter photoblanchiment des pigments visuels et la perte de la couleur orange-rose de la forme active des photopigments.

2. Protocole Actions

  1. Préparer des solutions et des gradients:
    1. Thaw taurine stocks complètement en utilisant un bain d'eau à 37 ° C.
    2. Préparer toutes les solutions de solutions d'achat d'actions (tableau 1, les solutions mères) et bien mélanger le saccharose et d'autres ingrédients à l'aide d'un agitateur magnétique pour chaque solution.
      1. Préparer 15 ml de la solution d'homogénéisation à une concentration finale de 20% de saccharose, 20 mM de Tris pH 7,2 acétate, 2 mM de MgCl2, 10 mM de glucose et 5 mM de taurine.
      2. Préparer la solution de saccharose à 25% à une concentration finale de 25% de saccharose (en utilisant 70% de saccharose actions), 20 mM d'acétate de Tris pH 7,2, glucose 10 mM et 5 mM de taurine.
      3. Préparer la solution de saccharose à 60% à une concentration finale de 60% de saccharose (en utilisant une poudre de saccharose), 20 mM de Tris pH 7,2 acétate, 10 mM de glucose et 5 mM de taurine.
      4. Préparer la solution de lavage à une concentration finale de 20 mM d'acétate de tris pH 7,2 et 5 mM de taurine.
      5. Préparer la solution de lavage 2à une concentration finale de 10% de saccharose, 20 mM d'acétate de tris pH 7,2 et 5 mM de taurine.
      6. Préparer la solution de lavage 3 à une concentration finale de 10% de saccharose, 20 mM de phosphate de sodium pH 7,2 et 5 mM de taurine.
    3. Stabiliser le fabricant de gradient sur un agitateur magnétique et d'insérer une barre d'agitation dans la chambre la plus proche de la sortie où la solution de 60% sera inséré. Utiliser un embout pipette P200 coupure placé à la sortie du tube pour atteindre la vitesse de coulée appropriée.
    4. Fonte gradients linéaires délicatement en diluant et en agitant la solution de saccharose à 60% avec celui de 25% en utilisant 12 ml de chaque solution (à savoir, au total six tubes pour 80 yeux) dans des tubes d'ultracentrifugation de pré-réfrigérés. Agiter la solution progressivement diluer-saccharose 60% ainsi. Stabiliser la vitesse d'écoulement gradient, versant la solution en douceur et pas trop vite.
      NOTE: Afin d'obtenir un gradient linéaire continue, gardez l'ouverture de la pointe de la pipette à droite à la surface de la solution pour l'ensemble de formatio de gradientn.
    5. Laissez les gradients sont assis sur la glace pendant environ 1 h pour la stabilisation. Gardez les gradients réfrigérés jusqu'à leur chargement. Ne secouez pas les tubes pour éviter la perturbation du gradient.
  2. collecte de tissu:
    1. Recueillir tissus sous faible lumière rouge. Prenez un oeil dans une main et pousser l'avant avec le bord de la lame de rasoir tout en maintenant le regard loin (pour éviter les éclaboussures; Figure 1). Utilisez la lame de rasoir pour couper le globe oculaire antérieure en deux moitiés (cornée, plus au moins 5 mm dans la sclérotique). Retirez la lentille et retournez l'œilleton intérieur de telle sorte qu'il peut être tenu sur la pointe d'un doigt exposant ainsi la rétine.
    2. Utilisation de la lame de rasoir à un angle, grattez délicatement la rétine, détacher facilement et apparaissant comme une couche rose, sur la surface de tapetum et couper à la tête du nerf optique (Figure 1). Collecter toutes les rétines en 2 x 50 ml tubes contenant 15 ml de solution d'homogénéisation sur la glace.
    3. Homo Retinagenization:
      1. Secouez la suspension vigoureusement à la main pendant 2 minutes afin de perturber les différentes couches de cellules, briser POS hors le reste de la cellule de PR, fragment POS et homogénéiser la suspension rétine.
      2. Filtre 3x par une double couche de gaze propre pour enlever de grands fragments de tissus et de recueillir l'écoulement continu propres tubes de 50 ml (figure 1). La suspension de la rétine étant assez épais, afin de maximiser le rendement, appuyez doucement sur la gaze pour libérer restants tissus fragmentés après chaque filtration.
  3. Photorécepteur extérieure fragment de segment (POS) l'isolement:
    1. Posez délicatement la rétine prep brut, autour de 6-7 ml par tube, plus de 6 x 30 ml tubes d'ultracentrifugation contenant chacun 24 ml de fraîches, réfrigérées continue 25 - gradient de saccharose à 60% (figure 1). Équilibrer les tubes opposés, le cas échéant pour le rotor à utiliser. Ultracentrifugeuse à 106 000 g pendant 50 min à 4 ° C.
    2. Éliminer la majeure partie de la solution au-dessus de la bande orange-rose dans le tiers supérieur de gradient par aspiration (figure 2A). Recueillir la bande orange-rose avec une pointe de P1000 coupure dans un bécher. Jeter le reste après neutralisation en utilisant l'eau de Javel (biologique des déchets).
    3. Diluer avec ~ 4-5 volumes de glace froide Laver une solution. Séparer en autant de tubes de 30 ml au besoin. Centrifuger à 3000 xg pendant 10 min à 4 ° C. Prenez soin de le surnageant.
    4. granulés de remettre en suspension dans 10 ml Laver deux solution et tournent à 3000 g pendant 10 min comme détaillé ci-dessus. granulés de remettre en suspension dans 15 ml Laver 3 et tourner de nouveau à 3000 g pendant 10 min. Combinez suspensions de plusieurs pastilles de réduire le nombre de tubes nécessaires avant centrifugation dans Wash 2 et 3 Lavez solutions.
  4. POS aliquotage sans marquage:
    1. Remettre en suspension POS dans 10-20 ml de DMEM. Prédilué 10 pi à 490 pi DMEM (01h50) et le comte allongé ainsi que POS tourbillonnait dans unchambre de comptage de cellules (figure 2B). Calculer le rendement et la concentration en particules POS par ml.
      NOTE: Le rendement varie en fonction principalement sur ​​l'âge et la souche de porcs / vaches et la taille des yeux, par exemple, une bonne préparation est comprise entre 5 - yeux 8 x 10 9 POS de 80 de porcs.
    2. Décider sur le volume de DMEM final (typiquement de 10 à 20 ml) et ajouter du saccharose pour obtenir une concentration finale de 2,5% de saccharose.
    3. Préparer des aliquots de la taille souhaitée, par exemple, 5 x 10 7 POS par tube pour la remise en suspension d'un volume de 2 ml pour une expérience de 96 puits à 40 uL / puits. Spin une aliquote pendant 5 min à 2300 xg à température ambiante et d'évaluer la taille de culot. Préparer différentes tailles aliquotes pour différents volumes de la demande comme POS devrait PAS être congelé et décongelé deux fois.
    4. Congeler aliquotes POS à -80 ° C jusqu'à utilisation ultérieure.
      NOTE: Des aliquotes sont stables pendant de nombreux mois. Dans nos mains, non marqué ou étiqueté POS peut être conservé pendant au moins un an.
  5. étiquetage POS et aliquotage:
    NOTE: Nous utilisons généralement FITC à étiqueter POS pour la quantification des tests de phagocytose, mais d'autres colorants peuvent être utilisés aussi bien en fonction des besoins.
    1. Remettre en suspension 1 10 mg FITC flacon à 2,5 mg / ml de concentration de 0,1 M Na tampon carbonate pH 9,5 en mélangeant 2,6 ml 0,1 M NaHCO 3 pH 8,4 à 1,4 ml 0,1 M Na 2 CO 3 pH 11,5 (tableau 2, des solutions d'achat d'actions). Tourner pendant une heure à température ambiante tout en protégeant de la lumière et de spin pendant 5 min à vitesse maximale pour sédimenter solides FITC non remises en suspension.
    2. Reprendre le culot de POS dans 10 ml de solution de lavage 3 (ou DMEM) et ajouter 2 ml de solution pour 80 FITC yeux. Conservez les restes FITC congelé à -80 ° C. Tourner pendant au moins 1,5 heure à température ambiante. Protéger de la lumière en utilisant une feuille d'aluminium.
    3. Laver POS marqué deux fois en utilisant Wash 3 solution comme décrit dans la section 2.3.4, puis une fois ou deux fois dans du DMEM jusqu'à ce que presque aucune FITC libre est vu dans le surnageant fraction. Remettre en suspension dans du DMEM POS et procédez comme pour POS non marqué pour le comptage et aliquotage (section 2.4).
  6. Utilisation de POS dans les expériences:
    1. POS décongeler à température ambiante, et de les garder dans l'obscurité autant que possible se ils sont marqués par fluorescence. Spin pendant 5 min à 2300 xg à température ambiante. Aspirer le surnageant.
    2. Immédiatement remettre en suspension dans un volume approprié de la solution de dosage comme dicté par l'expérience. En cas de différents moments de défi POS, POS magasin remis en suspension à la température ambiante dans l'obscurité entre les points de temps pendant plusieurs heures.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

La combinaison du gradient de saccharose linéaire et l'ultracentrifugation permet la séparation des différents composants de la suspension de la rétine par densité. Les cellules RPE et les débris plus grande rétiniennes lourds tombent au ou près du bas de la pente (figure 2A). POS plus léger et plus légers des cellules individuelles ou des débris de cellules de la rétine migrent bandes distinctes pour atteindre la moitié supérieure de la pente d'ici la fin de la période de centrifugation. En gardant les...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Trois étapes ou conditions sont cruciales pour une purification optimisé: qualité de gradient coulée et délicate manipulation des tubes de gradient, en gardant les tissus frais et dans l'obscurité jusqu'à l'étape de la collecte, de la force de la secousse d'homogénats rétiniennes pour obtenir l'isolement de POS bon du reste de la PR cellule. Si certaines questions se posent à voir la bande orange correctement, ils sont très probablement due à l'une des trois raisons ci-dessus (voir également le d...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêt financier concurrent.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par l'Agence Nationale de la Recherche (Jeunes Chercheuses / Jeunes Chercheurs à EFN), Fondation Voir et Entendre et la Fondation Bettencourt Schueller (subventions pour jeunes chercheurs à EFN), Centre national de la recherche scientifique (CNRS, poste permanent pour l'EFN) et Le National Eye Institute des National Institutes of Health (R01-EY13295 à EFC). En outre, l'Institut de la Vision est financé par l'Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, Université Pierre et Marie Curie-Paris 6, Centre national de la recherche scientifique et le département de Paris.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Spécifique Matériel/Équipement
Fabricant de dégradé à 2 chambres Fabricantdégradé avec chambres de 30 ml
Tube enpour coulée dégradée
d’agitation magnétique de petite tailleBarre d’agitation adaptée à la chambre du fabricant de dégradé
LampeLampe inactinique pour la dissection dans le Tubes Ultra
Clear foncé 25 x 89 cmBeckman344058Tubes d’ultracentrifugation
PP Oak Ridge TubesNalgene3119-0050Tubes de centrifugation de 30 ml
Optima LE-80KBeckman Coulter365668Ultracentrifugeuse
SW 32Ti Rotor pivotantBeckman Coulter369694Rotor pivotant pour ultracentrifugeuse
Avanti J-26 XPBeckman Coulter393124
Centrifugeuse JA-25.50 RotorBeckman Coulter363058pour centrifugeuse Avanti J-26 XP
FITC Isomère ILife TechnologiesF-1906Colorant
Autre matériau/équipement
Chambre de comptage (comme Neubauer ou Malassez)
Seaux à glace foncés avec couvercles
Balances
Agitateur magnétique et pôle
Microcentrifugeuse
37 ° ; C bain-marie
-80 ° ; C congélateur
Consommables
Blousede laboratoire Santé et sécurité
Gants
Protège-manches Lunettes
protection
Tampons
absorbants Sacs et poubelles
Lames Weck-Prep DissectionLames de rasoir de 60 mm/2,25 pouces de large Plat
en plastique de 15 cm
Feuilles de
15 et 50 mlConsommables courants
Microtubes
Feuille
de silicone de 3 mm de diamètre Barre de sécurité rouge fluorescentde maintienréfrigérée de pour risques biologiquesgaze stérilesTubes de d’aluminium

Références

  1. Strauss, O. The retinal pigment epithelium in visual function. Physiol. Rev. 85 (3), 845-881 (2005).
  2. Young, R. W., Bok, D. Participation of the retinal pigment epithelium in the rod outer segment renewal process. J. Cell Biol. 42 (2), 392-403 (1969).
  3. LaVail, M. M. Rod outer segment disk shedding in rat retina: relationship to cyclic lighting. Science. 194 (4269), 1071-1074 (1976).
  4. Mullen, R. J., LaVail, M. M. Inherited retinal dystrophy: primary defect in pigment epithelium determined with experimental rat chimeras. Science. 192 (4241), 799-801 (1976).
  5. Nandrot, E., et al. Homozygous deletion in the coding sequence of the c-mer gene in RCS rats unravels general mechanisms of physiological cell adhesion and apoptosis. Neurobiol. Dis. 7 (6 pt B), 586-599 (2000).
  6. Loss of synchronized retinal phagocytosis and age-related blindness in mice lacking alphavbeta5 integrin. J. Exp. Med. Nandrot, E. F., Kim, Y., Brodie, S. E., Huang, X., Sheppard, D., Finnemann, S. C. 200 (12), 1539-1545 (2004).
  7. Finnemann, S. C., Rodriguez-Boulan, E. Macrophage and retinal pigment epithelium phagocytosis: apoptotic cells and photoreceptors compete for alphavbeta3 and alphavbeta5 integrins, and protein kinase C regulates alphavbeta5 binding and cytoskeletal linkage. J. Exp. Med. 190 (6), 861-874 (1999).
  8. Savill, J., Dransfield, I., Hogg, N., Haslett, C. Vitronectin receptor-mediated phagocytosis of cells undergoing apoptosis. Nature. 343 (6254), 170-173 (1990).
  9. Ruggiero, L., Connor, M. P., Chen, J., Langen, R., Diurnal Finnemann, S. C. localized exposure of phosphatidylserine by rod outer segment tips in wild-type but not Itgb5-/- or Mfge8-/- mouse retina. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 109 (21), 8145-8148 (2012).
  10. Finnemann, S. C., Bonilha, V. L., Marmorstein, A. D., Rodriguez-Boulan, E. Phagocytosis of rod outer segments by retinal pigment epithelial cells requires alphavbeta5 integrin for binding but not for internalization. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94 (24), 12932-12937 (1997).
  11. Lin, H., Clegg, D. O. Integrin alphavbeta5 participates in the binding of photoreceptor rod outer segments during phagocytosis by cultured human retinal pigment epithelium. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 39 (9), 1703-1712 (1998).
  12. Nandrot, E. F., Anand, M., Almeida, D., Atabai, K., Sheppard, D., Finnemann, S. C. Essential role for MFG-E8 as ligand for alphavbeta5 integrin in diurnal retinal phagocytosis. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 104 (29), 12005-12010 (2007).
  13. Feng, W., Yasumura, D., Matthes, M. T., LaVail, M. M., Vollrath, D. Mertk triggers uptake of photoreceptor outer segments during phagocytosis by cultured retinal pigment epithelial cells. J. Biol. Chem. 277 (19), 17016-17022 (2002).
  14. Finnemann, S. C. Focal adhesion kinase signaling promotes phagocytosis of integrin-bound photoreceptors. EMBO J. 22 (16), 4143-4154 (2003).
  15. Nandrot, E. F., Silva, K. E., Scelfo, C., Finnemann, S. C. Retinal pigment epithelial cells use a MerTK-dependent mechanism to limit the phagocytic particle binding activity of αvβ5 integrin. Biol. Cell. 104 (6), 326-341 (2012).
  16. Ryeom, S. W., Sparrow, J. R., Silverstein, R. L. CD36 participates in the phagocytosis of rod outer segments by retinal pigment epithelium. J. Cell Sci. 109 (2), 387-395 (1996).
  17. Finnemann, S. C., Silverstein, R. L. Differential roles of CD36 and alphavbeta5 integrin in photoreceptor phagocytosis by the retinal pigment epithelium. J. Exp. Med. 194 (9), 1289-1298 (2001).
  18. Sun, M., et al. Light-induced oxidation of photoreceptor outer segment phospholipids generates ligands for CD36-mediated phagocytosis by retinal pigment epithelium: a potential mechanism for modulating outer segment phagocytosis under oxidant stress conditions. J. Biol. Chem. 281 (7), 4222-4230 (2006).
  19. Law, A. L., et al. Annexin A2 regulates phagocytosis of photoreceptor outer segments in the mouse retina. Mol. Biol. Cell. 20 (17), 3896-3904 (2009).
  20. Strick, D. J., Feng, W., Vollrath, D. Mertk drives myosin II redistribution during retinal pigment epithelial phagocytosis. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 50 (5), 2427-2435 (2009).
  21. Gibbs, D., Kitamoto, J., Williams, D. S. Abnormal phagocytosis by retinal pigmented epithelium that lacks myosin VIIa, the Usher syndrome 1B protein. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 100 (11), 6481-6486 (2003).
  22. Gibbs, D., Diemer, T., Khanobdee, K., Hu, J., Bok, D., Williams, D. S. Function of MYO7A in the human RPE and the validity of shaker1 mice as a model for Usher syndrome 1B. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 51 (2), 1130-1135 (2010).
  23. Kennedy, C. J., Rakoczy, P. E., Constable, I. J. Lipofuscin of the retinal pigment epithelium: a review. Eye (Lond.). 9 (Pt 6), 763-771 (1995).
  24. Finnemann, S. C., Leung, L. W., Rodriguez-Boulan, E. The lipofuscin component A2E selectively inhibits phagolysosomal degradation of photoreceptor phospholipid by the retinal pigment epithelium). Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 99 (6), 3842-3847 (2002).
  25. Sugano, E., Tomita, H., Ishiguro, S., Isago, H., Tamai, M. Nitric oxide-induced accumulation of lipofuscin-like materials is caused by inhibition of cathepsin. S. Curr. Eye Res. 31 (7-8), 607-616 (2006).
  26. Vives-Bauza, C., et al. The age lipid A2E and mitochondrial dysfunction synergistically impair phagocytosis by retinal pigment epithelial cells. J. Biol. Chem. 283 (36), 24770-24780 (2008).
  27. Singh, R., et al. Functional analysis of serially expanded human iPS cell-derived RPE cultures. Invest. Ophthalmol. Vis Sci. 54 (10), 6767-6778 (2013).
  28. Lei, L., Tzekov, R., McDowell, J. H., Smith, W. C., Tang, S., Kaushal, S. Formation of lipofuscin-like material in the RPE Cell by different components of rod outer segments. Exp. Eye Res. 112, 57-67 (2013).
  29. Carr, A. J., et al. Protective effects of human iPS-derived retinal pigment epithelium cell transplantation in the retinal dystrophic rat. PLoS One. 4 (12), 8152(2009).
  30. Lustremant, C., et al. Human induced pluripotent stem cells reveal early developmental molecular correlates with a probable Leber congenital amaurosis type I. Cell. Reprogram. 15 (3), 233-246 (2013).
  31. Molday, R. S., Hicks, D., Peripherin Molday, L. A rim-specific membrane protein of rod outer segment discs. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 28 (1), 50-61 (1987).
  32. Chaitin, M. H., Hall, M. O. Defective ingestion of rod outer segments by cultured dystrophic rat pigment epithelial cells. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 24 (7), 812-820 (1983).
  33. Tsang, S. H., et al. Role for the target enzyme in deactivation of photoreceptor G protein in vivo. Science. 282 (5386), 117-121 (1998).
  34. Carr, A. J., et al. Molecular characterization and functional analysis of phagocytosis by human embryonic stem cell-derived RPE cells using a novel human retinal assay. Mol. Vis. 15, 283-295 (2009).
  35. Dun, Y., Vargas, J., Brot, N., Finnemann, S. C. Independent roles of methionine sulfoxide reductase A in mitochondrial ATP synthesis and as antioxidant in retinal pigment epithelial cells. Free Radic. Biol. Med. 65, 1340-1351 (2013).
  36. Xu, Y. T., Wang, Y., Chen, P., Xu, H. F. Age-related maculopathy susceptibility 2 participates in the phagocytosis functions of the retinal pigment epithelium. Int. J. Ophthalmol. 5 (2), 125-132 (2012).
  37. Mao, Y., Finnemann, S. C. Essential diurnal Rac1 activation during retinal phagocytosis requires αvβ5 integrin but not tyrosine kinases focal adhesion kinase or Mer tyrosine kinase. Mol. Biol. Cell. 23 (6), 1104-1114 (2013).
  38. Mao, Y., Finnemann, S. C. Analysis of photoreceptor outer segment phagocytosis by RPE cells in culture. Methods Mol. Biol. 935, 285-295 (2013).
  39. Mazzoni, F., Safa, H., Finnemann, S. C. Understanding photoreceptor outer segment phagocytosis: Use and utility of RPE cells in culture. Exp Eye Res. 126, 51-60 (2014).
  40. Hall, M. O., Abrams, T. Kinetic studies of rod outer segment binding and ingestion by cultured rat RPE cells. Exp. Eye Res. 45 (6), 907-922 (1987).
  41. Bulloj, A., Duan, W., Finnemann, S. C. PI 3-kinase independent role for AKT in F-actin regulation during outer segment phagocytosis by RPE cells. Exp. Eye Res. 113, 9-18 (2013).
  42. Chowers, I., et al. Changes in retinal pigment epithelial gene expression induced by rod outer segment uptake. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 45 (7), 2098-2106 (2004).
  43. Edwards, R. B., Szamier, R. B. Defective phagocytosis of isolated rod outer segments by RCS rat retinal pigment epithelium in culture. Science. 197 (4307), 1001-1003 (1977).
  44. Philp, N. J., Bernstein, M. H. Phagocytosis by retinal pigment epithelium explants in culture. Exp. Eye Res. 33 (1), 47-53 (1981).
  45. Burstyn-Cohen, T., Lew, E. D., Través, P. G., Burrola, P. G., Hash, J. C., Lemke, G. Genetic dissection of TAM receptor-ligand interaction in retinal pigment epithelial cell phagocytosis. Neuron. 76 (6), 1123-1132 (2012).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Étiquettes

Centrifugation sur gradient de saccharosehomogénéisation tissulairequantification de la fluorescencecytométrie en fluximmunotransfertisolation des POSfonction cellulaire de l'EPR
Purification à grande échelle d'origine porcine ou bovine photorécepteur Outer Segments pour phagocytose essais sur les cellules épithélium pigmentaire rétinien
Contactez-nous
Recommander à la bibliothèque

Confidentialité

Conditions d’utilisation

Politiques

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Tous droits réservés.