Method Article

Auto-assemblage de formes bidimensionnelles complexes de l'ADN simple brin Tuiles

DOI:

10.3791/52486

May 8th, 2015

In This Article

Summary

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Le pavage d’ADN est une approche efficace pour fabriquer des nanostructures programmables. Nous décrivons les protocoles permettant de construire des formes bidimensionnelles complexes par l’auto-assemblage de tuiles d’ADN simple brin.

Abstract

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Les méthodes actuelles en nano-architecture de l’ADN ont réussi à concevoir une variété de structures 2D et 3D en utilisant les principes de l’auto-assemblage. Dans cet article, nous décrivons des protocoles détaillés sur la façon de fabriquer des formes 2D sophistiquées grâce à l’auto-assemblage de tuiles d’ADN monocaténaire adressables de manière unique qui agissent comme des pixels moléculaires sur une toile moléculaire. Chaque tuile simple brin (SST) est un brin d’ADN à 42 nucléotides composé de quatre domaines modulaires concaténés qui se lient à quatre voisins lors de l’auto-assemblage. Le canevas moléculaire est une structure rectangulaire auto-assemblée à partir de SST. Une forme 2D complexe prescrite est formée en sélectionnant les pixels moléculaires constitutifs (SST) à partir d’un canevas moléculaire de 310 pixels, puis en soumettant les brins correspondants à un recuit en un seul pot. En raison de la nature modulaire de l’approche SST, nous démontrons l’évolutivité, la polyvalence et la robustesse de cette méthode. Par rapport à d’autres méthodes, la méthode SST permet une plus grande sélection de polymères et de séquences d’information grâce à l’utilisation de brins d’ADN courts conçus et synthétisés de novo.

Introduction

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Acide nucléique précédent travail d'auto-assemblage 1-25 a conduit à la construction réussie d'une variété de structures complexes, y compris l'ADN 2 - 5,8,10 - 13,17,23 ou d'ARN 7,22 3,4,7 périodique, 22 et algorithmique 5 bidimensionnelles treillis, rubans 10,12 et tubes 4,12,13, cristaux 3D 17, 11 et polyèdres finis, formes 2D 7,8. Une méthode particulièrement efficace est échafaudée l'ADN origami, par lequel un seul brin d'échafaudage est plié par de nombreux courts brins de base auxiliaires pour former une forme complexe 9,14 - 16,18 - 21,25.

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Protocol

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1. Séquence ADN Conception

  1. Utilisez un logiciel UNIQUIMER 27 de concevoir une structure SST-finis en spécifiant le nombre de doubles hélices, des longueurs de hélice haut et en bas pour chaque double hélice, et le motif de croisement pour créer une 24H × toile de 28T. Après avoir défini ces paramètres, l'architecture générale (composition de brin et l'agencement de la complémentarité) est illustrée graphiquement dans le programme.
  2. Générer des séquences pour les brins de la structure spécifiée pour répondre à la disposition de la complémentarité et des exigences supplémentaires (le cas échéant). Concevoir des séquences d'ADN....

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Results

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L'auto-assemblage de SST (figure 1) donnera une 24H x 28T rectangle, comme illustré sur la Figure 2. Les séquences d'ADN pour les différents TDDS peuvent être modifiés / optimisé pour permettre l'étiquetage de la streptavidine (figure 3 et 4), la transformation d'un rectangle dans un tube (figure 5), l'auto-assemblage programmable de SST pour former des tubes et des rectangles de différentes tailles (figure 10), et la c.......

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Discussion

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Dans l'étape de formation de la structure, il est important de maintenir une concentration appropriée de cations de magnésium (par ex., 15 mM) dans le mélange de brin d'ADN de nanostructures d'ADN auto-assembler. De même, dans l'étape de caractérisation gel d'agarose / purification, il est important de maintenir une concentration de cations de magnésium approprié (par ex., 10 mM) dans le gel et le tampon du gel de fonctionnement pour retenir les nanostructures d'ADN durant l'.......

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Disclosures

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Les auteurs déclarent des intérêts financiers concurrents.

Acknowledgements

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Ce travail a été financé par le Bureau du Programme de recherche navale Young Investigator N000141110914 Award, Office of Naval Research Grant N000141010827, NSF CAREER Award CCF1054898, New Innovator Award 1DP2OD007292 de directeur des NIH et l'Institut Wyss pour Biologiquement Inspirée Fonds de démarrage Faculté de génie (PY) et Tsinghua de Pékin-Centre pour le Fonds de démarrage sciences de la vie (BW).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Brins d’ADN°TechnologieSection 3.1
SYBR Coloration sûre au gel d’ADNInvitrogenS33102Section 3.4.2
Colonnes de spin d’extraction de gel d’ADN Freeze’N Squeeze BIO-RAD731-6166Section 3.6
Sondes à levier de nitrure tranchant de Bruker SondesAFM Bruker SNL10Section 4.3
Safe Imager 2.0 Transilluminateur de lumière bleueInvitrogenG6600Section 3.6
Centrifugeuse 5430REppendorf5428 000.414Section 3.6
Microscope électronique à transmission  ;JeolJem 1400Section 7.4
Multimode 8VeecoSection 4
Typhoon FLA 9000 Scanner laserGE Heathcare Life Sciences28-9558-08Section 3.5
Eau distillée ultrapureInvitrogen10977-023Section 3.7.1
Disque de micaSPI Supplies12001-26-2Section 4.1
Disque de montage en acierTed Pella, Inc.16218Section 4.1
grille en cuivre revêtue de carbone pourTEM Microscopie électronique SciencesFCF400-CuSection 7.2
pince à épilerDumont0203-N5AC-POSection 7.31
système de décharge lumineuseQuorum TechnologiesK100XSection 7.2
Moteur d’ADN Tetrad 2 Thermocycleur PeltierBIO-RADPTC&ndash ; 0240GSection 3.3
Owl Easycast B2 Mini Gel ElectrophoresisSystems ThermoScientificB2Section 3.4.3
Seekam LE Agarose 500GLonza50004Section 3.4.1
GeneRuler 1kb Plus Échelle d’ADN, prête à l’emploi 75-20000bpThermoScientificSM1333Section 3.4.4
Nanodrop 2000c Spectrophotomètre UV-visThermoScientificParagraphe 3.7
0,2 um filtreCorning Inc.431219Section 7.1.2
ADN intégrée

References

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  1. Seeman, N. C. Nucleic acid junctions and lattices. J. Theor. Biol. 99 (2), 237-247 (1982).
  2. Fu, T. J., Seeman, N. C. DNA double-crossover molecules. Biochemistry. 32 (13), 3211-3220 (1993).
  3. Winfree, E., Liu, F., Wenzler, L. A., Seeman, N. C.

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Single stranded DNA TilesDNA Nanostructure Self assemblyMolecular Canvas AssemblyNative Agarose Gel ElectrophoresisAtomic Force Microscopy ImagingDNA Strand PurificationThermal Cycler AnnealingEdge Protector DesignDomain Substitution MethodDNA Concentration Measurement

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