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Article de méthode

Chitosane / ARN interférant nanoparticules Mediated Gene Silencing dans la maladie vectorielle larves de moustiques

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DOI :

10.3791/52523

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25 mars 2015

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Nous décrivons ici une procédure pour inhiber la fonction des gènes chez les moustiques vecteurs de la maladie grâce à l'utilisation de chitosane / interférer nanoparticules d'ARN qui sont ingérés par les larves.

Résumé

moustiques vecteurs infligent des souffrances plus humain que ne importe quel autre organisme - et tuent plus d'un million de personnes chaque année. Les projets sur le génome de moustiques ont facilité la recherche dans de nouvelles facettes de la biologie des moustiques, y compris les études génétiques fonctionnels dans le principal vecteur africaine du paludisme Anopheles gambiae et de la dengue et le vecteur de la fièvre jaune Aedes aegypti. ARN de (RNAi-) le silençage génique médiation a été utilisée pour cibler des gènes d'intérêt dans ces deux espèces de moustiques vecteurs de maladies. Ici, nous décrivons une procédure pour la préparation de chitosane / ARN interférant nanoparticules qui sont combinés avec de la nourriture et ingérés par les larves. Ceci, à haut débit techniquement simple et relativement peu coûteux méthodologie, qui est compatible avec de longs ARN double brin (ARNdb) ou de petits ARN interférents (siARN) de molécules, a été utilisé pour le knock-down réussi d'un certain nombre de différents gènes dans A. gambiae et A. aegyptilarves. Après tétées larvaires, démontable, qui est vérifiée par qRT-PCR ou hybridation in situ, peuvent persister au moins jusqu'à la fin du stade de pupe. Cette méthode peut se appliquer à une grande variété de moustique et d'autres espèces d'insectes, y compris les parasites agricoles, ainsi que d'autres organismes non-modèles. En plus de son utilité dans le laboratoire de recherche, à l'avenir, le chitosane, un polymère peu coûteux, non toxique et biodégradable, susceptibles d'être utilisés dans le domaine.

Introduction

moustiques vecteurs de l'alimentation sanguine des genres anophèles et Aedine transmettent agents responsables de plusieurs des pires fléaux de l'humanité pathogènes. On estime que 3,4 milliards de personnes sont à risque de contracter le paludisme, qui est responsable de plus d'un demi-million de décès chaque année dans le monde entier. les résultats de la lutte contre le paludisme de l'infection par Plasmodium sp., des parasites qui sont transmis à l'homme par les piqûres de moustiques infectés du genre Anopheles, y compris le principal vecteur africain Anopheles gambiae (

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Protocole

1. Mosquito espèces et l'élevage

  1. Maintenir A. gambiae G3 et A. souches aegypti Liverpool IB12 (utilisés dans les études représentatives ci-dessous) ou d'autres souches d'intérêt conformément à la pratique de laboratoire standard ou comme décrit précédemment 23,24.

2. ARNdb et siRNA Conception et production

  1. Concevoir des amorces pour construire des modèles de longs ARNdb spécifiques du gène d'intérêt. Utilisez l'outil E-ARNi 25. Produire ARNdb selon la méthode de choix ou 19 comme décrit précédemment.
    1. Pour un témoin négatif,....

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Résultats

A. gambiae:

Des nanoparticules de chitosan / ARNdb sont formées grâce à l'interaction électrostatique entre les groupes amino du chitosane et les groupements phosphate de l'ARN double brin. L'efficacité de l'incorporation dans l'ARN double brin nanoparticules est généralement supérieure à 90% telle que mesurée par l'appauvrissement de l'ARN double brin à partir de la solution. Atomiques images de microscopie de force montrent que le.......

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Discussion

Le / interférer méthodologie de nanoparticules d'ARN de chitosane décrit ici a été utilisé pour cibler efficacement les gènes au cours du développement larvaire dans A. gambiae (figures 2, 3) et A. aegypti (figures 4, 5, 6 et aux tableaux 1, 2). Des nanoparticules de chitosan peuvent être préparées avec soit longue ou siRNA ARN double brin, qui ont tous deux été utilisés avec succès dans les moustiques comme en témoignent les résultats représentatifs décrits ici. S.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Le financement de la station d’expérimentation agricole du Kansas et du K-State Arthropod Genomics Center à KYZ a soutenu le développement original du silençage génique médié par le chitosan/dsRNA chez A. gambiae19. Les travaux sur A. gambiae décrits ici ont été soutenus en partie par le R01-AI095842 du NIH/NIAID à KM. Le développement du silençage génique médié par le chitosan/siRNA chez A. aegypti20,21 a été soutenu par le NIH/NIAID Award R01-AI081795 à MDS. Le contenu de cette étude relève de la seule responsabilité des auteurs et ne représente pas nécessairement les points de vue officiels du NIH.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
RaininPR20de 0,02 mlpour la remise en suspension d’ARN interférent
Pipette RaininPR2000,2 mlpour la remise en suspension d’ARN interférent et la préparation d’ARN/nanoparticules interférents
Tube gradué de 0,5 ml.Fischer Scientific05-408-120pour l’aliquotage de l’ARN interférent en suspension
1 ml pipetteRaininPR1000pour la remise en suspension de l’ARN interférent et la préparation d’ARN/nanoparticules interférents
1,5 ml tube gradué.Fischer Scientific05-408-046pour la préparation d’ARN/nanoparticules interférentes
1M Acétate de sodium, pH 4,5TEKnovaS0299pour préparer un tampon d’acétate
de sodium Acide acétique, AIRSTAR. ACS, USP, FCC GradeBDHVWR BDH3092-500MLPpour préparer le tampon d’acétate de sodium
Agarose Genetic Technology GradeMP Biomedicals LLC.800668pour enrober d’ARN/nanoparticules interférents préparés
CentrifugeuseEppendorf AG5415Dpour granuler ARN/nanoparticules interférents
Chitosane, à partir de carapaces de crevettesSigma-AldrichC3646-25Gà combiner avec de l’ARN interférent pour la préparation d’ARN/nanoparticules interférents
Levure sècheUniversal Food CorpNApour préparer de la nourriture pour larves de moustiques avec de l’ARN interférent/ nanoparticules
Outil E-RNAiCentre allemand de recherche sur le cancerNApour la conception de l’ARNdb ; nourriture pour poissons rouges http://www.dkfz.de/signaling/e-rnai3//
WardleyGoldfish FLAKE FOODpour préparer de la nourriture pour larves de moustiques avec des ARN/nanoparticules interférents
Bain-marie chauffé ThermoScientific51221048pour chauffer les ARN/nanoparticules interférents à 55oC
Glacenon applicablene s’applique pas à ladécongélation de l’ARN interférent et à la préparation d’ARN/nanoparticules
[en-tête]
Seau à glaceFisher Scientific02-591-44pour le stockage de la glace utilisée pendant la procédure poudre de
foieMP Biomedicals LLC.900396pour nourrir les larves de moustiques après un traitement ARN/nanoparticules interférents
Four à micro-ondesUne variété de fournisseursnon applicablespour préparer une solution d’agarose à 2 %
pétride (100 x 15 mm)Fischer Scientific875713chambre d’alimentation en ARN/nanoparticules interférents pour les larves
PH-mètreMettler ToledoS220pour la préparation de tampons
Lame de rasoirFischer Scientific12-640pour diviser la pastille d’ARN/nanoparticules interférente pour l’alimentation
siRNAThermo Scientific/Dharmaconcustompour la préparation de siRNA/nanoparticules
Sodium Sulfate, anhydre (Na2SO4)BDH/distribué par VWRVWR BDH0302-500Gpour préparer une solution de sulfate de sodium de 50 mM dans laquelle l’ARN interférent sera remise en suspension
ThermomètreVWR61066-046pour mesurer la température du bain-marie
Picsà dents VWR470146-908pour agiter pendant la préparation et la coupe des aliments ARN/nanoparticules interférentes Gel de préparation et de coupe des aliments
Congélateur ultra-basUne variété de fournisseursnon applicablespour le stockage des aliquotes d’ARN interférents et des ARN/nanoparticules interférents à -80oC
Mélangeur vortexFischer Scientific02-216-108pour la préparation de chitosane/ARN interférent
Poids papierFischer ScientificNC9798735pour diviser l’ARN/nanoparticules interférents pour l’alimentation
Pipette de, interférents

Références

  1. Malaria. , World Health Organization. http://www.who.int/topics/malaria/en (2014).
  2. Dengue. , Malaria Centers for Disease Control and Prevention. http://www.cdc.gov/dengue/ (2014).
  3. Knipling, E. F., et al. Genetic control of insects of public health importance. Bulletin of the World Health Organizat....

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Réimpressions et autorisations

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