Employant numérique Droplet PCR pour détecter des mutations BRAF V600E dans de paraffine standard de référence lignées cellulaires fixés au formol

Résumé

Le but de cette vidéo est de montrer comment effectuer une extraction d'ADN automatisée à partir des lignes de formol paraffine (FFPE) référence standards cellulaires et gouttelettes numérique PCR (ddPCR) analyse pour détecter des mutations rares dans un cadre clinique. Détecter des mutations dans des échantillons FFPE démontre l'utilité clinique de ddPCR dans les échantillons FFPE.

Résumé

ddPCR est une méthode de PCR très sensible qui utilise un système d’émulsion eau-huile. À l’aide d’un générateur de gouttelettes, un échantillon d’acide nucléique extrait est divisé en ~20 000 gouttelettes d’eau dans l’huile de taille nanométrique, et l’amplification par PCR se produit dans des gouttelettes individuelles. L’approche ddPCR consiste à identifier les mutations de séquence, les altérations du nombre de copies et les réarrangements structurels sélectionnés impliquant des gènes ciblés. Ici, nous démontrons l’utilisation de la ddPCR comme une technique puissante pour quantifier avec précision les mutations rares de BRAF V600E dans les lignées cellulaires standard de référence FFPE, ce qui est utile pour identifier les personnes atteintes de cancer. En conclusion, la technique ddPCR offre la possibilité de profiler avec précision les mutations rares spécifiques dans différents gènes dans divers types d’échantillons FFPE.

Introduction

L'accumulation de mutations génétiques dans les gènes régulateurs clés modifie la programmation de la cellule normale, comme la prolifération cellulaire, la différenciation et la survie, menant au cancer ^1. La voie de RAS-RAF kinase-MAP médie la réponse cellulaire aux signaux de croissance. Mutations oncogènes BRAF peuvent résulter de mutations du pilote dans le gène BRAF, qui peuvent causer l'oncoprotéine BRAF pour devenir hyperactive ^2. Des mutations dans le gène BRAF se traduisent également par la signalisation en aval par l'intermédiaire d'hyperactivité de MEK et ERK ^3, qui, à son tour, conduit à une croissance cellulaire excessive et la prolifération indépendamment de la régulation de la croissance médiée par le facteur ^6/4.

Plusieurs outils sont disponibles pour les mutations de l'ADN profilage, tels que quantitatives en temps réel des mutations BRAF V600E dans de formol, inclus en paraffine (FFPE) référence des lignes de cellules standard par ddPCR. ddPCR est une méthode basée sur la PCR pour la quantification absolue-offrant une plus grande précision par rapport à quantitative en temps réel classique de PCR (qPCR) ^7,8. ddPCR fournit également une plus grande puissance et de la précision de la résolution de la détection des mutations rares dans des matrices d'ADN, permettant recherche sur le cancer et le diagnostic plus informative ^9. Des avantages supplémentaires de ddPCR sur qPCR conventionnelle incluent sa sensibilité accrue et la précision lors de l'étude des nombres de copies bas de modèle ^10-12. Ici, un protocole d'extraction automatique d'ADN à partir de lignées de cellules standards de référence FFPE, suivie par détermination de la présence ou de l'absence de mutations BRAF V600E par ddPCR est démontrée. L'utilisation du logiciel d'analyse de données et une représentation graphique des résultats sont également décrits. L'ensemble de la procédure est relativement simple et dépend du nombre d'échantillons à être profilées et le nombre de machines PCR et ddPCR classiques disponibles totalement.

Le protocole suivant décrit les procédures standard pour BR Des lignées de cellules positives AF-V600E FFPE référence standards (HD598, HD593, HD617, HD273 et de type sauvage (WT)) est réalisée dans un instrument entièrement automatisé en utilisant le système de préparation tissulaire (TPS) protocole. Par la suite, des échantillons d'ADN isolés sont analysés pour la présence de mutations BRAF V600E utilisant le système ddPCR. Analyse de mutation ciblée est réalisée après que tous les échantillons ont été profilée et les données ont été chargées dans le logiciel d'analyse des données. Selon le nombre d'échantillons / groupes étudiés, l'analyse des données peut exiger d'une à plusieurs heures. Le composant expérimentale de la méthode nécessite une précision dans la manipulation de l'ADN etrologique Pipettes et pipettes, une vidéo JoVE enseignement des sciences en expliquant plus sur sur le contexte de pipetage "> pipetage en plaques à 96 puits, tandis que l'analyse des données est effectuée en utilisant le logiciel.

Protocole

1. extraction d'ADN à partir de la FFPE standard de référence des lignées cellulaires

Remarque: Pour cette procédure, l'extraction d'ADN a été réalisée à partir de lignées de cellules standards de référence FFPE (HD598, HD593, HD617, HD273 et de type sauvage (WT)) en utilisant le kit d'isolement d'ADN de tissu FFPE de la manière décrite dans le protocole ci-dessous. Extraction de l'ADN automatisé a été réalisé en suivant les instructions du fabricant pour l'isolement de l'ADN total.

1. En utilisant un microtome et le bloc FFPE original, préparer de nouvelles sections manuellement avant l'extraction et l'analyse de l'ADN, selon les procédures établies. Assurez-vous que l'entrée d'échantillon pour la section (s) de tissu analysé ne dépasse pas une épaisseur totale combinée de 10 um et que la surface spécifique ne dépasse pas 600 mm ² pour un seul article.

1.2 protocole TPS

Remarque: Les volumes indiqués dans le tableau 1 correspondent au minimum requis pour traiter les 48 échantillons, et la procédureindiqué est en conformité avec les lignes directrices de TPS. Avant de commencer l'expérience installer les échantillons FFPE dans l'e-tubes par centrifugation à 600 xg, pour éviter la perte des échantillons durant le programme automatisé.

1. Allumez l'instrument et l'ordinateur automatisé d'isolement d'ADN. Ouvrez le logiciel de commande Exécuter et insérez un plateau de chargement automatique dans la zone pont de chargement TPS.
2. Distribuer des réactifs dans leurs creux correspondants comme représenté sur la figure 1.
   1. Placez les 4 échantillons (BRAF WT, BRAF V600E 50%, 5% et 1%) dans les racks de support de l'échantillon.
   2. Placez les boîtes de pointe dans les creux des colonnes 2 et 3 et de vérifier les conseils de la présence de plus d'un filtre par la pointe, ce qui annulerait la course.
   3. Assurer le bon mélange du tampon de lyse et tampon de lavage en les inversant 3-5 fois et de les charger dans les creux respectifs de la colonne 4 (Figure 1).
   4. Après avoir inversé pour quelques heures ou vort légèreExing, charger le tampon d'élution, des billes magnétiques, et le tampon de la FFPE dans les petits creux dans la colonne 5, en laissant 1 emplacement vide où indiquée (Figure 1, Tableau 1).
   5. Chargez une plaque de puits profond de 2 ml (DWP) sur le support de plaque (Figure 1).
3. Effectuez les dernières étapes suivantes avant de commencer une course:
   1. Déboucher tous les tubes et les creux de réactifs. Assurez-vous que la capacité suffisante est disponible dans la bouteille de déchets liquides. Assurez-vous que la bouteille de déchets solides est vide et munie d'un sac de Biohazard. Assurez-vous que la plaque pointe d'éjection est centré dans l'ensemble des déchets.
   2. Fermez le capot avant.
4. Démarrez le logiciel. Ouvrez le fichier NA_Prep_Main_MLSTARlet.med.
5. Cliquez sur "Démarrer". L'état de l'instrument passe du ralenti à la course.
6. Entrez le nombre d'échantillons pour cette course. Choisissez la méthode souhaitée pour cette course (ADN = 0). Entrez la position du premier vol hauteume pointe, la sélection de "1" si tous les bacs sont pleins. Entrez la position de la première pointe de volume standard, sélectionner "1" si tous les bacs sont pleins.
   Remarque: L'instrument sera alors courir à travers étapes automatisées, sans intervention de l'utilisateur. Un flux de travail détaillé est présenté à la figure 2. Une fois que l'expérience est terminée, les déchets de réactif et des conseils sont injectés dans l'ensemble des déchets.
7. Quantifier l'ADN génomique purifié à l'aide d'un procédé fluorimétrique.
   Note: Des échantillons d'ADN qui contiennent une concentration minimale de 3,3 ng / ul sont soumis à une analyse ddPCR (section 2).

2. mutation de l'ADN Profilage: Protocole ddPCR

Remarque: Le protocole de mutation de l'ADN profilage se compose de 3 grandes étapes: 1) la génération des gouttelettes, 2) l'amplification par PCR conventionnelle, 3) la lecture des gouttelettes et 4) mutation de l'ADN profilage.

2.1. Génération Droplet

Remarque: ddPCR supermix estrecommandé pour ddPCR, que ce mélange contient les réactifs nécessaires pour la production de gouttelettes.

1. Pour éviter la contamination, suivre les précautions standard, telles que le port de gants, en utilisant une hotte propre PCR, pipettes propres, et des tubes à faible liaison aux protéines.
2. Assurez-vous que la concentration minimale de l'échantillon d'ADN génomique humain est de 3,3 ng / ul. Note: La quantité de concentration de l'échantillon d'ADN purifiée varie en fonction de l'analyse de détection de fréquence de mutation%.
3. Assembler mélanges de réaction dans des plaques de PCR à 96 puits. Décongeler et équilibrer les composants de la réaction à la température ambiante. Préparer les réactions PCR en combinant 2X ddPCR supermix (10 pi) et 20 amorces (avant et arrière, 900 nM) et d'une sonde (250 nM) pour chaque échantillon d'ADN purifié (66ng / 2 pi) faire jusqu'à 20 pi avec de l'eau distillée (comme par le protocole de générateur de gouttelettes)
4. Vortexer le mélange soigneusement pour assurer l'homogénéité et centrifuger brièvement pour rassembler le contenu au fond du tube avant la distribution. Charge & # 20181; l sur la cartouche pour la formation de gouttelettes.
5. Le fonctionnement du générateur de gouttelettes, selon le protocole recommandé par le fabricant
   1. Insérer la cartouche dans le support avec l'encoche de la cartouche positionnée sur le côté supérieur gauche de la porte. Ajouter 20 pi de mélange réactionnel contenant des échantillons dans le milieu, et 70 ul d'huile de générateur dans les puits de fond.
   2. Attacher le joint d'étanchéité dans la partie supérieure de la cartouche. Assurez-vous que le joint soit correctement accroché sur les deux extrémités du support; Sinon, la pression suffisante pour la génération de gouttelettes ne sera pas atteint.
   3. Ouvrez le générateur de gouttelettes en appuyant sur le bouton vert sur le dessus de l'appareil et insérez la cartouche. Lorsque le titulaire est dans la bonne position, à la fois la puissance (de gauche à droite) et titulaire (au milieu à droite) voyants sont au vert.
   4. Appuyez sur le bouton en haut sur l'instrument à nouveau pour fermer la porte et d'initier la génération de gouttelettes. Remarque: Après avoir appuyé sur le button, a positions multiples se sur les puits de sortie, dessin pétrole et des échantillons à travers les canaux microfluidiques, où les gouttelettes sont créés. Gouttelettes se jettent dans la gouttelette bien, où ils accumulent. L'indicateur de gouttelettes de lumière (à droite) clignote en vert après 10 secondes pour indiquer que la génération de gouttelettes est en cours.
   5. Lorsque la génération des gouttelettes est terminée, tous les 3 voyants changent au vert solide; ouvrir la porte en appuyant sur le bouton, et retirez le support de l'unité. Retirez le joint du support jetable et jetez-le. Remarque: Les meilleurs puits de la cartouche contiennent des gouttelettes, et les puits moyenne et inférieure sont presque vides, avec une petite quantité d'huile résiduelle.

2.2. Préparation pour la PCR

1. Pour chaque échantillon, pipette à 40 ul du contenu de gouttelettes à partir du haut et les cartouches dans un seul puits d'une plaque à 96 puits PCR recommandé comme indiqué dans le protocole de l'instrument par le fabricant. Nonte: aide d'une pipette multi-canal est idéal pour transférer les gouttelettes des émulsions. Aspiration lente et douce de gouttelettes est recommandée afin de minimiser le cisaillement de gouttelettes pendant les transferts.
2. Sceller la plaque PCR avec du papier immédiatement après le transfert de gouttelettes pour éviter l'évaporation. Utilisation perforable joints de plaques de feuille qui sont compatibles avec la plaque PCR et scellant les aiguilles dans le lecteur de gouttelettes. Suivez les instructions dans le manuel d'instruction de scellant pour plaques PCR.
3. Régler la température de la plaque de scellement à 180 ° C et le temps de 5 sec.
4. Appuyez sur la flèche pour ouvrir la porte du bac. Placez le bloc de support sur le plateau avec le côté 96 puits vers le haut. Placer la plaque à 96 puits sur le bloc de support et de sorte que tous les puits de la plaque sont alignés avec le bloc de support.
5. Recouvrir la plaque de 96 puits avec 1 feuille de papier d'aluminium percé. Une fois la plaque 96 puits est fixé sur le bloc de support et couvert avec le papier d'aluminium percé, appuyez sur le bouton d'étanchéité. Le plateau se refermeet la chaleur étanchéité va initier.
6. Lorsque le thermoscellage est terminée, la porte ouvre automatiquement; retirer la plaque du bloc thermique pour le cyclage thermique, puis retirez le bloc thermique.
7. Veiller à ce que tous les puits de la plaque sont scellés en vérifiant que des dépressions dans la feuille sont facilement visibles sur chaque puits. Une fois scellé, la plaque est prêt pour le cyclage thermique.
8. Une fois gouttelettes sont supprimés, appuyez sur les loquets sur le support de la cartouche pour l'ouvrir. Retirez la cartouche vide et le jeter.
9. Effectuer une amplification par PCR conventionnelle en suivant les paramètres détaillés dans le tableau 2.

2.3 lecture Droplet (selon le protocole recommandé par le fabricant)

Note: Après amplification par PCR de la cible d'acide nucléique dans les gouttelettes, l'appareil de lecteur de gouttelettes analyse chaque gouttelette individuellement en utilisant un système de détection 2-couleur ^13. Nous généralement configuré pour détecter un FAMd VIC fluorophores rapporteurs.

1. Cliquez sur "système de rinçage» pour amorcer le lecteur de gouttelettes et de le rendre prêt pour l'analyse ddPCR.
2. Chargez la plaque dans le lecteur de gouttelettes et cliquez sur "Démarrer". Le lecteur de gouttelettes aspire chaque échantillon, singulates les gouttelettes et les flux en file indienne devant un détecteur 2-couleur. Le détecteur lit les gouttelettes d'énumérer les échantillons positifs et négatifs.
3. Lorsque gouttelettes lecture est terminée, ouvrez la porte et retirez le support de plaque de l'unité. Retirer la plaque PCR 96 puits de la porte et le jeter.
4. Pour un bon entretien, remplacer l'huile de lecteur de gouttelettes et vider la poubelle, au besoin. Ajouter 50 ml d'eau de Javel à 10% à la bouteille de déchets pour empêcher la croissance microbienne.

2.4 mutation de l'ADN profilage (selon le protocole recommandé par le fabricant)

Remarque: gouttelettes PCR-positives et PCR-négatifs sont comptés pour fournir quantific absolueation des cibles mutations BRAF V600E ADN sous forme numérique, en utilisant un logiciel d'analyse de données.

1. Cliquez sur Configuration pour entrer des informations sur les échantillons, des essais et des expériences.
2. Dans la fenêtre de configuration, charger une plaque (filename.qlp), puis cliquez sur Analyser pour ouvrir et analyser les données. L'interface d'analyse de données est séparé en trois fenêtres: Résultats Tableau, le sélecteur de puits et des données traitées / affichage graphique.
3. Dans la fenêtre données traitées, les données de concentration pour chaque cible apparaissent dans les puits dans le plan de la plaque et sont indiquées dans le tableau des résultats. Cliquez Concentration de visualiser les données dans les parcelles de concentration.

Résultats

Pour notre analyse ddPCR, nous avons étudié les références mutation FFPE lignes de cellules standard V600E BRAF. Le lecteur de gouttelettes se connecte à un ordinateur portable un logiciel d'analyse de données informatique de fonctionnement. Chaque gouttelette individuelle est définie sur la base de l'amplitude de fluorescence comme étant soit positif ou négatif. Le logiciel fourni par le fabricant permet également à un seuil défini par l'utilisateur à saisir pour définir le seuil entre les gouttele...

Discussion

Ici, nous mettons en évidence l'applicabilité de ddPCR et l'isolement de l'ADN à partir d'échantillons de lignées cellulaires standards de référence FFPE une évaluation spécifique de la mutation du gène. Dans cette étude, TPS méthode d'isolement d'ADN automatisé est utilisé qui peut être facilement adapté, automatisé, et peut accueillir jusqu'à 48 échantillons différents simultanément, permettant de plus grandes expériences à grande échelle et une plus faible variabilité. Une des limites de l...

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Hamilton MICROLAB STARlet IVD Instrument	automatisé d’isolement d’ADN
Siemens 10701001 QX200 Droplet Generator  ;	Bio-Rad	772BR1119
QX200 Lecteur de gouttelettes	Bio-Rad	771BR1497
Machine PCR conventionnelle capable de réglage		621BR17718
PX1 Scelleuse de plaques PCR	Bio-Rad	770BR1575
Logiciel QuantaSoft	Bio-Rad
;
Réactifs de préparation des tissus VERSANT Boîte 1	Siemens	10632398
VERSANT Réactifs de préparation des tissus Boîte 1		10632399
CO-RE Analyse
des mutations
ddPCR Supermix  ;	Bio-Rad  ;	BR186-3010	à concentration 2X
;	Bio-Rad  ;	BR186-4008
Huile pour générateur de gouttelettes	Bio-Rad  ;	BR-186-3005
Joint	Bio-Rad  ;	BR186-3006
Huile de lecteur de gouttelettes	Bio-Rad  ;	Réf. BR-186-3004

du temps de rampe Kit d’isolement d’ADN Astuces Siemens ddPCR Cartouche DG8