Article de méthode

La collecte du lait dans le rat en utilisant tubes capillaires et estimation de la teneur du lait en matières grasses en Creamatocrit

DOI :

10.3791/53476

⸱

16 décembre 2015

 ,  , 
1Department of Biochemistry and Molecular Biology, Cumming School of Medicine, University of Calgary, 2Faculty of Kinesiology, University of Calgary

Dans cet article

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Le lait est une source primaire de nutrition pour le nouveau-né. L’analyse des composants du lait peut donner un aperçu des facteurs maternels qui affectent la santé de la progéniture. Ce protocole décrit une méthode manuelle de prélèvement d’échantillons de lait sur le rat allaitant, qui peut ensuite être utilisé pour une analyse ultérieure en aval.

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Le lait, en tant que seule source de nutrition pour le mammifère nouveau-né, fournit les nutriments et l’énergie nécessaires à la croissance et au développement de la progéniture. Il contient également un grand nombre de composés bioactifs qui affectent grandement le développement du nouveau-né. L’analyse des composants du lait aidera à élucider les facteurs clés qui lient le métabolisme et la santé maternels à la croissance et au développement de la progéniture. Le rat de laboratoire représente un organisme modèle populaire pour les études maternelles, et le lait de rat peut être utilisé pour examiner l’effet de diverses interventions physiologiques, nutritionnelles et pharmacologiques maternelles sur les composants du lait, ce qui peut ensuite avoir un impact sur la santé de la progéniture. Ici, une méthode simple de collecte manuelle du lait du rat allaitant, qui peut être effectuée par un seul enquêteur, ne nécessite pas d’équipement spécialisé d’aspiration ou d’aspiration et fournit suffisamment de lait pour une analyse ultérieure en aval est décrite. Une méthode d’estimation de la teneur en matière grasse du lait en mesurant le pourcentage de crème dans l’échantillon de lait, connue sous le nom de creamatocritre, est également présentée. Ces méthodes peuvent finalement être utilisées pour mieux comprendre la santé mère-enfant et pour élucider les facteurs maternels qui sont impliqués dans la croissance et le développement appropriés de la progéniture.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Le lait est la seule source de nutrition pour les mammifères nouveau-nés, la fourniture d'énergie et de nutriments pour la croissance du nourrisson et le développement 1,2. Bien que le lait se compose principalement de cellules, des lipides et des protéines 1, il contient également une pléthore de composés bioactifs qui modulent le développement du début de la vie de la progéniture y compris des enzymes, des glucides, des hormones, des anticorps, des facteurs de croissance, des cytokines, des exosomes, des microvésicules et de petits ARN tels comme microARN 1,2. Le rôle fondamental du lait maternel dans l'établissement de la progéniture immunitaire et la santé intestinale 3, couplée avec la preuve que allaités nourrissons sont moins sensibles à la maladie 2, met en évidence l'importance d'identifier les constituants du lait associés aux processus de la maladie en début de vie et les mécanismes moléculaires impliqués dans leurs actions. Le rat est le développement d'un modèle populaire pour étudier l'effet de divers nutritionnelle, physiologique, et les interventions chimiques sur débutdéveloppement -life 4. L'analyse du lait de rat peut donc fournir de nouvelles précisions sur la santé maternelle et la progéniture.

Avancées scientifiques actuelles prévoient maintenant accroître les possibilités d'enquêtes approfondies sur les effets des constituants du lait spécifiques sur la santé et la maladie. Par exemple, le séquençage des profils bactériennes du lait a élucidé leur rôle dans la colonisation intestinale au début de l'intestin du nourrisson 5, masse analyse par spectrométrie d'oligosaccharides de lait ont donné un aperçu de la modification des profils d'oligosaccharides de lait par l'alimentation maternelle 6, et de séquençage profond des microARN sécrétée dans les globules de lait maternel de graisse met en évidence les rôles possibles dans la transcription des gènes, le métabolisme et la fonction immunitaire 7.

Des modèles de rats représentent l'un des organismes modèles les plus populaires utilisés dans les études maternels 8,9. Un avantage est leur période de gestation et de lactation courts, qui ne durent que approximatEly 21 jours chacune; par conséquent, le temps total depuis le début de la grossesse de lactation représente un court laps de temps dans lequel les données de valeur peuvent être générés. La plus grande taille de rats par rapport à des souris, dans le contexte de la collecte du lait, peut fournir un avantage significatif par rapport au volume de lait et de la facilité de collecte du lait; la production de lait chez la souris, par exemple, semble dépendre du poids total du corps avec des souris lourds produisant plus de lait 10.

Ici, une description générale pour la collecte manuelle de lait de rates allaitantes est fourni. Ce protocole nécessite un minimum d'équipement, est non invasif, peu coûteux, et peut être utilisé pour collecter des volumes adéquats de lait pour d'autres analyses en aval. En bref, le barrage est anesthésié avec de l'isoflurane, la descente du lait est stimulée par l'ocytocine, et le lait est recueilli dans des tubes capillaires par l'intermédiaire de l'expression manuelle du lait. Enfin, comme deux composantes majeures de lait sont grasses et des protéines, une brève description de l'estimation de la teneur en graisse du lait en utilisant des mesures de creamatocrit 11 et la quantification de la concentration totale en protéines en utilisant un dosage de protéine standard est présenté.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ce protocole a été approuvé par l'Université de Calgary Comité de protection des animaux et conforme à la Guide pour le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire.

1. Dam séparée de Offspring

  1. Séparer le barrage de sa progéniture pour un minimum de 5 min avant la traite 12.
    NOTE: Le barrage peut traire jusqu'à 5-6 h après la séparation 1,6,13, mais les périodes de séparation de plus de 4 heures peuvent modifier la composition du lait 14. Alors que le temps de la séparation ne semble pas influer sur le volume de collecte de lait 12, il est conseillé que le temps de la séparation cohérente être maintenue pendant toute l'étude. La composition du lait peut changer au cours de l'allaitement 15, donc il faut essayer de garder le jour de la collecte du lait conforme. La production maximale de lait est suggéré de se produire le jour de lactation 14 12.
  2. En utilisant une chambre de réchauffement, assurer les chiots sont en mesure de maintenir tempéra du corps proprere sans la présence de leur mère pendant la durée de la procédure de traite.
    NOTE: Dans l'étude présentée ci-dessous, la traite a été effectuée au moment du sevrage, lorsque les barrages étaient âgés d'environ 22 semaines et vieux les descendants 21 jours, donc pas de chambre de réchauffement a été utilisé.

2. Mise en place et préparation

  1. Recueillir tous les documents nécessaires à la procédure de traite.
    REMARQUE: Tous les matériaux peuvent être trouvés dans le matériel et l'équipement table.
  2. Placez un coussin chauffant sur le banc où aura lieu la traite et de couvrir le tampon avec un banc absorbante sous-pad.
  3. Mettre en place le système anesthésique. Assurez-vous que le système dispose de l'oxygène et de l'isoflurane avant début suffisante. Attacher le masque anesthésique qui sera utilisé pour l'anesthésie induction initiale de la machine. Placez le masque qui sera utilisé pour l'entretien de l'anesthésie à proximité si différente de celle du masque anesthésique initial.
  4. Fixez une aiguille 25 G à une seringue de 1 ml de l'ocytocineinjection en utilisant une technique aseptique.
  5. Mettez le coussin chauffant afin que la température du corps de la mère est maintenue au cours de la procédure de traite. REMARQUE: Surveiller la température du coussin chauffant pour assurer le pavé ne devienne pas trop chaud et causer des brûlures. En variante, utiliser une source de chaleur, telle qu'une table d'opération chauffée, qui peut être réglé à une température donnée.

3. Anesthésier le barrage à l'isoflurane

  1. Ouvrez le réservoir d'oxygène et tourner le débit à 1 L (1000 cc) par minute. Tournez sur l'écoulement de l'isoflurane et mettre à 5%. ATTENTION: Éviter l'inhalation directe de l'anesthésie et de prévenir l'accumulation de vapeurs anesthésiques.
  2. Anesthésier le barrage.
  3. Basculer vers le masque de maintenance si nécessaire, en plaçant le décubitus dorsal de barrage sur le pad de banc absorbant. Confirmez anesthésie par le manque de pédale réflexe.
  4. Réduire le débit de l'isoflurane à 2-3% pour l'entretien de l'anesthésie. Surveiller en permanence barrage long de la procédure afin d'assurer depression de respiration ne se produit pas. NOTE: Une fois sous anesthésie, les yeux du barrage devraient être protégés en utilisant un lubrifiant oculaire stérile pour éviter que les yeux de sécher ou devenir rayé.

4. L'ocytocine Injection

  1. Assurer l'ocytocine (20 unités USP / ml) n'a pas passé sa date d'expiration. Désinfecter le flacon de l'ocytocine avec un alcool stérile essuyez / tampon d'alcool de nettoyage.
  2. En utilisant une technique aseptique, élaborer 2 UI (0,1 ml) de l'ocytocine dans la seringue. Utilisez une nouvelle aiguille et la seringue pour chaque barrage qui sera traire.
    NOTE: L'ocytocine doses varient généralement de simples injections de 1 à 5 UI 1,6,12,16. En variante, une dose de 4 UI / kg de poids corporel 12 peut être utilisé. Une dose unique de 2 UI peut être répétée une fois si la difficulté traite est rencontré.
  3. Injecter l'ocytocine par voie intrapéritonéale. Insérez l'aiguille dans le quadrant inférieur droit de l'abdomen avec le pointage de l'aiguille vers la tête, à un anglede 15-30 °, environ 0,5 cm de profondeur.
  4. Tirez sur le piston pour assurer une pression négative avant l'injection. Si du fluide (sang, urine, le contenu intestinal, etc.) est aspiré dans la seringue, retirer l'aiguille et de tenter l'injection avec une nouvelle aiguille et la seringue. Si aucun fluide est aspiré injecter l'ocytocine et jeter l'aiguille et la seringue immédiatement dans un container prévu.
  5. Attendez environ 5-15 min pour le ocytocine pour stimuler la descente du lait.

5. Préparation des sites à traire

  1. Choisissez les sites / tétines du lait seront recueillis. Le lait peut être collecté de toute tétine 12.
  2. Retirez délicatement la fourrure autour du trayon à traire avec les tondeuses, comme la fourrure peut causer des difficultés dans la collecte de l'échantillon en raison de l'effet de mèche du lait. Soyez doux - la peau autour des trayons est extrêmement sensible et peut être sèche et en tant que telle est sensible aux rayures et aux larmes.
  3. La stérilisation de la tétine is pas nécessaire, mais le cas échéant, nettoyer la tétine à l'eau tiède après la fourrure est enlevée. Préparer au moins deux sites que plus d'un site peut être nécessaire pour la collecte du lait.
    NOTE: Si l'analyse du lait comprend profilage microbienne, la zone de la tétine peut exiger la stérilisation avec de l'iode 5.

6. Lait Collection

  1. Pressez doucement la base de la tétine, l'expulsion manuellement le lait pour la collecte.
    NOTE: Si l'analyse du lait comprend profilage microbienne, les premières gouttes de lait doivent être jetés.
  2. Recueillir les gouttelettes de lait dans un tube capillaire, le remplissage du tube capillaire. Les tubes capillaires qui peuvent accueillir de plus grands volumes (par exemple, 50 pi) de faciliter le processus.
    NOTE: Si la difficulté à recueillir le lait est rencontré, une deuxième dose d'ocytocine peut être administré. Il est recommandé de la dose dépasse pas 4 UI totale.
  3. Verser le lait à partir du tube capillaire dans un tube de microcentrifugation stérile partoucher le bout du tube qui a été utilisé pour tirer du lait du trayon vers le côté du tube de microcentrifugeuse - observer le lait étant tiré hors du tube capillaire par action capillaire.
    NOTE: 'Blow out »le lait qui ne soit pas aspiré dans le tube à l'aide d'une aiguille 18 G attachée à une seringue de 1 ml.
  4. Surveiller en permanence le barrage des signes de douleur ou de dépression respiratoire et de régler le débit de l'isoflurane en conséquence.
  5. Continuer à la collecte du lait comme décrit dans cette section jusqu'à ce que suffisamment de lait ont été recueillis pour l'analyse du lait choisi. Pour la creamatocrit et de protéines détermination de la concentration décrite ci-dessous, de recueillir 0,25 ml de lait.
    REMARQUE: Utilisez un site de traite différente si la descente du lait ralentit ou le site choisi ne pas expulser le lait suffisamment. Un maximum d'environ 2,5 ml de lait par animal peut être recueillie à 17, ou jusqu'à 0,5 ml par trayon. Les auteurs recommandent que le temps total sous anesthésie être limitée à environ 45-60 min, or 45 min de traite.
  6. La collecte du lait dans un tube de microhématocrite pour la mesure de creamatocrit à partir d'échantillons de lait frais, et sceller l'extrémité du tube avec de l'argile étanchéité. Etiqueter le tube de microhématocrite avec l'ID de barrage et stocker l'échantillon de lait debout.
  7. Lorsque la traite est terminée, éteignez le flux de l'isoflurane et de l'oxygène. Retirer le masque à partir du barrage et continuer à surveiller barrage jusqu'au réveil. Il est recommandé de ne pas pleinement conscient, le barrage doit être placé sur un coussin de banc absorbant au cours de la période de récupération, plutôt que directement sur la literie de la cage, pour empêcher la litière d'être aspiré ou de griffer les yeux du barrage lors de la récupération.
    REMARQUE: Ne laissez pas le barrage sans surveillance tant qu'il a repris conscience suffisante pour maintenir décubitus sternale.
  8. Si aucune autre analyse sont nécessaires, congeler le lait à -80 ° C. D'autres ont suggéré que le lait peut être conservé jusqu'à 3 h à 4 ° C ou 5 mois à -20 ° C 18.

7. Creamatocrit mesure

  1. Estimer la teneur en matières grasses dans le lait en calculant la creamatocrit de lait (de la crème en pourcentage de l'échantillon de lait) 19.
    REMARQUE: Les mesures avec le lait humain ont démontré que le lait frais ou congelé peut être utilisé pour une mesure de creamatocrit cependant lait frais est plus fortement corrélée (r = 0,92 par rapport r = 0,90) avec la concentration lipidique 11. L'utilisation de lait frais ou congelés pour les mesures de creamatocrit doit être maintenue uniforme dans l'étude, que le lait décongelé est associée à une faible diminution de creamatocrit 11 valeurs.
  2. Pour le lait frais, de recueillir un échantillon de lait du trayon dans un tube de microhématocrite; remplir au moins ¾ pleine (environ 15-20 pi). Alternativement, tirer du lait frais de l'échantillon prélevé dans le tube capillaire après mélangeant bien. Sceller la fin avec de l'argile étanchéité.
  3. Placer le tube capillaire dans la centrifugeuse de fibrage de l'hématocrite, de laextrémité fermée orientée vers l'extérieur, en assurant la centrifugeuse est équilibré.
  4. Commencez le spin de l'hématocrite (120 secondes à 13 700 xg).
    REMARQUE: Le temps de Spin ou la vitesse peuvent varier selon le modèle de centrifugeuse utilisée.
  5. Retirer le tube de la centrifugeuse après l'essorage est terminé et effectuer les mesures pour calculer la creamatocrit. Respecter la séparation de l'échantillon dans une couche de crème et une couche transparente.
  6. Mesurer et enregistrer la longueur totale du fluide dans le tube et la longueur de la matière grasse (crème) ou couche à l'aide d'une règle étriers.
    REMARQUE: La creamatocrit est exprimé comme le pourcentage de la couche de crème à l'intérieur de l'échantillon de lait le 19, comme calculé (longueur de couche de crème / longueur totale de la colonne de lait) x 100 (figure 1A). Calculer la concentration et de l'énergie des valeurs lipidiques provenant de la mesure de creamatocrit comme suit: la concentration de graisse (g / L) = (creamatocrit (%) - 0,59) /0.146 (figure 1B) 19; Valeur énergétique (kcal / L) = 290 + (66,8 creamatocrit * (%) (Figure 1C) 19.

8. Protéine Concentration Détermination

  1. Utilisation de la sérumalbumine bovine comme étalon de protéines, de déterminer la concentration totale en protéines du lait en utilisant un essai de protéine standard, telle qu'une protéine dosage de Lowry 6.
    REMARQUE: La dilution du lait peut être nécessaire pour les mesures de protéines du lait à l'intérieur de la courbe tombent norme de l'essai.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Lait a été recueilli comme décrit au sevrage des barrages Wistar (âgés d'environ 22 semaines, pesant 350 à 400 g) qui a consommé un contrôle (AIN-93G, n = 5), riche en protéines (40% de caséine poids / poids, n = 5) , ou de la fibre prébiotique élevé (21,6% en poids / poids, ratio 1: 1 d'oligofructose et l'inuline, n = 4) régime alimentaire pendant la grossesse et l'allaitement. La dose d'ocytocine était de 2 UI. Le lait a été collecté en utilisant des tubes capillaires, et un tube a été centrifugé en utilisant une cent...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les recherches sur les composants du lait maternel se sont multipliées à mesure que l’intérêt pour la recherche sur le développement de la petite enfance augmente. En tant que seule source de nutrition pendant la période néonatale, les composés bioactifs du lait sont essentiels à une croissance et à un développement idéaux, en particulier dans le contexte de la santé intestinale et immunitaire3. La méthode présentée ici est une méthode simple et non invasive de collecte du lait du rat allaitant en quantités su...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Les auteurs ont aucun conflit d'intérêt à divulguer. Toutes les expériences animales ont été menées conformément aux protocoles du CCPA approuvé.

Remerciements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ce travaux ont été soutenus par des subventions du Conseil de recherches en génie du Canada (RGPIN 238382-2011) en sciences naturelles et Instituts de recherche en santé (MOP115076) canadiennes. Heather Paul a été soutenu par une bourse d'études supérieures du Conseil de recherches en génie du Canada en sciences naturelles et et une bourse de l'Alberta Innovates Health Solutions. Megan Hallam a été soutenue par une bourse d'études en sciences naturelles et en génie Conseil de recherches de troisième cycle, une bourse Frederick Banting et Charles Best études supérieures du Canada, et de recherche de l'Hôpital Institut de formation Award en génétique, développement de l'enfant, et de la santé à l'enfance de l'Alberta.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Equipment - Traite
Seringues de 1 mlBD-Canada309602
aiguilles de 25 gBD-Canada305122
18 gBD-Canada305196
50 &mu ; l Microdistributeur Tubes capillairesFisher Scientific21-169D
Ocytocine (20 unités USP/ml)Bimeda-MTC1OXY015
PPC Vet Isoflurane Inhalation Anesthésique, 250 mlFresenius KabiM60302Utilisé sur commande d’un vétérinaire
Tampon de préparation à l’alcool stérileDukal853
Sous-coussin absorbant pour bancVWR82020-845
Maxi-Therm Hyper/Hypothermia BlanketCincinnati Sub-Zero274
Machine d’anesthésie pour rongeurs avec vaporisateurBenson Medical Industries Inc.Sous réserve des besoins individuels du laboratoire
Masques pour animaux,Benson Medical Industries, Inc.50100/50102
Tubes de microcentrifugationAxygenMCT-060-C
ChroMini Tondeuse professionnelleWahl
Equipment - Creamatocrit
StatSpin SafeCrit Tubes de microhématocrite en plastique (non traité)Fisher Scientific22-274-914
Critoseal Plateau d’étanchéité pour tube capillaireVWR470161-478
StatSpin CritSpin Centrifugeuse à microhématocriteBeckman Coulter, IncX00-004999-001
aiguilles de ,

Références

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Izumi, H., Kosaka, N., Shimizu, T., Sekine, K., Ochiya, T., Takase, M. Time-dependent expression profiles of microRNAs and mRNAs in rat milk whey. PLoS ONE. 9 (2), e0088843(2014).
  2. Hsieh, C. C., Hernández-Ledesma, B., Fernández-Tomé, S., Weinborn, V., Barile, D., de Moura Bell, J. M. Milk Proteins, Peptides, and Oligosaccharides: Effects against the 21st Century Disorders. BioMed Res. Int. , (2015).
  3. Rogier, E. W., et al. Lessons from mother: Long-term impact of antibodies in breast milk on the gut microbiota and intestinal immune system of breastfed offspring. Gut Microbes. 5 (5), 663-668 (2014).
  4. Keen, C. L., Lönnerdal, B., Clegg, M., Hurley, L. S. Developmental changes in composition of rat milk: trace elements, minerals, protein, carbohydrate and fat. J. of Nutr. 111 (2), 226-236 (1981).
  5. Cabrera-Rubio, R., Collado, M. C., Laitinen, K., Salminen, S., Isolauri, E., Mira, A. The human milk microbiome changes over lactation and is shaped by maternal weight and mode of delivery. Am. J. Clin. Nutr. 96 (3), 544-551 (2012).
  6. Hallam, M. C., Barile, D., Meyrand, M., German, J. B., Reimer, R. A. Maternal high-protein or high-prebiotic-fiber diets affect maternal milk composition and gut microbiota in rat dams and their offspring. Obesity. 22 (11), 2344-2351 (2014).
  7. Munch, E. M., et al. Transcriptome Profiling of microRNA by Next-Gen Deep Sequencing Reveals Known and Novel miRNA Species in the Lipid Fraction of Human Breast Milk. PLoS ONE. 8 (2), e50564(2013).
  8. Li, M., Sloboda, D. M., Vickers, M. H. Maternal obesity and developmental programming of metabolic disorders in offspring: Evidence from animal models. Exp Diabetes Res. 2011, (2011).
  9. Ellis, P. J. I., et al. Thrifty metabolic programming in rats is induced by both maternal undernutrition and postnatal leptin treatment, but masked in the presence of both: implications for models of developmental programming. BMC Genomics. 15, 49(2014).
  10. Gomez-Gallago, C., et al. A method to collect high volumes of milk from mice (Mus musculus). An. Vet. Murcia. 29, 55-61 (2013).
  11. Wang, C. D., Chu, P. S., Mellen, B. G., Shenai, J. P. Creamatocrit and the nutrient composition of human milk. J. Perinatol. 19 (5), 343-346 (1999).
  12. Rodgers, C. T. Practical aspects of milk collection in the rat. Lab. Anim. 29 (4), 450-455 (1995).
  13. Godbole, V. Y., Grundleger, M. L. Composition of rat milk from day 5 to 20 of lactation and milk intake of lean and preobese zucker pups. J. Nutr. 111 (3), 480-487 (1981).
  14. Del Prado, M., Delgado, G., Villalpando, S. Maternal lipid intake during pregnancy and lactation alters milk composition and production and litter growth in rats. J. Nutr. 127 (3), 458-462 (1997).
  15. Nicholas, K. R., Hartmann, P. E. Milk secretion in the rat: progressive changes in milk composition during lactation and weaning and the effect of diet. Comp. Biochem. Physiol. A. Comp. Physiol. 98 (3-4), 533-542 (1991).
  16. Azara, C. R. P., et al. Ethanol intake during lactation alters milk nutrient composition and growth and mineral status of rat pups. Biol. Res. 41 (3), 317-330 (2008).
  17. Keen, C. L., Lönnerdal, B., Sloan, M. V., Hurley, L. S. Effects of milking procedure on rat milk composition. Physiol. Behav. 24 (3), 613-615 (1980).
  18. Romeu-Nadal, M., Castellote, A. I., Lòpez-Sabater, M. C. Effect of cold storage on vitamins C and E and fatty acids in human milk. Food Chem. 106 (1), 65-70 (2008).
  19. Lucas, A., Gibbs, J. A., Lyster, R. L., Baum, J. D. Creamatocrit: simple clinical technique for estimating fat concentration and energy value of human milk. Br. Med. J. 1 (6119), 1018-1020 (1978).
  20. Furtado, K., Andrade, F. Comparison of the beneficial and adverse effects of inhalable and injectable anaesthetics in animal models: a mini-review. OA Anaesthetics. 1 (2), 20(2013).
  21. Hausman Kedem, M., et al. The effect of advanced maternal age upon human milk fat content. Breastfeed. Med. 8 (1), 116-119 (2013).
  22. Mandel, D., Lubetzky, R., Dollberg, S., Barak, S., Mimouni, F. B. Fat and energy contents of expressed human breast milk in prolonged lactation. Pediatrics. 116 (3), e432-e435 (2005).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Demander l’autorisation de réutiliser le texte ou les figures de cet article JoVE

Demander une autorisation

Mots-clés

Lactation chez le rattube capillairem thode du cr matocritetraite manuellestimulation l ocytocineanalyse des mati res grasses du laitcentrifugation de l h matocriteeffets du r gime maternelnutrition n onatale

Articles connexes