Utilisation d’un modèle de Rat pour étudier une hernie abdominale ventrale

Résumé

Ce manuscrit décrit des méthodes associées à la création et la réparation d’un défaut de la paroi abdominale ventrale (hernie). Ce modèle peut être utilisé pour étudier les stratégies de réparation tels que ceux qui utilisent des matériaux implantés. Dans ce manuscrit, réparation de la hernie expérimentale avec la sous-muqueuse intestinale petite porcine est présentée comme un exemple.

Résumé

Hernie abdominale ventrale est une affection clinique relativement fréquente nécessitant parfois une herniorraphie (chirurgie réparatrice). La réparation de l’hernie ventrale abdominale nécessite généralement l’implantation d’un matériau à servir de pont mécanique à travers l’anomalie de la paroi abdominale. Biomatériaux, tels que la sous-muqueuse intestinale petite porcine (SIS), également servent un treillis pour la croissance cellulaire dans l’implant et peuvent intégrer naturellement les tissus de l’hôte. Mise au point de ces matériaux de réparation bénéficie de l’utilisation de modèles animaux dans lequel défauts de la paroi abdominale expérimentales sont créés facilement et sont prêtent à la réparation de façon reproductible. La méthode proposée ici décrit la création chirurgicale et la réparation d’hernie abdominale ventrale dans un modèle de rat. Lorsque vous SIS est utilisée pour réparer une hernie abdominale ventrale expérimentale dans ce modèle, il est rapidement intégrée dans les tissus de l’hôte dans les 28 jours suivant l’implantation. Sur le plan histologique, incorporation de leur matériel implanté dans les tissus de l’hôte se caractérise par une réponse fibrovasculaire robuste. Améliorations futures et les applications du modèle rat hernie abdominale peuvent probablement impliquent des animaux diabétiques ou obèses comme un moyen de plus étroitement mimiques comorbidités communs de l’homme.

Introduction

Hernie de la paroi abdominale est un problème clinique courants qui peut-être survenir du fait de la malformation congénitale, traumatisme ou échec de fermeture des plaies chirurgicales impliquant la paroi abdominale. Réparation implique généralement à l’aide d’un implant pour renforcer la paroi abdominale, avec un taux de récurrence a noté chez les patients traités avec l’implant par rapport à ceux en qui la paroi abdominale est simplement fermée par suture réduit. ¹

Chirurgie hernie nécessite souvent de raccordement mécanique du défaut avec un matériel implanté. À cet égard, matériaux synthétiques et naturels ont été utilisés pour la réparation de l’hernie. De nombreux matériaux synthétiques sont généralement non résorbable et comprennent polypropylène, polyéthylène téréphtalate polyester et polytétrafluoroéthylène expansé, tandis que les autres implants synthétiques combinent une des matières non résorbable avec un résorbable polymère tel que polygalactine. ¹ en revanche, les implants matériels naturels proviennent généralement de sources provenant de cadavres soit animales ou humaines. Les matériaux naturels utilisés pour la réparation des hernies sont généralement riches en collagène et agissent comme un échafaudage pour le recrutement et l’intégration des tissus de l’hôte.

Le désir de développer et optimiser de nouveaux matériaux pour la réparation de l’hernie abdominale ventrale nécessite un modèle animal approprié pour l’évaluation des matériaux candidats. Des études ont été menées dans une variété d’espèces, y compris les moutons,² cochons,³ lapins, rats de⁴ ,^5,6,7,8 et les chiens. ⁹ l’avantage d’utiliser des rats à de telles études est qu’ils offrent un modèle facilement manipulable disponible dans une variété de souches consanguines pour permettre un contrôle de la variabilité génétique. En outre, la plus petit ensemble surface corporelle du rat par rapport aux autres espèces énumérées ci-dessus permettre l’évaluation des matériaux qui peuvent être de nature expérimentale et, par conséquent, pas abondant.  En outre, réduits les coûts associés au rats par rapport aux autres espèces permettant de capacité relativement accrue de matériaux candidats écran devant servir à la réparation de l’hernie ventrale abdominale.  Considérations relatives aux matériaux comprennent généralement la facilité de manipulation par le chirurgien, la résistance, la capacité à intégrer dans les tissus de l’hôte, biocompatibilité et la résistance à l’infection.

À titre d’exemple, la sous-muqueuse intestinale petite porcine (SIS) est un biomatériau naturel qui a été utilisé pour une grande variété d’indications de réparation tissulaire, y compris la réparation de ventrales hernies abdominales, inguinales et diaphragmatiques. ^{10 , 11 , 12} SIS est rapidement intégrée dans les tissus de l’hôte et s’est avérée pour être généralement résistantes à l’infection et donc le matériau a une utilité particulière dans des champs contaminés. ^{13 , 14} dans le modèle de rat, SIS a démontré la facilité de manipulation, bonne résistance à la traction telle que déterminée par l’essai de rupture en traction uniaxiale et la promotion de tissulaire en termes de dépôts de collagène et une néovascularisation. ^{6 , 7}

Un pontage chirurgical précise du défaut est une caractéristique essentielle de la modélisation productive lors de l’évaluation des matériaux de réparation des candidats. L’animal doit être suffisamment anesthésiée et aseptique technique strictement suivie. En outre, un défaut de la paroi abdominale de taille standard doit être soigneusement créé et ensuite comblé d’une manière qui protège suffisamment la matière pour les marges de la malformation. ⁸ ce protocole fournit une méthode standard à suivre pour la création chirurgicale et la réparation de, une hernie abdominale ventrale SIS en prenant comme exemple de raccordement matériel chez un rat.

Protocole

l’utilisation des animaux dans le présent protocole a été approuvée par l’Université de Notre Dame Institutional Animal Care et utiliser, suivi de tous les règlements et les lignes directrices et a été réalisée dans un établissement agréé par le Association pour l’évaluation et l’accréditation du laboratoire de protection des animaux (AAALAC), International.

1. sélection des animaux

1. Acquire exempts de micro-organismes pathogènes des rats Sprague Dawley d’un fournisseur réputé ou colonie reproductrice.
   Remarque : Souvent, le vétérinaire de l’établissement ou le directeur peut ordonner au chercheur de sources appropriées. Rats d’environ 250 g de poids de corps ne conviennent pas pour cette procédure.
2. Un jour avant la chirurgie, examiner les animaux destinés à être utilisés pour s’assurer qu’ils sont cliniquement sains. À cet égard, peser l’animal et d’évaluer la condition physique ; Notez toute anomalie dans la respiration, la présence d’une plaie ouverte ou de masses et le niveau de l’activité générale de l’animal. Notez toute anomalie dans le dossier chirurgical et examiner les observations telles que les critères d’exclusion potentielle.

2. Anesthésie et préparation des animaux pour la chirurgie aseptique

1. pour l’analgésie, administrer de 1,1 à 1,2 mg/kg de la buprénorphine à libération prolongée, par voie sous-cutanée au rat 2 h avant la chirurgie. appliquer la pommade ophtalmique pour les deux yeux et d’administrer 2 mL de réchauffé de sérum physiologique stérile par voie sous-cutanée.
2. Anesthésier le rat avec une dose intrapéritonéale de chlorhydrate de kétamine (90 mg/kg) et de xylazine (10 mg/kg). Appliquer une petite quantité de lubrifiant oculaire à chaque œil pour empêcher le dessèchement cornéenne. Une fois l’animal ’ respiration s est stable et n’a plus aucune réponse à une pincée de pied ferme, le rat a atteint un niveau d’anesthésie suffisante pour la chirurgie. Un niveau acceptable de l’anesthésie peut être confirmé par la présence d’un profond, respiration régulière et la couleur normale de le œil (versus pâleur, qui pourrait faire penser à une perfusion insuffisante cardiovasculaire).
3. Raser l’abdomen ventral avec un coupe-ongles commerciale du pubis au sternum et des marges latérales sur le ventrum. Enlever les poils taillés en appliquant une serviette de papier humide sur la zone.
4. Frotter la zone rasée avec un iodophore antiseptique suivie d’un chiffon avec l’éthanol à 70 %. Appliquer des draps chirurgicaux afin qu’une fenêtre pour l’incision peut être isolée du risque de contamination.
5. Don une casaque stérile, un masque et un bonnet de cheveux. Bien laver et frotter les mains avec du savon et don de gants chirurgicaux stériles.

3. Création et réparation de l’hernie ventrale abdominale

1. avant la chirurgie, stériliser les instruments chirurgicaux par autoclave.
2. à l’aide d’un scalpel, faites une incision verticale à environ 3-4 cm le long de la ligne ventrale médiane jusqu’au niveau de la musculature abdominale. Soulever la paroi abdominale doucement avec une pince et créer une petite ouverture par l’intermédiaire de la linea alba. Pour protéger les viscères sous-jacents, insérer une pince dans le trou et dans la cavité abdominale à servir comme guide protecteur de la paroi musculaire est incisée pour créer un environ les défauts de pleine épaisseur 2 cm sur 2 cm, couper environ 1 cm latérale de chaque côté de la ligne médiane sur les deux extrémités de la linea incision alba.
3. Poser une section précoupées de 2 cm sur 2 cm de matériau Raccordement mécanique, SIS 4 couches dans ce cas (Figure 1), sur le défaut.
   Remarque :, Une approche de sous-couche montér dans lequel la section de matériel est placée dans la cavité abdominale pour couvrir le vice de l’aspect intérieur.
Aux quatre coins de l’entretoisement matérielles du muscle de la paroi abdominale à l’aide de soie ou nylon 4-0 dans un modèle simple suture interrompu de suture
4. .
   Remarque : L’utilisation de suture non résorbable permet d’identifier facilement le matériel implanté à la récolte par rapport aux matériaux de suture résorbable.
5. Fixer chaque bord de la pièce avec trois sutures plus espacés également. Examiner le bord circonférentiel complet pour s’assurer qu’il n’existent pas de lacunes importantes qui peut-être permettre le passage des viscères à travers la paroi abdominale ; et, si ces écarts existent, placer des sutures supplémentaires pour sécuriser davantage la marge de.
6. Fermer le tissu sous-cutané avec suture résorbable 4-0 dans un simple motif interrompu. Fermer la peau avec des agrafes chirurgicales, bien que la suture appliqué dans un simple motif interrompu peut également être utilisé.
7. N’abandonnez pas l’animal jusqu'à ce qu’il a repris connaissance suffisante pour reprendre le décubitus sternal ; et ne retournez pas un animal qui a subi une chirurgie à la compagnie des autres animaux jusqu'à ce qu’il a pleinement récupéré de l’anesthésie. Pendant ce temps, garder l’animal dans un endroit chaud pour éviter l’hypothermie.
8. Examiner animaux tous les jours qui ont subi cette procédure afin d’assurer le recouvrement intégral et la guérison normale. Retirer les agrafes de la peau avec un décapant discontinue 7-10 jours suivant la chirurgie.

4. Récolte du matériel implanté

1. cohérent avec les besoins de l’étude, euthanasier, avec surdose de dioxyde de carbone administré à une chambre de remplissage de 10 à 30 %, les animaux à un moment prédéterminé, souvent 21 - 28 jours suivant la chirurgie.
2. Outils de nécropsie standard à l’aide, ouvrez la peau et la paroi abdominale et exposer la zone de l’implant.
   Remarque : Si les sutures non résorbables ont été utilisés pour garantir l’implant, le matériel peut être identifié par les sutures originales (Figure 2).
3. Observer toutes observations pathologiques brutes, y compris toute indésirables (p. ex., déhiscence de la plaie, abcès, sérome, hématome) et la mesure de l’adhérence et la ténacité pour les viscères sous-jacents.
4. Supprimer le site de l’implant en coupant une large section de tissu qui inclut l’implant. Placer l’échantillon dans un fixateur, telles que 10 % de formol tamponné neutre, en vue de traitement aux fins d’un examen histologique et caractérisation.

Résultats

En 28 jours après l’implantation, SIS démontre généralement bonne incorporation dans les tissus de l’hôte (Figure 2). Dans la plupart des cas, il est SIS résiduelle apparent, si le tissu doit souvent être exploré afin d’identifier le matériel implanté. Les analyses histologiques ont confirmé les observations pathologiques brutes, illustrant l’incorporation de tissu bon avec principalement le tissu fibrovasculaire et SIS résiduelle très peu remarqué (Figure 3

Discussion

Matériaux pour la réparation de l’hernie ventrale abdominale sont d’un grand intérêt, notamment ceux qui fournissent un pont mécanique initial et sont ensuite en mesure d’intégrer dans les tissus de l’hôte. À cet égard, une variété de matériaux ont été étudiées, y compris les SIS, matrice dermique acellulaire porcin et péricarde porcin. ^{6 , 7} ces matériaux représente les matrices extracellulaires de ces tissus et servir d’échafaudages dans lequel les cellules peu...

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Isoflurane (Isoflo)	Henry Schine Santé animale	17579	anesthésique gazeux
Optixcare Lubrifiant oculaire	Henry Schine Santé animale	OPX4240	Lubrifiant oculaire
Oster tondeuses	Henry Schine Santé animale	6092	Tondeuses à cheveux
Bétadine gommage chirurgical	Henry Schine Santé animale	1618	iodophore
antiseptiqueScalpel stérile	Henry Schine Animal Health	329	#10 scalpel
9 » x 12 » champ chirurgical jetable	Braintree Scientific, Inc.	SP-RPS	Champ chirurgical
4-0 suture en nylon	Braintree Scientific, Inc.	SUT 812	Matériau de suture
4-0 Suture résorbable	Henry Schine Animal Health	29242	Suture résorbable synthétique
9 mm Autoclips et applicateur	Braintree Scientific, Inc.	ACS KIT	Agrafes chirurgicales pour la fermeture de l’incision cutanée
Torbugesic/analgésique	Henry Schein Santé animale	12084	Tartarate de butorphanol pour l’analgésie postopératoire Sous-muqueuse
de l’intestin grêle (SIS)	Cook Biotech, Inc.		Matériau d’implant pour combler un défaut expérimental de la paroi abdominale
Rats	Harlan, Inc.	Sprague Dawley	Animal pour le modelage des hernies