Éliminer des cellules spécifiques sans endommager d’autres cellules est extrêmement difficile, en particulier dans les tissus établis, mais il existe un besoin urgent d’une méthode d’élimination cellulaire dans le domaine de l’ingénierie tissulaire. Ici, nous présentons une méthode d’élimination cellulaire spécifique à partir d’une culture cellulaire 3D mixte en utilisant la photoimmunothérapie proche infrarouge (NIR-PIT).
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Article de méthode
Selective Cellule élimination de Mixed Culture 3D en utilisant une technique proche infrarouge Photoimmunotherapy
Dans cet article
Résumé
Résumé
Les développements récents en ingénierie tissulaire offrent des solutions innovantes pour de nombreuses maladies. Par exemple, l’ingénierie tissulaire utilisant des cellules souches pluripotentes induites (iPS) est apparue comme une nouvelle méthode en médecine régénérative. Bien que cette régénération tissulaire soit prometteuse, la contamination par des cellules indésirables lors des cultures de tissus est une préoccupation majeure. De plus, il existe un problème de sécurité concernant la tumorigénicité après la transplantation. Par conséquent, il est urgent d’éliminer des cellules spécifiques sans endommager d’autres cellules qui doivent être protégées, en particulier dans les tissus établis. Ici, nous présentons une méthode d’élimination cellulaire spécifique à partir d’une culture cellulaire 3D mixte in vitro avec photoimmunothérapie proche infrarouge (NIR-PIT) sans endommager les cellules non ciblées. Cette technique permet d’éliminer des cellules spécifiques à partir de cultures cellulaires ou de tissus mixtes.
Introduction
L'élimination des cellules spécifiques sans endommager d'autres cellules est extrêmement difficile, en particulier dans le tissu mis en place, et il y a un besoin urgent d'une méthode d'élimination des cellules dans le domaine de l'ingénierie tissulaire. Aujourd'hui , dans le domaine de la médecine régénérative, les cultures de tissus en utilisant des cellules souches embryonnaires (ES), les cellules souches pluripotentes (PSC), ou induite par les cellules souches pluripotentes (iPS) sont des matériaux prometteurs 1-3.
Bien que cette régénération tissulaire est prometteur, la contamination par des cellules non désirées est une préoccupation majeure. De plus, il y a un problème de sécurité tumorigène après transplantation 4,5. Bien que de nombreuses études se sont focalisées sur ces points pour éliminer les cellules spécifiques, en particulier dans la médecine régénératrice 6 - 8, aucune méthode pratique a été développée.
photoimmunotherapy proche infrarouge (NIR-PIT) est un traitement basé sur un conjugat anticorps-photoabsorbante (APC). L'APC se compose d'un anticorps monoclonal spécifique à la cellule (mAb) et un photoabsorbeur, IR700. IR700 est un dérivé de silice-phtalocyanine hydrophile et ne provoque pas lui - même par phototoxicité 9. IR700 est conjugué de manière covalente à l'anticorps par l'intermédiaire des résidus amide de la chaîne latérale de molécules de lysine. Le CPA se lie à des molécules cibles sur la membrane cellulaire et induit une nécrose cellulaire quasi immédiate après une exposition à une lumière proche infrarouge à 690 nm. Au cours de l'exposition au NIR-lumière, les ruptures de la membrane cellulaire conduisant à la mort des cellules 9-14. RIN-PIT est révélée être efficace avec plusieurs anticorps ou fragments d' anticorps, y compris des anti-EGFR, anti-HER2 et anti-PSMA, anti-CD25, anti-mésothéline, anti-GPC3 et anti-CEA 15-21. Par conséquent, le NIR IPP peut être utilisé contre une grande variété de molécules cibles. Par ailleurs, NIR-PIT est un traitement bien contrôlé qui permet le traitement sélectif des régions spécifiques en limitant le NIR-light irradiation 18,22.
Ici, nous présentons une méthode d'élimination de cellules spécifiques en utilisant NIR-PIT à partir de cultures mixtes 3D.
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Protocole
Remarque: Le protocole suivant décrit les étapes nécessaires pour éliminer les cellules spécifiques en utilisant NIR-PIT. Commandes et autres détails sur NIR-PIT et la viabilité des cellules peuvent être trouvées ailleurs 18.
1. Conjugaison IR700 à des anticorps monoclonaux (mAb)
- Préparer un mAb d'intérêt à 2-5 mg / ml dans 0,1 M de Na 2 HPO 4 (pH 8,6) la solution.
- Mélanger 6,8 nmol de mAb avec 30,8 nmol mM IR700 10 dans 0,1 M Na 2 HPO 4 solution (pH 8,6) dans un tube à centrifuger et incuber à température ambiante pendant 1 h, recouverts d' une feuille d'aluminium.
- Laver la colonne PD-10 (voir le tableau des matériaux / équipement) avec 15 ml de PBS, deux fois. Chargez l'échantillon de l'étape 1.2.
- On purifie le mélange par l'intermédiaire de la colonne PD-10 par élution de PBS selon les instructions du fabricant.
Note: Ici, l'élution a été le long de la couleur de la bande de IR700. Pour un échantillon de 300 pi, fraction d'élution PBS est typiquement entre 2,5 ml à 4,4 ml. - Détermine lela concentration en protéine avec coloration de Coomassie , en mesurant l'absorption à 595 nm avec un spectrophotomètre 9. Déterminer la concentration de IR700 avec une absorption à 689 nm pour confirmer le nombre de molécules de fluorophore conjugué à chaque molécule de mAb 9.
Note: Il est important de déterminer un nombre optimal de conjugaison de molécules IR700 en 1 mAb avec un spectrophotomètre. En général, environ 3 molécules d'IR700 dans 1 molécule mAb est optimale pour les deux in vitro et in vivo de travail. méthodes HPLC et SDS-PAGE peuvent être utilisés pour confirmer si le mAb et IR700 sont liés ou non. - Conserver à 4 ° C, après la détermination de la concentration en protéines.
2. Préparation de la culture mixte de Cell 3D (Mixed Spheroid)
- Appliquer de l'eau stérile (environ 1 ml) dans la section de réservoir de la plaque de la pendaison plaques de chute.
- Préparer divers rapports des types d'intérêt de cellules - cellules A431-luc-GFP et les cellules 3T3-DP -pour chaque échantillon contenant 5000 cellules au total, en suspension dans 50 ul de milieu de culture.
Note: Préparer 1: 100, 10: 100, 25: 100, 50: 100, etc. rapports de types de cellules d'intérêt dans le milieu de culture en fonction du type de cellule. - Laisser incuber le mélange pendant 5-7 jours dans la plaque de puits suspendu goutte 96 dans un incubateur humidifié à 37 ° C et 5% de dioxyde de carbone. Changer les milieux de culture tous les 2 jours. Remarque: Pour faire de la 3D sphéroïde précisément, manipuler délicatement la plaque, sous forme de gouttes contenant des cellules tombent facilement avant de former des formes 3D.
- Observer la morphologie et la taille des sphéroïdes en utilisant un microscope inversé à fond clair 10X - 40X. Note: Bien que cela dépende des types de cellules et la taille de goutte suspendue, veiller à ce que le diamètre du sphéroïde est d'environ 400-600 um après 7 jours d'incubation dans le 96 puits suspendus plaque de chute.
3. In Vitro NIR-PIT pour la culture cellulaire mixte 3D
- Changer les médias de l'haNging plaques de chute de 10 pg / ml d'anticorps conjugué photoabsorbeur (APC), les milieux contenant, et laisser incuber pendant 6 heures dans un incubateur humidifié à 37 ° C et 5% de dioxyde de carbone.
- Après 6 heures d'incubation, laver le sphéroïde deux fois avec un milieu de culture frais (sans rouge de phénol). transférer doucement le sphéroïde à un 50 mm plat en verre à fond avec 100 ul de phénol rouge frais des milieux de culture libre en utilisant une pointe de pipette 200 pi stérile avec la pointe coupée. Placez un sphéroïde dans chaque plat.
- Observer le sphéroïde avec un microscope inversé à fond clair pour détecter le changement de la morphologie. Pour observer les journalistes optiques (par exemple, GFP et RFP) utiliser un microscope à fluorescence avec les paramètres de filtre suivants: GFP - filtre d'excitation 469 nm, et un filtre d'émission de 525 nm; RFP - 559 nm filtre d'excitation et 630 nm filtre d'émission.
- Placez la diode électroluminescente (LED) au-dessus du plat à fond de verre pour l'irradiation.
Note: Spheroids peuvent être exposés à NIRla lumière soit sur le microscope ou dans la hotte laminaire.- Mesurer la densité de puissance du RIN-lumière avec un mesureur de puissance optique 9. Selon cette mesure, irradier NIR-lumière par l' intermédiaire des diodes électroluminescentes (DEL) qui émettent de la lumière à des longueurs d' onde de 710 nm à 670 à 2 J / cm 2.
Remarque: la lumière LED peut pénétrer la profondeur maximale d'environ 5 pouces. Les effets cytotoxiques de NIR-PIT ne dépend que de l' énergie donnée indépendamment de la densité de puissance et la durée de l' exposition 23.
- Mesurer la densité de puissance du RIN-lumière avec un mesureur de puissance optique 9. Selon cette mesure, irradier NIR-lumière par l' intermédiaire des diodes électroluminescentes (DEL) qui émettent de la lumière à des longueurs d' onde de 710 nm à 670 à 2 J / cm 2.
- Après irradiation, le transfert du sphéroïde dans une nouvelle plaque de goutte suspendue avec 50 ul de milieu de culture frais et on incube pendant 1 jour dans un incubateur humidifié à 37 ° C et 5% de dioxyde de carbone.
- transférer doucement le sphéroïde dans un plat à fond de verre avec 100 ul de milieu de culture frais (rouge de phénol libre) à l'aide d'une pointe de pipette 200 pi stérile avec la pointe coupée. Observer le sphéroïde avec un microscope à fluorescence 1 jour après NIR-PIT en utilisant fiparamètres ltre décrits dans l'étape 3.3.
- Détecter les cellules mortes en ajoutant de l'iodure de propidium à la presse à une concentration finale de 2 pg / ml, soit par la perte de fluorescence de la GFP cytoplasmique en utilisant un microscope à fluorescence (figure 2B) 14,18,22.
- Répéter les étapes 3.1 à 3.6 si les cellules cibles ne sont pas complètement éliminés.
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Résultats
Pour surveiller optiquement l'effet de NIR-PIT, la lignée cellulaire A431, qui surexprime EGFR, a été génétiquement modifié pour exprimer également la GFP et la luciférase (A431-luc-GFP). En tant que non-cible de NIR-PIT, la lignée cellulaire Balb / 3T3 a été optiquement modifiée pour exprimer RFP (3T3-RFP). L'APC, panitumumab-IR700 (pan-IR700), a été synthétisé. Sphéroïdes mixtes, qui ont été composées de divers rapports de cellules (A431-luc-GFP et 3T3-DP) ont été fabriqués sel...
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Discussion
Nous démontrons une méthode d'élimination de cellules spécifiques à partir d'une culture cellulaire 3D mixte sans endommager les cellules non-cibles en utilisant NIR-PIT. Jusqu'à présent, il n'y a pas de méthode pratique de l'élimination des cellules une fois que le tissu est établie ou après la transplantation. Ainsi, NIR-PIT est une méthode prometteuse pour accomplir cela. Cette technique pourrait également être utilisé in vivo , 18,22, étant donné que les APC présenten...
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Déclarations de divulgation
Les auteurs ont rien à révéler.
Remerciements
Cette recherche a été soutenue par le Programme de recherche intra-muros des National Institutes of Health, National Cancer Institute, Centre de recherche sur le cancer.
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Matériaux
| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| IRDye 700DX Colorant infrarouge | ester LI-COR Bioscience (Lincoln, NE, USA) | 929-70011 | |
| Na2HPO4 | SIGMA-ALDRICH (St. Louis, MO, USA) | S9763 | |
| Colonne Sephadex G25 (-10) ; | GE Healthcare (Piscataway, NJ, États-Unis) | 17-0851-01 | |
| Coomassie (bradford) Plus dosage des protéines | Thermo Fisher Scientific Inc (Waltham, MA, États-Unis) | PI-23200 | |
| Perfecta3D Plaques de chute suspendues à 96 puits | 3D Biomatrix Inc (Ann Arbor, MI, États-Unis) | HDP1096-8 | |
| Capteur de puissance optique | Thorlabs (Newton, NJ, États-Unis) | PM100 | |
| LED : L690-66-60 | Marubeni America Co. (Santa Clara, CA, USA) | L690-66-60 | |
| Vectibix (panitumumab) | Amgen (Thousand Oaks, CA, USA) | ||
| 35 ; mm plat à fond en verre, taille du plat 35 ; mm, taille du puits 10 ; mm | Cellvis (Mountain View, CA, États-Unis) | D35-10-0-N |
Références
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Réimpressions et autorisations
