L’oligodendrogenèse efficace est l’objectif thérapeutique d’un certain nombre de domaines de recherche, notamment les lésions de la moelle épinière, l’hypoxie néonatale et les maladies démyélinisantes telles que la sclérose en plaques et la myélite transverse. La myélinisation est nécessaire non seulement pour faciliter la propagation rapide des impulsions dans le système nerveux central, mais aussi pour fournir un soutien trophique aux axones sous-jacents. Les cellules progénitrices des oligodendrocytes (CPO) peuvent être étudiées in vitro pour aider à identifier les facteurs qui peuvent favoriser ou inhiber la différenciation des oligodendrocytes. À ce jour, de nombreuses méthodes disponibles pour évaluer ce processus ont soit nécessité un grand nombre de cellules, limitant ainsi le nombre de conditions pouvant être étudiées à un moment donné, soit des méthodes de quantification à forte intensité de main-d’œuvre. Dans cet article, nous décrivons un protocole pour l’isolement d’un grand nombre d’OPC hautement purs ainsi qu’une méthode rapide et fiable pour déterminer l’oligodendrogenèse à partir de plusieurs conditions simultanément. Les OPC sont isolés à partir de cortex de rat néonatal P5-P7 et cultivés in vitro pendant trois jours avant la différenciation. Quatre jours après la différenciation, l’oligodendrogenèse est évaluée à l’aide d’un test à balayage par fluorescence infrarouge double pour déterminer l’expression de la protéine de myéline.