Article de méthode

Clearing optique du système nerveux central de souris utilisant CLARITY passive

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DOI :

10.3791/54025

30 juin 2016

Dans cet article

Résumé

Les techniques de clarification optique révolutionnent la façon dont les tissus sont visualisés. Dans ce rapport, nous décrivons les modifications apportées au protocole CLARITY (Clear Lipid-exchange Acrylamide-hybridized Rigid Imaging-compatible Tissue-hYdrogel) qui donne des résultats plus cohérents et moins coûteux.

Résumé

Traditionnellement, la visualisation tissulaire nécessitait que le tissu d’intérêt soit sectionné et imagé en série, soumettant chaque section tissulaire à des déformations non linéaires uniques, entravant considérablement la capacité d’une personne à évaluer la morphologie, la distribution et la connectivité cellulaires dans le système nerveux central (SNC). Cependant, les techniques de clarification optique modifient la façon dont les tissus sont visualisés. Ces approches permettent de sonder en profondeur les préparations d’organes intacts, ce qui fournit un aperçu considérable de l’organisation structurelle des tissus en santé et en maladie. Des techniques telles que CLARITY (Clear Lipid-exchange Acrylamide-hybridized Rigid Imaging-compatible Tissue-hYdrogel) atteignent cet objectif en fournissant une matrice qui lie des biomolécules importantes tout en permettant aux lipides diffusant la lumière de se diffuser librement. L’élimination des lipides, suivie de l’appariement de l’indice de réfraction, rend le tissu transparent et facilement imagé en 3 dimensions (3D). Néanmoins, le nettoyage électrophorétique des tissus (ETC) utilisé dans le protocole CLARITY original peut être difficile à mettre en œuvre avec succès et l’utilisation d’une solution propriétaire d’appariement de l’indice de réfraction rend coûteuse l’utilisation systématique de la technique. Ce rapport démontre la mise en œuvre d’un protocole de clarification optique simple et peu coûteux qui combine la CLARITY passive pour une meilleure intégrité des tissus et le 2,2′-thiodiéthanol (TDE), une solution d’appariement de l’indice de réfraction décrite précédemment.

Introduction

La capacité d’imager des structures neuroanatomiques complètes est extrêmement précieuse pour comprendre le cerveau dans la santé et la maladie. Traditionnellement, l’imagerie 3D nécessitait une section tissulaire pour fournir la résolution axiale et visualiser les structures anatomiques profondes. Cette approche peut produire des ensembles de données à haute résolution, mais nécessite des techniques sophistiquées de reconstruction d’images et demande beaucoup de main-d’œuvre. En conséquence, elle a été limitée à l’imagerie de petits volumes de tissu1-3. Le sectionnement optique, en revanche, est bien adapté à la création d’images 3D haute résolution de tis....

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Protocole

Toutes les expériences ont été effectuées en conformité avec Institutional Animal Care et utilisation Commission (IACUC) des lignes directrices. souris THY1-YFP, EGFP et PLP-PV-tdTomato ont été utilisées pour ces expériences, mais toutes les souris exprimant des protéines fluorescentes peuvent être effacées avec succès et imagée.

1. Préparation des tissus

Attention: paraformaldéhyde (PFA) et d'acrylamide sont toxiques et irritants. Effectuer des expériences en utilisant ces réactifs dans une hotte et d'un équipement de protection individuelle (blouse de laboratoire, des gants et des lunettes de protectio....

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Résultats

Visualiser l'organisation structurelle du cerveau est essentielle pour comprendre comment la morphologie et la connectivité affectent le fonctionnement du cerveau dans la santé et la maladie. techniques de compensation optiques permettent aux populations de cellules d'image en 3D dans des tissus intacts, ce qui nous permet d'étudier la morphologie et de la connectivité cohésive.

Les souris qui expriment des protéin.......

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Discussion

compensation passive de tissus d'hydrogel incorporé (CLARITY passive) est une méthode simple et peu coûteuse pour la compensation de gros morceaux de tissu. Cette approche ne nécessite pas de matériel dédié et peut facilement être réalisé dans un agitateur à température contrôlée. En l'espace de quelques semaines, même les grandes, les tissus fortement myélinisées, comme un cerveau entier ou de la moelle épinière, deviendront transparents et adaptés pour la microscopie. Même si ce rapport a mis l'accent sur .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été généreusement soutenu par les National Institutes of Health / Institut national des troubles neurologiques et des maladies (NIH / NINDS) subvention 1R01NS086981 et la Fondation Conrad N. Hilton. Nous remercions le Dr Laurent Bentolila et le Dr Matthew Schibler pour leur aide précieuse à la microscopie confocale. Nous remercions ceux qui ont contribué au forum CLARITY (http://forum.claritytechniques.org). Nous remercions tout particulièrement le Dr Karl Deisseroth pour ouvrir son laboratoire pour enseigner cette technique fascinante. Les auteurs sont reconnaissants pour le soutien généreux de l'Organisation Brain Mapping Medical Research, Fondatio....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
10x solution saline tamponnée au phosphate (PBS)FisherBP399-1tampons 32
 % paraformaldéhyde (PFA)Microscopie électronique Sciences15714-5perfusion et hydrogel
2,2'-thiodiéthanol (TDE)Sigma-Aldrich166782-500Gsolution d’adaptation de l’indice de réfraction
40 % acrylamideBio-Rad161-0140hydrogel
2 % bis-acrylamideBio-Rad161-0142hydrogel
VA-044 initiateurWako Pure Chemical Industries, Ltd.VA044hydrogel
Acide boriqueSigma-AldrichB7901tampon d’élimination
Dodécylsulfate de sodium (SDS)FisherBP166-5Tampon
d’élimination hydroxyde de sodiumFisher55255-1tampons
d’azoture de sodiumSigma-Aldrich52002-100Gconservateur
Triton X-100Sigma-AldrichX100-500Gtampons
HéparineSigma-AldrichH3393-50KUperfusion
Nitrate de sodiumFisherBP360-500perfusion
DAPISondes moléculairesD1306coloration nucléaire
99,9 % isofluranePhoenix57319-559-06anesthésique
Acide hydrocholoriqueFisherA1445-500tampons
Plat à fond en verreWillcoHBSB-5040Plats Willco
Adhésif réutilisableBostick371351Blu-Tack
Élastomère de siliciumWorld Precision InstrumentsKWIK-CASTKwik-Cast
Lingette non pelucheuseKimberly-Clark34120KimWipe
Matrice cérébrale de sourisRobozSA-2175sectionner le tissu
Lames matriciellesRobozRS-9887sectionnement du tissu
Pompe péristaltiqueCole-Parmer77122-24pefusion
Microscope confocal à balayage laserMicroscopieLeicaSP5
Logiciel d’imagerieMicroscopieLeicaLAS AF

Références

  1. Micheva, K. D., Smith, S. J. Array tomography: a new tool for imaging the molecular architecture and ultrastructure of neural circuits. Neuron. 55, 25-36 (2007).
  2. Kleinfeld, D., et al. Large-scale automated histology in the pursuit of connectomes.

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Mots-clés

Transparence tissulaireadaptation de l indice de r fractionlimination des lipidespolym risation d hydrogelmicroscopie confocale22 thiodi thanolchambre d imagerie

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