L’utilisation de xénogreffes dérivées de patients pour modéliser les cancers a fourni des informations importantes sur la biologie du cancer et la réponse aux médicaments. Cependant, ils prennent du temps, coûtent cher et demandent beaucoup de main-d’œuvre. Pour surmonter ces obstacles, de nombreux groupes de recherche se sont tournés vers des cultures sphéroïdes de cellules cancéreuses. Bien qu’utiles, les sphéroïdes tumoraux ou les agrégats ne reproduisent pas les interactions cellule-matrice telles qu’elles sont observées in vivo. En tant que telles, les approches de culture tridimensionnelles (3D) utilisant un échafaudage de matrice extracellulaire fournissent un système de modèle plus réaliste pour l’investigation. À partir de xénogreffes sous-cutanées ou intracrâniennes, le tissu tumoral est dissocié en une suspension cellulaire unique semblable aux neurosphères de cellules souches cancéreuses. Ces cellules sont ensuite intégrées dans une matrice extracellulaire d’origine humaine, le biogel humain 3D, pour générer un grand nombre de microtumeurs. Il est intéressant de noter que les microtumeurs peuvent être cultivées pendant environ un mois avec une viabilité élevée et peuvent être utilisées pour les tests de réponse aux médicaments à l’aide de tests de cytotoxicité standard tels que le bromure de 3-(4,5-diméthylthiazol-2-yl)-2,5-diphényltétrazolium (MTT) et l’imagerie de cellules vivantes à l’aide de Calcein-AM. De plus, ils peuvent être analysés par immunohistochimie ou récoltés pour le profilage moléculaire, comme le profilage kinomique à haut débit basé sur une puce, qui est également détaillé ici. Les microtumeurs 3D représentent donc un système de modèle polyvalent à haut débit qui peut reproduire plus fidèlement la biologie tumorale in vivo que les approches traditionnelles.