Fluorescent modèle de souris orthotopique de cancer du pancréas

Résumé

Une procédure visant à implanter orthotopiquement des cellules cancéreuses du pancréas exprimant des protéines fluorescentes vertes (PANC-1 GFP) dans le pancréas de souris Balb-c Ola Hsd-Fox1nu afin d’évaluer la progression tumorale et les métastases est présentée ici.

Résumé

Le cancer du pancréas reste l'un des cancers pour lesquels la survie n'a pas sensiblement améliorées au cours des dernières décennies. Seulement 7% des patients diagnostiqués va survivre plus de cinq ans. Afin de comprendre et imiter le microenvironnement des tumeurs pancréatiques, nous avons utilisé un modèle murin orthotopique du cancer du pancréas qui permet l'imagerie non-invasive de la progression tumorale en temps réel. Les cellules cancéreuses pancréatiques exprimant la protéine fluorescente verte (GFP PANC-1) ont été suspendues en sous - sol matrice de la membrane, une concentration élevée, (par exemple, Matrigel HC) avec des milieux sans sérum, puis injectées dans la queue du pancréas par laparotomie. La suspension de cellules dans la matrice de membrane basale à haute concentration devient une substance analogue à un gel une fois qu'il atteint la température ambiante; Par conséquent, il se gélifie quand il entre en contact avec le pancréas, ce qui crée un joint d'étanchéité au niveau du site d'injection et d'empêcher toute fuite de la cellule. La croissance des tumeurs et des métastases dans d'autres organes sont surveillés en temps réelles animaux en utilisant la fluorescence. Il est essentiel d'utiliser les filtres appropriés pour l'excitation et l'émission de la GFP. Les étapes de l'implantation orthotopique sont détaillées dans cet article afin que les chercheurs peuvent facilement répliquer la procédure chez la souris nude. Les principales étapes de ce protocole sont la préparation de la suspension cellulaire, l' implantation chirurgicale, et toute fluorescente du corps dans l' imagerie in vivo. Ce modèle orthotopique est conçu pour évaluer l'efficacité de nouveaux traitements sur les tumeurs primaires et métastatiques.

Introduction

Le cancer du pancréas est diagnostiqué avec une fréquence accrue par rapport à d' autres cancers et est le 4 ^e principale cause de décès liés au cancer aux Etats-Unis. A partir du moment du diagnostic, plus de 90% des patients meurent dans les cinq ans ^1,2. Actuellement, l' ablation chirurgicale de la tumeur est le seul remède pour le cancer du pancréas, mais moins de 20% des patients sont admissibles à subir une intervention chirurgicale principalement parce que , au moment du diagnostic de la maladie est à un stade avancé et a métastasé ^3,4. L'absence de symptômes spécifiques rend le cancer du pancréas une maladie silencieuse; certains des symptômes comprennent des douleurs abdominales, maux de dos, perte d'appétit, la jaunisse et des nausées; qui peut être facilement interprété comme maladies digestives communes ^4. Pour cette raison, il est important de développer de nouveaux outils pharmacologiques pour faciliter le diagnostic et le traitement du cancer du pancréas.

L'utilisation de modèles animaux nous permet de comprendre la biologie de pancrecancer atique et donne un aperçu de l'application de ces connaissances à l'homme. Des modèles de xénogreffes orthotopiques du cancer du pancréas sont réalistes, parce que les tumeurs se développent dans l'organe ⁵ d'origine. Contrairement aux modèles hétérotopiques où des lignées cellulaires ou des fragments de tumeur sont implantés par voie sous- cutanée, la modélisation orthotopique permet la reconstitution du microenvironnement tumoral et imite l'interaction des cellules tumorales avec son environnement ^6. Le modèle de xénogreffe de tumeurs décrit ici dérive de la lignée cellulaire pancréatique cancéreuses humaines PANC-1 GFP, qui est génétiquement modifiée pour exprimer la protéine fluorescente verte (GFP). La détection de la GFP permet une imagerie et de suivi de la croissance tumorale et les métastases ⁷ non invasive. Le développement de la tumeur se produit rapidement, spontanément, et ressemble étroitement à celui des tumeurs primaires de patients atteints de cancer du pancréas humains ^8. modèles orthotopiques fournissent une prédiction plus précise de l'efficacité des médicaments en réponse à des agents thérapeutiques, tout enmimant le microenvironnement tumoral.

Comme il est mentionné ci-dessus, ce modèle animal permet la détection par fluorescence de la croissance tumorale et les métastases en temps réel. détection fluorescente permet une imagerie plus direct / live par rapport à luminescence. Avec la fluorescence de la lumière émise est le résultat d'une excitation par une lumière d'une longueur d'onde plus courte; tandis que la luminescence, la lumière émise est le résultat d'une réaction chimique et peut ne pas avoir une forte émission ^9. Par ailleurs, le corps entier dans l' imagerie par fluorescence in vivo ne nuise pas à l'animal et permet aux chercheurs de surveiller la croissance de la tumeur au fil du temps en réponse à des traitements thérapeutiques.

Protocole

Le protocole décrit ci-dessous est exécuté sous la direction et l'approbation du Comité des soins et de l'utilisation des animaux de l'Université Western. Toutes les expériences sont réalisées en conformité avec toutes les directives pertinentes, la réglementation et les organismes de réglementation.

1. Culture cellulaire

1. Préparation de Milieu Complet
   1. L'utilisation d'une enceinte de sécurité biologique de classe II, préparer un milieu complet en ajoutant aseptiquement sérum fœtal bovin (FBS) et de la pénicilline streptomycine (P / S) à une bouteille de milieu RPMI 500 ml. Mélanger doucement par tourbillonnement. La concentration finale de chaque supplément est de 10% de FBS et 1% P / S (v / v). Par exemple, compléter 500 ml de milieu avec 56 ml de FBS et 6 ml P / S.
   2. Placez un milieu complet dans un bain d'eau à 37 ° C.
2. Dégel et cellules de multiplication
   1. Récupérer les cellules PANC-1 GFP de l'azote liquide. Décongeler le flacon par agitation douce dans un bain d'eau à 37 ° C.
      Remarque:Dégel doit être rapide (environ 2 - 3 min).
   2. Étiquette T-75 flacons à utiliser avec (a) le nom de lignée cellulaire, (b) le numéro de passage, (c) la date et ses initiales (d) chercheur.
   3. Essuyez le flacon avec 70% d'éthanol et le transfert du flacon à une enceinte de sécurité biologique.
   4. Pour propager les cellules, ajouter 9,0 ml de milieu complet dans un tube de 15 ml conique. 1,0 ml à l'aide d'une pipette, transférer soigneusement la suspension de cellules et mettre en suspension dans 9 ml de milieu complet.
   5. Centrifuger à 125 g pendant 8 min à température ambiante. Transférer le flacon conique à une enceinte de sécurité biologique et aspirer le surnageant sans perturber le culot.
   6. Suspendre le culot dans 10 ml de milieu complet frais par pipetage doucement la suspension de haut en bas.
   7. Compter les cellules avec un hémocytomètre et la plaque dans les flacons T-75 à une densité de 2,1 x 10 ⁶ cellules / flacon. Placer ballon dans un incubateur à 37 ° C et 5% de CO _2.
   8. Surveiller les cellules quotidiennement à l'oeil nu et au microscope. Si la grippeid renouvellement est nécessaire, de manière aseptique Aspirer le milieu de croissance complet du flacon et le jeter. Ajouter un volume égal de milieu complet frais.
3. Propager cellules
   1. retirer aseptique moyen du ballon. Ajouter 5 ml de tampon phosphate solution saline de Dulbecco (DPBS) pour rincer les cellules et les jeter.
   2. Détacher les cellules du flacon en ajoutant 3 ml de trypsine à 0,25%. Incuber flacon contenant de la trypsine à 37 ° C et 5% de CO ₂ pendant 5 à 10 min.
   3. Observer les cellules au microscope (grossissement 10X) et veiller à ce qu'ils sont ronds et délogé.
   4. Neutraliser la trypsine en ajoutant un volume égal de milieu complet et de briser les mottes en pipetant doucement monter et descendre.
   5. Compter les cellules en utilisant un hémocytomètre et transférer le volume de la suspension cellulaire appropriée pour les nouveaux flacons à la densité cellulaire mentionnée dans 1.2.7; ajouter suffisamment de milieu frais de sorte que le volume final est de 10 ml par flacon.
4. Suspens cellulairesPréparation pour injection d'ions
   Remarque: La matrice de la membrane basale, une forte concentration, se solidifie à température ambiante, garder tous les matériaux sur la glace. Placez tous les conseils et les flacons de pipettes stériles dans le congélateur pendant une nuit, et garder sur la glace tout en travaillant sur la suspension.
   1. Gardez une bouteille de RPMI médias sans aucun additif sur la glace. Décongeler la matrice de la membrane basale, une forte concentration, en suivant les instructions du fabricant. De préférence, aliquote en petits flacons pour éviter de multiples cycles de gel-dégel ^10.
   2. Aspirer le milieu de tous les flacons, et rincer avec 5 ml de DPBS. Répétez toutes les étapes de la section précédente jusqu'à l'étape 1.3.4.
   3. Transférer le contenu dans un tube conique de 15 ml et on centrifuge à 125 g pendant 8 min à température ambiante. Transférer flacon conique enceinte de sécurité biologique et remettre en suspension à granulés en utilisant 10 ml de DPBS.
   4. pipeter doucement la suspension de haut en bas pour briser le culot. Compter les cellules en utilisant un hémocytomètre.
   5. Centrifuger à nouveau comme indiqué dans sTep 1.4.3. Aspirer le surnageant et en fonction du nombre de cellules, ajouter un diluant approprié pour donner 3 x 10 ⁶ cellules dans un volume de 50 ul. Le diluant sera un mélange de milieu sans sérum et une forte concentration membranaire de matrice basale en 1 (v / v) rapport 1.
   6. Vortex la suspension doucement et garder sur la glace en tout temps. La suspension est maintenant prête pour l'injection.
5. Implantation chirurgicale
   Remarque: Veiller à ce que tous les matériaux et instruments chirurgicaux sont stériles. Pratiquer des techniques aseptiques en tout temps.
   1. Placez un coussin chauffant sur la table et couvrir d'un drap stérile. Mettre en place l'appareil d'anesthésie et de veiller à toutes les fournitures sont à portée de main.
   2. Placez le museau de l'animal dans le masque d'anesthésie et de mettre en place l'anesthésie à 1 L / min d'oxygène et 2,5% d'isoflurane.
   3. Frottez doucement le flanc de l'animal avec de l'iode, et rincer à l'éthanol à 70%. Répétez trois fois.
   4. Confirmer leanimal est complètement anesthésié par pincement de la patte arrière. L'animal est entièrement anesthésié et prêt pour la chirurgie si aucune réponse est observée. Toutefois, si l'animal sursaute, assurer qu'il ya une anesthésie suffisante dans le vaporisateur et laisser l'animal plus de temps pour aller complètement sous anesthésie.
   5. Charge d'environ 200 pi de la suspension cellulaire dans une seringue de 1,0 ml de TB avec une aiguille 18 G (préalablement refroidi). Remplacer l'aiguille avec une aiguille 27 G et revenir à la glace jusqu'à utilisation.
   6. Localisez la zone générale de la rate (quadrant supérieur gauche de l'abdomen) et en utilisant une pince pincer la peau au-dessus de cette région. Avec des ciseaux chirurgicaux faire une incision d'environ 1,0 cm pour créer une poche. De même, pincer le muscle lisse sur le dessus de la rate et couper à travers afin d'accéder à la cavité péritonéale.
   7. saisir délicatement l'extrémité caudale de la rate et le tirer hors du corps. Le pancréas est attaché à la rate. Étaler le pancréas en utilisant un st humideerile Q-tip et de localiser la queue du pancréas.
   8. Livrer l'injection de 50 pi dans la queue du pancréas, laissez l'aiguille à l'intérieur pendant 10 secondes et tourner lentement l'aiguille du pancréas. Une implantation réussie va ressembler une bulle superficielle sans fuite.
   9. Retour du pancréas et de la rate à la cavité péritonéale. Tout d'abord joindre le muscle, puis enfermer la peau séparément. Utilisez une suture 6-0 ou une agrafe pour fermer l'incision. Pour éviter la douleur chez l'animal, administrer kétoprofène sous-cutanée (SC) (5 mg / kg) sur 24 heures. Alternativement, administrer buprénorphine sc (0,05 à 0,1 mg / kg) toutes les 12 heures sur une période de 36 h.
   10. Récupérer l'animal de l'anesthésie et le retourner à sa cage. Surveillez également la douleur. Les animaux doivent être munis de soulagement de la douleur au moment de (ou même avant - préemptive) chirurgie. soulagement de la douleur supplémentaire doit être fournie aux animaux qui éprouvent de la douleur selon IACCUC protocole ou tel que prescrit par le autendant vétérinaire ou la personne désignée.
6. Dans l' imagerie in vivo
   Remarque: la capture d'image a été effectuée en utilisant un système d'imagerie commercial équipé d'une chambre noire et les filtres appropriés pour l'imagerie de la GFP. L'acquisition des images a été effectuée en utilisant une caméra CCD et un système optique composé de lentilles interchangeables d'excitation / d'émission (excitation: 455-495 nm; émission: 513-557 nm). images de champ lumineux ont été capturés sans filtre à 1 x 1 binning pour chaque point de temps. Excitation de la GFP utilisé une source au xénon de lumière multispectrale. Les animaux ont été maintenus sous une anesthésie tout au long du processus d'imagerie en connectant l'appareil d'anesthésie à un collecteur de gaz d'anesthésie intégrée dans la chambre sombre du système d'imagerie.
   1. Anesthetize l'animal tel que décrit dans 1.5.2. Un masque d'anesthésie est à l'intérieur de la chambre noire du système d'imagerie commerciale afin de maintenir l'animal sous anesthésie au cours de l'imagerieprocessus.
   2. Mettre en place les filtres d'excitation et d'émission corrects.
   3. Commencez par l'obtention d'une image initiale à l'aide de la lumière blanche seulement. Gardez la même position de l'animal tout au long de la session d'imagerie et de passer à des filtres de GFP pour prendre une seconde image.
   4. Pour de meilleurs résultats superposer les deux images. Analyser l'image pour la zone et l'intensité de fluorescence.

Résultats

Cette méthode décrit une implantation chirurgicale orthotopique de cellules fluorescentes cancéreuses pancréatiques humaines, en mettant l' accent sur ​​la préparation de la suspension cellulaire pour l' injection, l' anesthésie appropriée pour les rongeurs, la livraison de la suspension cellulaire par laparotomie, et l'utilisation de fluorescence in vivo l' imagerie du petit animal. La détection d'un signal vert de fluorescence (signal GFP) entre deux et...

Discussion

Nous décrivons un modèle murin orthotopique de cancer du pancréas qui exprime la GFP, permettant ainsi une surveillance non invasive de la croissance tumorale en utilisant corps in vivo , l' imagerie de fluorescence (figure 1). Cette technique nous permet de suivre l'évolution de la tumeur en temps réel (Figure 3); il peut être un outil important pour les chercheurs d'étudier l'efficacité thérapeutique des nouveaux agents contre le cancer du pancréas. Un autre a...

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
RPMI media 1640	Caisson Labs	RPL03-500ML
Sérum de veau fœtal  ;	Gibco	10437-077
Pénicilline Streptomycine  ;   ;	Thermo Ficher Sci	15140-122
Matrigel HC membrane basale, haute concentration	Corning	354248
SutureVet PGA 6-0 PGA	Henry Schein	39010
Alcare ou Foamed Antiseptic	Handrub Steris	639680
DPBS (solution saline tamponnée au phosphate de Dubelcco)  ;	Thermo Ficher Sci	21300025
TB Seringue 27 G 1/2	Becton Dickinson	305620
Isoflurane	Blutler Schein	50562
Ketoprofen	Fort Dodge
, 5,5" mayo droite  ;	Henry Schein	22-1600
PANC-1 Lignée cellulaire GFP  ;	Système d’imagerie pour petits animaux Anticancer, Inc
: iBox Scientia	UVP, LLC. Upland, Californie.		Système d’imagerie des petits animaux pour observer la tumeur fluorescente chez les animaux vivants

Ciseaux chirurgicaux pour la santé animale