Dans ces études, nous fournissons une méthodologie pour de nouvelles, échafauds cardiaques néonatales, murins pour une utilisation dans les études de régénération.
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Article de méthode
Dans ces études, nous fournissons une méthodologie pour de nouvelles, échafauds cardiaques néonatales, murins pour une utilisation dans les études de régénération.
Le seul traitement définitif de l’insuffisance cardiaque terminale est la transplantation cardiaque orthotopique. Chaque année, on estime que plus de 100 000 cœurs de donneurs sont nécessaires pour les procédures de transplantation cardiaque auxÉtats-Unis 1-2. En raison du nombre limité de donneurs, seulement environ 2 400 greffes sont effectuées chaque année aux États-Unis2. De nombreuses approches, allant des études de thérapie cellulaire à l’implantation de dispositifs d’assistance mécanique, ont été entreprises, seules ou en combinaison, dans le but d’inciter le cœur à se réparer lui-même ou à reposerle cœur défaillant. Malgré ces efforts, les dispositifs d’assistance ventriculaire sont encore largement utilisés dans le but de faire le pont vers la transplantation et l’utilité des thérapies cellulaires, bien qu’elles soient prometteuses sur le plan curatif, se limite encore aux essais cliniques. De plus, une xénotransplantation directe a été tentée, mais le succès a été limité en raison du rejet immunitaire. De toute évidence, une autre stratégie est nécessaire pour produire des organes supplémentaires pour la transplantation et, idéalement, ces organes seraient autologues afin d’éviter les complications associées au rejet et à l’immunosuppression à vie. La décellularisation est un processus qui consiste à retirer les cellules résidentes des tissus pour exposer la matrice extracellulaire native (MEC) ou l’échafaudage. La décellularisation par perfusion offre une préservation complète de la structure tridimensionnelle du tissu, tout en laissant intactes l’essentiel des propriétés mécaniques du tissu4. Ces échafaudages peuvent être utilisés pour le repeuplement avec des cellules saines afin de générer des modèles de recherche et, éventuellement, des organes indispensables pour la transplantation. Nous avons exposé les échafaudages de souris néonatales (P3), connues pour conserver des capacités de régénération cardiaque remarquables5-8, à la décellularisation médiée par détergent et nous avons repeuplé ces échafaudages avec des cellules cardiaques murines. Ces études soutiennent la faisabilité de la construction d’un cœur néonatal. Ils permettent en outre d’enquêter pour savoir si la MEC des cœurs postnatals précoces peut contenir des indices qui se traduiront par de meilleures stratégies de recellularisation.
L'insuffisance cardiaque est fréquente et mortelle. Il est une maladie progressive qui se traduit par une diminution de la contractilité du coeur, ce qui altère le flux sanguin vers les organes et laisse les besoins métaboliques de la non satisfaite du corps. On estime que 5,7 millions d' Américains ont une insuffisance cardiaque et il est la principale cause d'hospitalisation aux États-Unis 9. Le coût collectif de traitement des patients en insuffisance cardiaque aux États-Unis dépasse les 300 milliards de dollars par an 9-10. Le seul traitement définitif de l'insuffisance cardiaque au stade terminal est une greffe cardiaque ort....
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Toutes les expériences de souris ont été effectuées en conformité avec loi sur la protection des animaux et des États-Unis ont été approuvés par le Comité soin et l'utilisation institutionnelle des animaux à l'Université du Minnesota.
1. Méthode de coeur Souris Isolation
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décellularisation
En moyenne, le temps de décellularisation d'un cœur de P3 en utilisant ce protocole est d'environ 14 heures. étant donné un poids cardiaque moyenne de 23 mg pour le nouveau-né de P3.
Acellularity
Figure 3a montre un coeur néonatal P3 intact (toute la montagne). Figure 3b montre le même cœur suivant décellularisation. Les figures .......
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La dépendance de cette technique sur des perfusions répétées du cœur fait éviter d'une embolie, une composante essentielle d'un résultat positif. À partir de la première cathétérisation du cœur dans les étapes 2,2-2,6, aux changements de solution entre les étapes 2.8-2.14, il y a des manipulations qui peuvent permettre l'introduction de bulles d'air qui compromettent l'écoulement du liquide de perfusion dans le myocarde. En raison de la petite taille du cœur du nouveau-né, même de minuscules bulles d.......
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Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Les auteurs remercient chaleureusement Mme Cynthia DeKay pour la préparation des figures.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 1. Matériaux pour l’isolement du cœur de souris | |||
| bébés souris P1 (comme illustré ; B6 ; D2-Tg(Myh6*-mCherry)2Mik/J) | Jackson Laboratories | 21577 | ou équivalent |
| 60 mm Plat de culture | BD Falcon 353004 | ou équivalent | |
| Solution saline tamponnée au phosphate pH 7,4 (stérile) | Hyclone | SH30256.01 | ou équivalent |
| Lame à usage unique | Stanley | 28-510 | ou équivalent |
| Ciseaux standard | Moria Bonn (Fine Science Tools) | 14381-43 | ou équivalent |
| Ciseaux à ressort 10 cm | Outils de science fine | 15024-10 | ou équivalent |
| Ciseaux à ressort Vannas - 3 mm Cutting Edge | Fine Science Tools | 15000-00 | ou équivalent |
| #5 Forceps | Dumnot (Fine Science Tools) | 11295-00 | ou équivalent |
| 2. Matériaux pour la décellularisation forte | |||
| Adaptateur d’entrée | Chemglass | CG-1013 | autoclavable |
| Septum | Chemglass | CG-3022-99 | autoclavable |
| 1/8 po. ID x 3/8 OD Tube C-Flex | Cole-Parmer | EW-06422-10 | autoclavable |
| Luer mâle à 1/8 » adaptateur de tuyau cannelé | McMaster-Carr | 51525K33 | autoclavable |
| Luer femelle à 1/8 » adaptateur de tuyau cannelé | McMaster-Carr | 51525K26 | autoclavable |
| Prolene 7-0 suture chirurgicale ; | Ethicon | 8648G | ou équivalent |
| Support à anneau | Fisher Scientific | S47807 | ou équivalent |
| Pince | Fisher Scientific | 05-769-6Q | ou équivalent |
| Pince support régulier | Fisher Scientific | 05-754Q | ou équivalent |
| 60 cc seringue barillet ; | Coviden | 1186000777T | ou équivalent |
| Beaker | Kimble | 14000250 | ou équivalent |
| 22 G x 1 Seringue Aiguille | BD | 305155 | ou équivalent |
| Seringue 12 cc | Coviden | 8881512878 | ou équivalent |
| Robinet d’arrêt à 3 voies | Smith Medical | MX5311L | ou équivalent |
| Tube PE50 | BD Clay Adams Intramedic | 427411 | Doit être formable par la chaleur. Polyéthylène recommandé. |
| 1 % FDS | Invitrogen | 15525-017 | Qualité ultra-pure recommandée. Préparez une solution fraîche et filtrez la stérilisation avant utilisation. |
| 1 % Triton X-100 ; | Sigma-Aldrich | T8787 | Préparez une solution fraîche à partir d’un stock à 10 % et filtrez, stérilisez avant utilisation. |
| Eau stérile dH2O | Hyclone | SH30538.02 | ou MilliQ. |
| 1x Pen/Strep | Corning CellGro | 30-001-Cl | ou équivalent ; |
| 3. Matériaux pour la quantification de l’ADN | |||
| protéinase K | Fisher | BP1700 | >30 U/mg |
| activité KCl | Sigma-Aldrich | P9333 | ou équivalent |
| MgCl2· ; 6H2O | Mallinckrodt | 5958-04 | ou équivalent |
| Tween 20 ; | Sigma-Aldrich | P1379 | ou équivalent |
| Tris base/chlorhydrate | Sigma-Aldrich | T1503/T5941 | ou |
| équivalent Pico-Green kit de dosage de l’ADNdb | Life Technologies ; | P7589 | nécessite un fluorimètre pour lire |
| 4. Méthode de fixation et de sectionnement des tissus | |||
| paraformaldéhyde | Sigma-Aldrich | P6148 | ou équivalent |
| Gélatine de type A à partir de la peau porcine | Sigma-Aldrich | G2500 | doit être de 300 bloom ou plus |
| 5. Méthode d’histologie tissulaire | |||
| Cryomolds 10 x 10 x 5 mm | Tissue-Tek | 4565 | ou équivalent |
| Cryostat | Hacker/Bright | Model OTF | ou lames |
| de microscope équivalentes ; 25 x 75 x 1 mm | Fisher Scientific | 12-550-19 | ou équivalent |
| Hematoxylin 560 ; | Surgipath/Leica Selectech· | 3801570 | ou équivalent |
| Ethanol Decon Laboratories | 2701 | ou équivalent | |
| Define | Surgipath/Leica Selectech ; | 3803590 | ou équivalent |
| Tampon bleu ; | Surgipath/Leica Selectech· | 3802915 | ou équivalent |
| Alcool Eosin Y 515 ; | Surgipath/Leica Selectech· | 3801615 | ou équivalent |
| Formule 83 Substitut de xylène ; | CBG Biotech ; | CH0104B | ou équivalent |
| Support de montage Permount ; | Fisher Chemical ; | SP15-500 | ou équivalent |
| Collagène IV Anticorps | Rockland | 600-401-106.1 | ou équivalent |
| &alpha ;-actinine | Anticorps Abcam | AB9465 | ou équivalent |
| mCherry Anticorps | Abcam | AB205402 | ou équivalent |
| NKX2.5 Anticorps | Santa Cruz Biotechnology | SC-8697 | ou équivalent |
| Donkey anti-souris AF488 Anticorps | Life Technology | A21202 | ou équivalent |
| Âne anti-poulet AF594 Anticorps | Jackson Immunoresearch | 703-585-155 ; | ou équivalent |
| Âne anti-chèvre CY5 Anticorps | Jackson Immunoresearch ; | 705-175-147 | ou équivalent |
| Fab Fragment Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) AF594 Jackson | Immunoresearch | 111-587-003 | ou équivalent |
| Prolong Gold Antifade Mountant avec DAPI | ThermoFisher | P36930 | ou équivalent |
| 6. Isolement des cardiomyocytes ventriculaires néonatals à l’aide du pré-placage | |||
| HBSS (Ca, Mg Free) | Hyclone | SH30031.02 | ou équivalent |
| HEPES (1 M) | Corning CellGro | 25-060-Cl | ou équivalent |
| Cell Strainer | BD Falcon | 352340 | ou équivalent |
| Tube de 50 ml | BD Falcon | 352070 | ou équivalent |
| Primeria 100 mm plaques | La surface Corning | 353803 | Primeria améliore la fixation des fibroblastes, favorisant une plus grande pureté des myocytes |
| Trypsin | Difco | 215240 | ou équivalent |
| DNase II | Sigma-Aldrich | D8764 | ou équivalent |
| DMEM (Delbecco’s Minimal Essential Media) | Hyclone | SH30022.01 | ou équivalent |
| Vitamine B12 ; | Sigma-Aldrich | V6629 | ou plaques |
| équivalentes recouvertes de fibronectine ; | BD Bioscience | 354501 | ou équivalent |
| Sérum fœtal bovin ; | Hyclone | SH30910.03 | ou équivalent |
| Bioréacteur Heart | verrerie Radnoti Glass Technology | 120101BEZ | Doit être stérilisable par autoclave ou par gaz. |
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