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Article de méthode

Néonatale cardiaque Echafaudages: Matrices nouveaux pour Études régénératives

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DOI :

10.3791/54459

5 novembre 2016

Dans cet article

Résumé

Dans ces études, nous fournissons une méthodologie pour de nouvelles, échafauds cardiaques néonatales, murins pour une utilisation dans les études de régénération.

Résumé

Le seul traitement définitif de l’insuffisance cardiaque terminale est la transplantation cardiaque orthotopique. Chaque année, on estime que plus de 100 000 cœurs de donneurs sont nécessaires pour les procédures de transplantation cardiaque auxÉtats-Unis 1-2. En raison du nombre limité de donneurs, seulement environ 2 400 greffes sont effectuées chaque année aux États-Unis2. De nombreuses approches, allant des études de thérapie cellulaire à l’implantation de dispositifs d’assistance mécanique, ont été entreprises, seules ou en combinaison, dans le but d’inciter le cœur à se réparer lui-même ou à reposerle cœur défaillant. Malgré ces efforts, les dispositifs d’assistance ventriculaire sont encore largement utilisés dans le but de faire le pont vers la transplantation et l’utilité des thérapies cellulaires, bien qu’elles soient prometteuses sur le plan curatif, se limite encore aux essais cliniques. De plus, une xénotransplantation directe a été tentée, mais le succès a été limité en raison du rejet immunitaire. De toute évidence, une autre stratégie est nécessaire pour produire des organes supplémentaires pour la transplantation et, idéalement, ces organes seraient autologues afin d’éviter les complications associées au rejet et à l’immunosuppression à vie. La décellularisation est un processus qui consiste à retirer les cellules résidentes des tissus pour exposer la matrice extracellulaire native (MEC) ou l’échafaudage. La décellularisation par perfusion offre une préservation complète de la structure tridimensionnelle du tissu, tout en laissant intactes l’essentiel des propriétés mécaniques du tissu4. Ces échafaudages peuvent être utilisés pour le repeuplement avec des cellules saines afin de générer des modèles de recherche et, éventuellement, des organes indispensables pour la transplantation. Nous avons exposé les échafaudages de souris néonatales (P3), connues pour conserver des capacités de régénération cardiaque remarquables5-8, à la décellularisation médiée par détergent et nous avons repeuplé ces échafaudages avec des cellules cardiaques murines. Ces études soutiennent la faisabilité de la construction d’un cœur néonatal. Ils permettent en outre d’enquêter pour savoir si la MEC des cœurs postnatals précoces peut contenir des indices qui se traduiront par de meilleures stratégies de recellularisation.

Introduction

L'insuffisance cardiaque est fréquente et mortelle. Il est une maladie progressive qui se traduit par une diminution de la contractilité du coeur, ce qui altère le flux sanguin vers les organes et laisse les besoins métaboliques de la non satisfaite du corps. On estime que 5,7 millions d' Américains ont une insuffisance cardiaque et il est la principale cause d'hospitalisation aux États-Unis 9. Le coût collectif de traitement des patients en insuffisance cardiaque aux États-Unis dépasse les 300 milliards de dollars par an 9-10. Le seul traitement définitif de l'insuffisance cardiaque au stade terminal est une greffe cardiaque ort....

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Protocole

Toutes les expériences de souris ont été effectuées en conformité avec loi sur la protection des animaux et des États-Unis ont été approuvés par le Comité soin et l'utilisation institutionnelle des animaux à l'Université du Minnesota.

1. Méthode de coeur Souris Isolation

  1. Euthanasier une souris néonatale par décapitation avec une lame à usage unique.
  2. Badigeonner le thorax avec 70% d'éthanol.
  3. Disséquer la peau de la poitrine en réduisant l'écart de la paroi thoracique, avec des ciseaux standards tout en tirant la peau latéralement par une paire de pinces # 5.
  4. Perforer l'abdomen juste en dessous du ste....

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Résultats

décellularisation
En moyenne, le temps de décellularisation d'un cœur de P3 en utilisant ce protocole est d'environ 14 heures. étant donné un poids cardiaque moyenne de 23 mg pour le nouveau-né de P3.

Acellularity
Figure 3a
montre un coeur néonatal P3 intact (toute la montagne). Figure 3b montre le même cœur suivant décellularisation. Les figures .......

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Discussion

La dépendance de cette technique sur des perfusions répétées du cœur fait éviter d'une embolie, une composante essentielle d'un résultat positif. À partir de la première cathétérisation du cœur dans les étapes 2,2-2,6, aux changements de solution entre les étapes 2.8-2.14, il y a des manipulations qui peuvent permettre l'introduction de bulles d'air qui compromettent l'écoulement du liquide de perfusion dans le myocarde. En raison de la petite taille du cœur du nouveau-né, même de minuscules bulles d.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteurs remercient chaleureusement Mme Cynthia DeKay pour la préparation des figures.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
1. Matériaux pour l’isolement du cœur de souris
bébés souris P1 (comme illustré ; B6 ; D2-Tg(Myh6*-mCherry)2Mik/J)Jackson Laboratories21577ou équivalent
60 mm Plat de cultureBD Falcon 353004ou équivalent
Solution saline tamponnée au phosphate pH 7,4 (stérile)HycloneSH30256.01ou équivalent
Lame à usage uniqueStanley28-510ou équivalent
Ciseaux standardMoria Bonn (Fine Science Tools)14381-43ou équivalent
Ciseaux à ressort 10 cmOutils de science fine15024-10ou équivalent
Ciseaux à ressort Vannas - 3 mm Cutting EdgeFine Science Tools15000-00ou équivalent
#5 ForcepsDumnot (Fine Science Tools)11295-00ou équivalent
2. Matériaux pour la décellularisation forte
Adaptateur d’entréeChemglassCG-1013autoclavable
SeptumChemglassCG-3022-99autoclavable
1/8 po. ID x 3/8 OD Tube C-FlexCole-ParmerEW-06422-10autoclavable
Luer mâle à 1/8 » adaptateur de tuyau canneléMcMaster-Carr51525K33autoclavable
Luer femelle à 1/8 » adaptateur de tuyau canneléMcMaster-Carr51525K26autoclavable
Prolene 7-0 suture chirurgicale  ;Ethicon8648Gou équivalent
Support à anneauFisher ScientificS47807ou équivalent
PinceFisher Scientific05-769-6Qou équivalent
Pince support régulierFisher Scientific05-754Qou équivalent
60 cc seringue barillet  ;Coviden1186000777Tou équivalent
BeakerKimble14000250ou équivalent
22 G x 1 Seringue AiguilleBD305155ou équivalent
Seringue 12 ccCoviden8881512878ou équivalent
Robinet d’arrêt à 3 voiesSmith MedicalMX5311Lou équivalent
Tube PE50BD Clay Adams Intramedic427411Doit être formable par la chaleur. Polyéthylène recommandé.
1 % FDSInvitrogen15525-017Qualité ultra-pure recommandée. Préparez une solution fraîche et filtrez la stérilisation avant utilisation.
1 % Triton X-100  ;Sigma-AldrichT8787Préparez une solution fraîche à partir d’un stock à 10 % et filtrez, stérilisez avant utilisation.
Eau stérile dH2OHycloneSH30538.02ou MilliQ.
1x Pen/StrepCorning CellGro30-001-Clou équivalent
  ;
3. Matériaux pour la quantification de l’ADN
protéinase KFisherBP1700>30 U/mg
activité KClSigma-AldrichP9333ou équivalent
MgCl2· ; 6H2OMallinckrodt5958-04ou équivalent
Tween 20  ;Sigma-AldrichP1379ou équivalent
Tris base/chlorhydrateSigma-AldrichT1503/T5941ou
équivalent Pico-Green kit de dosage de l’ADNdbLife Technologies  ;P7589nécessite un fluorimètre pour lire
4. Méthode de fixation et de sectionnement des tissus
paraformaldéhydeSigma-AldrichP6148ou équivalent
Gélatine de type A à partir de la peau porcineSigma-AldrichG2500doit être de 300 bloom ou plus
5. Méthode d’histologie tissulaire
Cryomolds 10 x 10 x 5 mmTissue-Tek4565ou équivalent
CryostatHacker/BrightModel OTFou lames
de microscope équivalentes  ; 25 x 75 x 1 mmFisher Scientific12-550-19ou équivalent
Hematoxylin 560  ;Surgipath/Leica Selectech·3801570ou équivalent
Ethanol Decon Laboratories2701ou équivalent
DefineSurgipath/Leica Selectech  ;3803590ou équivalent
Tampon bleu  ;Surgipath/Leica Selectech·3802915ou équivalent
Alcool Eosin Y 515  ;Surgipath/Leica Selectech·3801615ou équivalent
Formule 83 Substitut de xylène  ;CBG Biotech  ;CH0104Bou équivalent
Support de montage Permount  ;Fisher Chemical  ;SP15-500ou équivalent
Collagène IV AnticorpsRockland600-401-106.1ou équivalent
&alpha ;-actinineAnticorps AbcamAB9465ou équivalent
mCherry AnticorpsAbcamAB205402ou équivalent
NKX2.5 AnticorpsSanta Cruz BiotechnologySC-8697ou équivalent
Donkey anti-souris AF488 AnticorpsLife TechnologyA21202ou équivalent
Âne anti-poulet AF594 AnticorpsJackson Immunoresearch703-585-155  ;ou équivalent
Âne anti-chèvre CY5 AnticorpsJackson Immunoresearch  ;705-175-147ou équivalent
Fab Fragment Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) AF594 JacksonImmunoresearch111-587-003ou équivalent
Prolong Gold Antifade Mountant avec DAPIThermoFisherP36930ou équivalent
6. Isolement des cardiomyocytes ventriculaires néonatals à l’aide du pré-placage
HBSS (Ca, Mg Free)HycloneSH30031.02ou équivalent
HEPES (1 M)Corning CellGro25-060-Clou équivalent
Cell StrainerBD Falcon352340ou équivalent
Tube de 50 mlBD Falcon352070ou équivalent
Primeria 100 mm plaquesLa surface Corning353803Primeria améliore la fixation des fibroblastes, favorisant une plus grande pureté des myocytes
TrypsinDifco215240ou équivalent
DNase IISigma-AldrichD8764ou équivalent
DMEM (Delbecco’s Minimal Essential Media)HycloneSH30022.01ou équivalent
Vitamine B12  ;Sigma-AldrichV6629ou plaques
équivalentes recouvertes de fibronectine  ;BD Bioscience354501ou équivalent
Sérum fœtal bovin  ;HycloneSH30910.03ou équivalent
Bioréacteur Heartverrerie Radnoti Glass Technology120101BEZDoit être stérilisable par autoclave ou par gaz.

Références

  1. Yusen, R. D., et al. Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: Thirty-second official adult lung and heart-lung transplantation report--2015. J Heart Lung Transplant. 34 (10), 1264-1277 (2015).
  2. Go, A. S., et al.

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